2. Materials andmethods2.1. Experim

2. Materials andmethods
2.1. Experiments
Two studies were conducted to evaluate the suitability of GDDY as a
protein source for rainbow trout. The first study consisted of an in vivo
digestibility assessment to determine apparent digestibility coefficients
(ADCs) for protein, lipid and energy and apparent availability coefficients
(AACs) for amino acids and phosphorus. The second study
consisted of a nine-week feeding trial with growth performance, nutrient
retention, feed conversion, diet palatability (determined as relative
feed consumption), and diet digestibility as response variables. Fish in
these studies were handled and treated in accordance with guidelines
approved by the U.S. Fish and Wildlife Service.
2.2. In vivo ingredient digestibility determinations
2.2.1. Study design
Themethods of Cho et al. (1982) and Bureau et al. (1999) were used
with additional modifications described below to estimate ADCs of
GDDY in rainbow trout. A complete reference diet (Table 1) meeting
or exceeding all known nutritional requirements of rainbow trout
(National Research Council, NRC, 2011)with yttrium oxide as indigestible
marker was blended with the test ingredient (GDDY) in a 70:30 ratio
(dry-weight basis). Both the reference and test diet were manufactured
by cooking extrusion.
2.2.2. Fish
Fish (approximately 300 g ± 23 g, mean ± SD initial weight) were
stocked in tanks at 20 fish per 200-L-poly tanks. Water temperature
was maintained at 14 °C in a recirculating system. Lighting was maintained
on a 13:11 h diurnal cycle. Diets were randomly assigned to
three replicate tanks of fish. Fish were fed twice daily to apparent satiation
beginning 14 days prior to the first fecal collection.
2.2.3. Feces collections
Feces fromfish in each replicate tankwere obtained bymanual stripping
(Austreng, 1978). In brief, all fish in each tank were netted, anesthetized
with MS-222 (tricaine methanesulfonate, Western Chemical
Company, Ferndale, Washington, USA), dried and gentle pressure was
applied to the lower abdominal region to express fecal matter into a
plastic weighing pan. Care was taken to exclude urinary excretions
from the collection. Fecal samples for a given tank were freeze-dried,
ground with a mortar and pestle, and stored at −20 °C until chemical
analyses (described below) were performed.
2.2.4. Analytical methods
Drymatter analysis of ingredients, diets and feceswas performed according
to standard methods (AOAC, 1995). Yttrium and phosphorus
were determined in diets and feces by inductively coupled plasma
atomic absorption spectrophotometry following nitric acid digestion
(Anderson, 1996). Crude protein (N × 6.25) was determined in ingredients,
diets and feces by the Dumas method (AOAC, 1995) on a Leco
TruSpecNnitrogen determinator (LECO Corporation, St. Joseph,Michigan,
USA). Total energy was determined by isoperibol bomb calorimetry
(Parr 6300, Parr Instrument Company Inc., Moline, Illinois, USA). Lipid
was determined by petroleum ether extraction using an Ankom XT10
(Ankom Technologies, Macedon, New York, USA). Diet, ingredient and
fecal amino acids were quantified following acid hydrolysis utilizing a
Beckman 7300 amino acid analyzer and post-column derivitization
with ninhydrin (AAA Laboratory, Mercer Island,WA, USA).
2.2.5. Digestibility equations
Apparent digestibility coefficients of each nutrient in the test diet and
GDDYwere calculated according to established equations (Forster, 1999;
Kleiber, 1961):
ADCNdiet ¼ 100 
ð%marker in diet  % nutrient in fecesÞ
ð%marker in feces  % nutrient in dietÞ
Table 1
Composition of digestibility reference diet (% dry-weight) fed to
rainbow trout.
Ingredients %
Wheat floura 28.3
Squid meal 25.0
Soy protein concentrateb 17.1
Fish oilc 13.4
Corn gluten meald 8.3
Soybean meale 4.3
Vitamin premix ARSf 1.0
Chromic oxideg 1.0
Choline chlorideg 0.6
Taurineh 0.5
Stay-C 35i 0.2
Trace mineral premixj 0.1
Yttrium oxideg 0.1

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2. วัสดุ andmethods2.1. การทดลองสองการศึกษาได้ดำเนินการประเมินความเหมาะสมของ GDDY เป็นการแหล่งโปรตีนสำหรับเรนโบว์เทราท์ การศึกษาครั้งแรกประกอบด้วยมีในร่างกายการประเมินย่อยเพื่อกำหนดค่าสัมประสิทธิ์การย่อยชัดเจน(ADCs) สำหรับพลังงาน โปรตีน ไขมัน และสัมประสิทธิ์ความพร้อมชัดเจน(AACs) สำหรับกรดอะมิโนและฟอสฟอรัส การศึกษาที่สองประกอบด้วยการทดลองให้อาหารเก้าสัปดาห์กับการเจริญเติบโต สารอาหารการเก็บรักษา ฟีดแปลง โภชนะอาหาร (กำหนดเป็นญาติอาหารการใช้), และการย่อยอาหารเป็นตัวแปรตอบสนอง ปลาในจัดการศึกษาเหล่านี้ และปฏิบัติตามแนวทางรับรอง โดยสหรัฐฯ ปลาและสัตว์ป่า2.2. ในร่างกายส่วนผสมย่อยวิเคราะห์ปริมาณ2.2.1 การศึกษาออกแบบใช้ Themethods ของ Cho et al. (1982) และสำนักงาน et al. (1999)มีการแก้ไขเพิ่มเติมอธิบายด้านล่างประมาณ ADCs ของGDDY ในเรนโบว์เทราท์ การอ้างอิงสมบูรณ์ประชุมอาหาร (ตารางที่ 1)หรือเกินความต้องการทางโภชนาการทราบทั้งหมดของเรนโบว์เทราท์(สภาวิจัยแห่งชาติ สรรหา 2011) ด้วยอิตเทรียมออกไซด์เป็นย่อยเครื่องหมายถูกผสมกับส่วนผสมทดสอบ (GDDY) ในการสัด(โดยน้ำหนักแห้ง) ทั้งอ้างอิงและทดสอบอาหารที่ผลิตโดยการอัดขึ้นรูปทำอาหาร2.2.2. ปลาปลา (ประมาณ 300 กรัม± 23 กรัม น้ำหนักเริ่มต้นเฉลี่ย± SD) มีพร้อมเครื่องดื่มในถังที่ 20 ปลาต่อถัง 200-L-โพลี อุณหภูมิของน้ำถูกเก็บรักษาไว้ที่ 14 ° C ในระบบเวียน ไฟกรุง13:11 h ตกรอบ อาหารถูกกำหนดแบบสุ่มไปสามจำลองถังปลา ปลาถูกเลี้ยงวันละสองครั้ง satiation ชัดเจนเริ่ม 14 วันก่อนการเก็บอุจจาระ2.2.3. อุจจาระคอลเลกชันFromfish อุจจาระในแต่ละ tankwere replicate ได้ลอก bymanual(Austreng, 1978) ปลาทั้งหมดในแต่ละถังถูกยิง สังเขป ด้วยมี MS-222 (tricaine methanesulfonate เคมีตะวันตกบริษัท Ferndale วอชิงตัน สหรัฐอเมริกา), ถูกดันแห้ง และอ่อนโยนใช้กับพื้นที่ท้องล่างแสดงเรื่องอุจจาระลงในพลาสติกที่ชั่งน้ำหนัก ระมัดระวังการแยก excretions ปัสสาวะจากการรวบรวม ตัวอย่างอุจจาระสำหรับรถถังให้ได้แห้งบด ด้วยครกและสาก และเก็บไว้ที่ −20 ° C จนสารเคมีดำเนินการวิเคราะห์ (อธิบายด้านล่าง)2.2.4. วิเคราะห์วิธีDrymatter วิเคราะห์ส่วนผสม อาหาร และ feceswas ดำเนินการตามวิธีมาตรฐาน ( 1995 aoac () อิตเทรียมและฟอสฟอรัสดำเนินการในอาหารและอุจจาระ โดยพลาอุปการดูดกลืนโดยอะตอม spectrophotometry ตามย่อยกรดไนตริก(แอนเดอร์สัน 1996) โปรตีน (N × 6.25) กำหนดในส่วนผสมอาหารและอุจจาระ โดยวิธีการด้วยวิธีดูมาส ( 1995 aoac (หรือ)ใน LecoDeterminator TruSpecNnitrogen (LECO คอร์ปอเรชั่น เซนต์โจเซฟ มิชิแกนสหรัฐอเมริกา) พลังงานทั้งหมดถูกกำหนด โดยเครื่องระเบิด isoperibol(พารร์ 6300 พารร์มือบริษัท อิงค์ โมลีน อิลลินอยส์ สหรัฐอเมริกา) ไขมันกำหนดด้วยปิโตรเลียมอีเธอร์ใช้ตัว Ankom XT10(Ankom เทคโนโลยี พวก นิวยอร์ก สหรัฐอเมริกา) อาหาร ส่วนผสม และกรดอะมิโนอุจจาระถูกวัดตามการใช้กรดย่อยเป็นกรดอะมิโน Beckman 7300 วิเคราะห์และคอลัมน์หลัง derivitizationกับ ninhydrin (ห้องปฏิบัติการ AAA เมอร์เซอร์ไอส์แลนด์ วอชิงตัน สหรัฐอเมริกา)2.2.5. ย่อยสมการสัมประสิทธิ์การย่อยชัดเจนของแต่ละสารอาหารในอาหารทดสอบ และคำนวณตามสมการที่กำหนดขึ้น (ฟอร์สเตอร์ 1999; GDDYwereKleiber, 1961):ADCNdiet ¼ 100เครื่องหมาย%ðในอาหารสารอาหาร%ใน fecesÞเครื่องหมาย%ðในอุจจาระ%สารอาหารใน dietÞตารางที่ 1องค์ประกอบย่อยอาหารอ้างอิง (%แห้งน้ำหนัก) ติดตามเรนโบว์เทราท์%ส่วนผสมFloura ข้าวสาลี 28.3อาหารปลาหมึก 25.0ถั่วเหลืองโปรตีน concentrateb 17.1ปลา oilc 13.4ข้าวโพด meald ตัง 8.3ถั่วเหลือง meale 4.3วิตามินพรีมิกซ์ ARSf 1.0รตแอมโมเนียมเพ oxideg 1.0โคลี chlorideg 0.6Taurineh 0.5พัก-C 35i 0.2ติดตามแร่ premixj 0.1อิตเทรียม oxideg 0.1

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. วัสดุ andmethods
2.1 การทดลอง
สองการศึกษาได้ดำเนินการในการประเมินความเหมาะสมของ GDDY เป็น
แหล่งโปรตีนสำหรับเรนโบว์เทราท์ การศึกษาครั้งแรกประกอบไปด้วยในร่างกาย
การประเมินการย่อยการกำหนดค่าสัมประสิทธิ์การย่อยได้ชัดเจน
(ADCs) สำหรับโปรตีนไขมันและพลังงานและค่าสัมประสิทธิ์ความพร้อมที่ชัดเจน
(AACS) ให้กรดอะมิโนและฟอสฟอรัส การศึกษาที่สอง
ประกอบด้วยการทดลองให้อาหารเก้าสัปดาห์กับการเจริญเติบโตของสารอาหารที่
เก็บรักษา, การแปลงอาหารอร่อยอาหาร (กำหนดเป็นญาติ
ปริมาณอาหารที่กิน) และการย่อยอาหารเป็นตัวแปรตอบสนอง ปลาใน
การศึกษาเหล่านี้ถูกจัดการและรับการรักษาตามแนวทาง
การอนุมัติจากปลาและสัตว์ป่าบริการสหรัฐอเมริกา.
2.2 ในร่างกายส่วนผสมย่อยหาความ
2.2.1 การออกแบบการศึกษา
Themethods โช et al, (1982) และสำนัก et al, (1999) ถูกนำมาใช้
กับการแก้ไขเพิ่มเติมอธิบายไว้ด้านล่างเพื่อประเมิน ADCs ของ
GDDY ในเรนโบว์เทราท์ อาหารอ้างอิงที่สมบูรณ์ (ตารางที่ 1) การประชุม
หรือเกินความต้องการทางโภชนาการของทุกคนที่รู้จักเรนโบว์เทราท์
(สภาวิจัยแห่งชาติอาร์ซี 2011) กับอิตเทรียมออกไซด์ย่อย
เครื่องหมายถูกผสมกับส่วนผสมที่ทดสอบ (GDDY) ในอัตราส่วน 70:30
(แห้ง พื้นฐานน้ำหนัก) ทั้งอาหารการอ้างอิงและการทดสอบกำลังการผลิต
โดยการปรุงอาหารการอัดขึ้นรูป.
2.2.2 ปลา
ปลา (ประมาณ 300 กรัม± 23 กรัมค่าเฉลี่ย± SD น้ำหนักเริ่มต้น) ได้รับการ
เก็บไว้ในถังที่ 20 ปลาต่อถัง 200-L-Poly อุณหภูมิของน้ำที่
ถูกเก็บรักษาไว้ที่ 14 ° C ในระบบหมุนเวียน โคมไฟถูกเก็บรักษาไว้
บน 13:11 H วงจรรายวัน อาหารที่ถูกสุ่มให้
สามรถถังซ้ำของปลา ปลาเป็นอาหารวันละสองครั้งเพื่อป้อยอชัดเจน
เริ่มต้น 14 วันก่อนที่จะมีการเก็บอุจจาระครั้งแรก.
2.2.3 คอลเลกชันอุจจาระ
อุจจาระ fromfish ในแต่ละซ้ำ tankwere รับ bymanual ลอก
(Austreng, 1978) ในช่วงสั้น ๆ ปลาทั้งหมดในแต่ละถังตาข่ายอสัญญี
กับ MS-222 (tricaine methanesulfonate เคมีตะวันตก
บริษัท เฟิร์นเดล, Washington, USA) แห้งและความดันอ่อนโยนถูก
นำไปใช้กับพื้นที่ท้องลดลงในการแสดงอุจจาระเป็น
พลาสติกชั่งน้ำหนัก กระทะ การดูแลถูกนำตัวไปยกเว้นขับถ่ายปัสสาวะ
จากคอลเลกชัน อุจจาระถังได้รับการถูกแช่แข็งแห้ง
กับพื้นปูนและสากและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ -20 องศาเซลเซียสจนกว่าเคมี
วิเคราะห์ (อธิบายด้านล่าง) ได้ดำเนินการ.
2.2.4 วิธีการวิเคราะห์
Drymatter วิเคราะห์ส่วนผสมอาหารและ feceswas ปฏิบัติตาม
วิธีการมาตรฐาน (AOAC, 1995) อิตเทรียมและฟอสฟอรัส
ได้รับการพิจารณาในอาหารและอุจจาระโดย inductively คู่พลาสมา
อะตอม spectrophotometry ดูดซึมกรดไนตริกต่อไปนี้การย่อยอาหาร
(Anderson, 1996) โปรตีน (N × 6.25) ถูกกำหนดในส่วนผสม
อาหารและอุจจาระโดยวิธีมัส (AOAC, 1995) ใน Leco
determinator TruSpecNnitrogen (LECO คอร์ปอเรชั่นเซนต์โจเซฟ, Michigan,
USA) พลังงานทั้งหมดถูกกำหนดโดย isoperibol calorimetry ระเบิด
(6300 พาร์พาร์ตราสาร บริษัท อิงค์, Moline, อิลลินอยส์, สหรัฐอเมริกา) ไขมัน
ถูกกำหนดโดยสกัดปิโตรเลียมอีเทอร์ใช้ Ankom XT10
(Ankom Technologies, มาซีโดเนีย, New York, USA) อาหารส่วนผสมและ
กรดอะมิโนอุจจาระถูกวัดต่อไปนี้การย่อยสลายกรดใช้
วิเคราะห์กรดอะมิโนเบคค์ 7300 และ derivitization โพสต์คอลัมน์
กับ ninhydrin (AAA ห้องปฏิบัติการ, เกาะเมอร์เซอร์, WA, USA).
2.2.5 สมการการย่อยได้
ค่าสัมประสิทธิ์การย่อยได้ชัดเจนของสารอาหารแต่ละในอาหารการทดสอบและการ
GDDYwere คำนวณตามสมการจัดตั้ง (ฟอสเตอร์ 1999;
Kleiber, 1961):
ADCNdiet ¼ 100
% d เครื่องหมายในอาหาร? % สารอาหารในfecesÞ
Ðเครื่องหมาย% ในอุจจาระ? % สารอาหารในdietÞ
ตารางที่ 1
องค์ประกอบของอาหารอ้างอิงย่อย (% แห้งน้ำหนัก) เลี้ยง
เรนโบว์เทราท์.
ส่วนผสม%
ข้าวสาลี floura 28.3
ปลาหมึกอาหาร 25.0
โปรตีนถั่วเหลือง concentrateb 17.1
ปลา oilc 13.4
ตังข้าวโพด meald 8.3
ถั่วเหลือง meale 4.3
วิตามินพรีมิกซ์ ARSF 1.0
Chromic oxideg 1.0
โคลีน chlorideg 0.6
Taurineh 0.5
Stay-C 35i 0.2
แร่ธาตุ premixj 0.1
อิตเทรียม oxideg 0.1

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ2.1 . การทดลองสองการศึกษามีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินความเหมาะสมของ gddy เป็นแหล่งโปรตีนสำหรับเรนโบว์เทราท์เลค . การศึกษาแรกของชนิด ประกอบด้วยการประเมินสัมประสิทธิ์การย่อยได้ศึกษาค่าสัมประสิทธิ์( adcs ) โปรตีน ไขมัน และพลังงาน และแจ้งค่าว่าง( AACS ) กรดอะมิโน ฟอสฟอรัส การศึกษาที่สองประกอบด้วยเก้าสัปดาห์อาหารทดลองที่มีการเจริญเติบโต สารอาหารการเก็บรักษา การเปลี่ยนอาหารเป็นเนื้อ อาหารที่กิน ( ว่าเป็นญาติการบริโภคอาหาร ) , อาหารและการย่อยได้ว่าตัวแปรตอบสนอง ปลาในการศึกษาเหล่านี้ถูกจัดการ และปฏิบัติ ตามแนวทางอนุมัติโดยสหรัฐอเมริกาปลาและสัตว์ป่าให้บริการ .2.2 . โดยได้ใช้ส่วนผสม2.2.1 . การออกแบบการศึกษาวิธีการโช et al . ( 1982 ) และสำนัก et al . ( 1999 ) ถูกใช้ด้วยการเพิ่มการประมาณการของ adcs อธิบายไว้ด้านล่างgddy ในปลาเทราท์ . อาหารอ้างอิงที่สมบูรณ์ ( ตารางที่ 1 ) การประชุมทั้งหมดที่รู้จักกันหรือเกินความต้องการทางโภชนาการของปลาเทราท์( สภาวิจัยแห่งชาติ , NRC , 2011 ) ด้วยอิตเทรียมออกไซด์ย่อยเครื่องหมายถูกผสมกับส่วนผสม ( ทดสอบ gddy ) ในอัตราส่วน 70 : 30( น้ำหนักแห้ง ) ทั้งอ้างอิงและทดสอบอาหารที่ถูกผลิตโดยการอัดรีดอาหาร2.2.2 . ปลาปลา ( ประมาณ 300 กรัม± 23 กรัม หมายถึง± SD น้ำหนักเริ่มต้น )ที่เลี้ยงในถังต่อถัง 20 ปลา 200-l-poly . อุณหภูมิน้ำไว้ที่ 14 ° C ในพฤติกรรมของระบบ แสงรักษาบน : H ในรอบ อาหารทดลองแบบสุ่ม3 ทำซ้ำถังปลา ปลาเป็นอาหารวันละสองครั้งเพื่อความอิ่มอกอิ่มใจ ปรากฏเริ่มต้น 14 วัน ก่อนการเก็บอุจจาระก่อน2.2.3 . อุจจาระของคอลเลกชันอุจจาระ fromfish ในแต่ละซ้ำ tankwere ได้รับ bymanual ปอก( austreng , 1978 ) ในช่วงสั้น ๆ , ปลาในแต่ละถังตาข่ายยาสลบ ,กับ ms-222 ( tricaine methanesulfonate เคมี , ตะวันตกบริษัทเฟิร์นเดล , วอชิงตัน , สหรัฐอเมริกา ) , แห้งและความดันอ่อนโยน คือใช้พื้นที่ท้องลดลงแสดงอุจจาระเป็นน้ำหนักถาดพลาสติก การดูแลถูกเพื่อยกเว้นหรือจากการขับถ่ายปัสสาวะจากคอลเลกชัน ตัวอย่างอุจจาระให้แห้งถัง ,พื้นดินมีครกและสาก และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 20 ° C จนกระทั่งเคมี บริษัท เวสเทิร์นวิเคราะห์ ( อธิบายด้านล่าง ) แสดง2.2.4 . วิธีการเชิงวิเคราะห์การวิเคราะห์ drymatter ของส่วนผสมอาหารและ feceswas ดำเนินการตามวิธีการมาตรฐาน ( โปรตีน , 1995 ) อิตเทรียมและฟอสฟอรัสเป็นในอาหารและอุจจาระโดยอุปนัยคู่พลาสมาAtomic absorption วิธีต่อไปนี้ ไนตริก แอซิด การย่อยอาหาร( Anderson , 1996 ) โปรตีน ( n × 6.25 ) คือกำหนดในส่วนผสมอาหารและอุจจาระโดยวิธีดูมัส ( โปรตีน , 1995 ) ใน LECOtruspecnnitrogen determinator ( LECO Corporation , เซนต์โยเซฟ , มิชิแกนสหรัฐอเมริกา ) พลังงานทั้งหมดถูกกำหนดโดย isoperibol อุปกรณ์ควบคุมระเบิด( พาร์ 6300 , . อุปกรณ์ บริษัท อิงค์ โมลิน , Illinois , สหรัฐอเมริกา ) ลิพิดถูกกำหนดโดยการสกัดปิโตรเลียมอีเทอร์โดยใช้ ankom xt10( ankom Technologies , มาซิโดเนีย , นิวยอร์ก , สหรัฐอเมริกา ) อาหาร , ส่วนผสมและอุจจาระมีปริมาณกรดอะมิโนกรดการใช้ดังต่อไปนี้เบคแมน 7300 อะมิโนกรดและ derivitization คอลัมน์วิเคราะห์ โพสต์กับ ninhydrin ( ห้องปฏิบัติการ Mercer Island , วอชิงตัน , สหรัฐอเมริกา AAA )2.2.5 . การย่อยได้ของสมการสัมประสิทธิ์สัมประสิทธิ์การย่อยสารอาหารในอาหาร และทดสอบแต่ละgddywere คำนวณตามสมการ ( ฟอสเตอร์ , 1999 ; ตั้งขึ้นไคลเบอร์ , 1961 ) :adcndiet ¼ 100เครื่องหมายð % ในอาหาร % ธาตุอาหารในอุจจาระÞเครื่องหมายð % ในอุจจาระ % สารอาหารในอาหารÞตารางที่ 1องค์ประกอบของอาหารอ้างอิงได้น้ำหนัก ( % ) เลี้ยงปลาสายรุ้งส่วนผสม %floura ( ข้าวสาลีปลาหมึกอาหารพื้นฐานconcentrateb ไต โปรตีนถั่วเหลืองปลา oilc ส์ข้าวโพด gluten meald 8.3ถั่วเหลือง meale 4.3วิตามินรวม arsf 1.0โครมิ oxideg 1.0chlorideg 0.6 โคลีนtaurineh 0.5stay-c 35i 0.2แร่ธาตุ premixj 0.1อิตเทรียม oxideg 0.1