Arsenic, chromium, sulfur and phosp

Arsenic, chromium, sulfur and phosphorus analysis in plants
The harvested plants after 2 weeks of growth were separated
into aboveground (fronds) and belowground (roots þ rhizomes)
biomass. So the roots in this experiment actually included both
roots and rhizomes. To remove adsorbed As on the roots, PV roots
were placed under running distilled water, rinsed with ice cold
phosphate buffer (1 mM Na2HPO4, 10 mM MES and 0.5 mM
Ca(NO3)2, pH 5.7) and washed once again with distilled water.
Oven-dried (65 C for 2 d) frond and root samples were digested
with nitric acid and hydrogen peroxide for As, Cr and K analysis, or
nitric acid, hydrochloric acid and hydrogen peroxide for S analysis
on a hot block digester (Environmental Express, Mt. Pleasant, S.C.)
using USEPA Method 3050. Total As, Cr, K and S concentrations in
digested solution were analyzed by graphite furnace atomic absorption
spectrophotometry (GFAAS; AA240Z, Varian, Walnut
Creek, CA) and inductively-coupled plasma spectrometry (ICP;
PerkinElmer 5300DV, Waltham, MA) via EPA Method 2007.
To determine the amount of Cr and As precipitating on PV root
surfaces, plant roots (0.2 g) were washed in 50 ml 1:1 v/v HNO3 and
water for 20 min and the Cr and As concentrations in the supernatants
were determined using ICP and GFAAS.
For P analysis, plant samples were digested using the H2SO4/
H2O2 method (Jones et al., 1991). Because arsenate interferes with P
determination using the molybdenum blue method, P was determined
using a modified method of Carvalho et al. (1998). Briefly,
the pH of the digestion solution was adjusted to w5 with NaOH and
HCl. Ten milliliter of the solution was pipetted into a 20-ml glass
test tube, and to this 0.5 ml of L-cysteine (5% w/v in 0.6 M HCl) was
added. The test tube was capped tightly to allow arsenate reduction
for 5 min at 80 C. The solution was cooled to room temperature,
and P was measured spectrophotometrically at 880 nm using the
molybdenum blue reaction at a fixed time (20 min) following
addition of the color reagent. Elemental concentrations in plants
were expressed as dry weight unless specified otherwise.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วิเคราะห์สารหนู โครเมียม ซัลเฟอร์ และฟอสฟอรัสในพืชพืช harvested หลังจาก 2 สัปดาห์เจริญเติบโตได้แบ่งเป็น aboveground (fronds) และ belowground (รากเหง้าþ)ชีวมวล ดังนั้น รากในการทดลองนี้จริงรวมทั้งรากและเหง้า เอา adsorbed ตามราก ราก PVได้อยู่ภายใต้การทำน้ำกลั่น rinsed ด้วยน้ำแข็งเย็นฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (Na2HPO4 1 มม. 10 มม. MES และ 0.5 มม.Ca (NO3) 2, pH 5.7) และล้าง ด้วยน้ำกลั่นอีกครั้งเตาอบแห้ง (65 C สำหรับ 2 d) frond และรากอย่างถูกต้องกรดไนตริกและไฮโดรเจนเพอร์ออกไซด์สำหรับเป็น การวิเคราะห์ Cr และ K หรือกรดไนตริก กรดไฮโดรคลอริก และไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์สำหรับการวิเคราะห์ Sบน digester บล็อกร้อน (สิ่งแวดล้อมด่วน Pleasant ภูเขา เอส)ใช้ USEPA วิธี 3050 ความเข้มข้นรวมเป็น Cr, K และ S ในโซลูชันที่ต้องถูกวิเคราะห์ โดยการดูดกลืนโดยอะตอมของเตาเผาแกรไฟต์spectrophotometry (GFAAS AA240Z แล้วแต่กำหนด วอลนัทครีก CA) และพลาสม่าควบคู่ท่าน spectrometry (ICP5300DV PerkinElmer, Waltham, MA) ผ่านวิธีการ EPA 2007ค่า Cr และ เป็นปัจจัยในราก PVพื้นผิว รากพืช (0.2 กรัม) ถูกล้างใน 50 ml 1:1 v/v HNO3 และน้ำ 20 นาทีและ Cr ที่ เป็นความเข้มข้นในการ supernatantsได้กำหนดใช้ ICP และ GFAASสำหรับการวิเคราะห์ P ตัวอย่างพืชที่ต้องใช้กำมะถัน /วิธี H2O2 (Jones et al., 1991) เพราะ arsenate รบกวน Pdetermination using the molybdenum blue method, P was determinedusing a modified method of Carvalho et al. (1998). Briefly,the pH of the digestion solution was adjusted to w5 with NaOH andHCl. Ten milliliter of the solution was pipetted into a 20-ml glasstest tube, and to this 0.5 ml of L-cysteine (5% w/v in 0.6 M HCl) wasadded. The test tube was capped tightly to allow arsenate reductionfor 5 min at 80 C. The solution was cooled to room temperature,and P was measured spectrophotometrically at 880 nm using themolybdenum blue reaction at a fixed time (20 min) followingaddition of the color reagent. Elemental concentrations in plantswere expressed as dry weight unless specified otherwise.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สารหนูโครเมียมกำมะถันและการวิเคราะห์ฟอสฟอรัสในพืช
พืชเก็บเกี่ยวหลังจาก 2 สัปดาห์ของการเจริญเติบโตถูกแยก
ออกเป็นเหนือพื้นดิน (ใบ) และ belowground (รากเหง้า TH)
ชีวมวล ดังนั้นรากในการทดลองนี้จริงรวมทั้ง
รากและเหง้า การลบดูดซับในฐานะที่เป็นรากราก PV
ถูกวางไว้ภายใต้การใช้น้ำกลั่นล้างด้วยน้ำแข็งเย็น
ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (1 มิลลิ Na2HPO4 10 มิลลิ mes และ 0.5 มิลลิ
Ca (NO3) 2 ค่า pH 5.7) และล้างอีกครั้งด้วยน้ำกลั่น .
เตาอบแห้ง (65 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2 ง) เฟินและตัวอย่างรากถูกย่อย
ด้วยกรดไนตริกและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์สำหรับเป็นโครเมียมและการวิเคราะห์ K หรือ
กรดไนตริก, กรดไฮโดรคลอและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์สำหรับการวิเคราะห์ S
ในบล็อกร้อนบ่อหมัก (สิ่งแวดล้อม เอ็กซ์เพรส, Mt Pleasant, SC)
โดยใช้วิธี USEPA 3050. รวม ณ , Cr, K และ S มีความเข้มข้นใน
การแก้ปัญหาย่อยที่ได้มาวิเคราะห์โดยการดูดซึมเตาไฟท์อะตอม
spectrophotometry (GFAAS; AA240Z, Varian, วอลนัท
ครีก, CA) และพลาสม่า inductively คู่ spectrometry (ICP;
PerkinElmer 5300DV, เคมบริดจ์) ผ่าน EPA 2007 วิธี
การตรวจสอบปริมาณของโครเมียมและในฐานะที่ทำให้เกิดความวุ่นวายในราก PV
พื้นผิวรากพืช (0.2 กรัม) ถูกล้างใน 50 มล. 1: 1 ปริมาตร / ปริมาตร HNO3 และ
น้ำ สำหรับ 20 นาทีและ Cr และในฐานะที่เป็นความเข้มข้นใน supernatants
ได้รับการพิจารณาโดยใช้ ICP และ GFAAS.
สำหรับการวิเคราะห์ P, ตัวอย่างพืชที่ถูกย่อยสลายโดยใช้ H2SO4 /
วิธี H2O2 (โจนส์ et al., 1991) เพราะสารหนูรบกวน P
มุ่งมั่นโดยใช้วิธีโมลิบดีนัมสีฟ้า, P ถูกกำหนด
โดยใช้วิธีการแก้ไขของวัลโญ่, et al (1998) สั้น ๆ ,
ค่า pH ของการแก้ปัญหาการย่อยอาหารได้รับการปรับให้ W5 ด้วย NaOH และ
HCl สิบมิลลิลิตรของการแก้ปัญหาที่ถูกปิเปตลงในแก้ว 20 มล.
หลอดทดลองและในการนี้ 0.5 มิลลิลิตร L-cysteine ​​(5% w / v ใน 0.6 M HCl) ถูก
เพิ่ม หลอดทดลองถูกปกคลุมแน่นเพื่อให้การลดสารหนู
เป็นเวลา 5 นาทีที่ 80 องศาเซลเซียสวิธีการแก้ปัญหาที่ได้รับการระบายความร้อนที่อุณหภูมิห้อง,
และ P วัด spectrophotometrically ที่ 880 นาโนเมตรโดยใช้
โมลิบดีนัมปฏิกิริยาสีฟ้าในเวลาที่กำหนด (20 นาที) ตาม
การเพิ่มขึ้นของ สารสี ความเข้มข้นของธาตุในพืช
ถูกแสดงเป็นน้ำหนักแห้งนอกจากที่ระบุไว้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สารหนูโครเมียม กำมะถัน และการวิเคราะห์ฟอสฟอรัสในพืชปลูกพืชหลังการ

2 สัปดาห์ถูกแยกเป็นเหนือพื้นดิน ( fronds ) และ belowground ( รากเหง้าþ )
ชีวมวล ดังนั้นรากในการทดลองจริง รวมทั้ง
รากและเหง้า . เอาที่ดูดซับบนราก ราก PV
ถูกวางไว้ใต้ใช้น้ำกลั่นล้างกับเย็น
ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ( na2hpo4 1 มม. 10 เดือนมม. และ 0.5 มม.
CA ( 3 ) 2 , พีเอช 5.7 ) และล้างอีกครั้งด้วยน้ำสะอาดอบแห้ง ( 65 C .
2 D ) ทางใบและราก จำนวนย่อย
ด้วยกรดไนตริกและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์สำหรับการวิเคราะห์ CR และ K ,
กรดไนตริก , กรดไฮโดรคลอริค และไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์เพื่อวิเคราะห์
บนโดยบล็อกร้อน ( สิ่งแวดล้อม เอ็กซ์เพรส ที่น่ารื่นรมย์ ซี. )
ใช้กำหนดวิธีการ 050 . รวมเป็น , CR , K และ S ความเข้มข้นสารละลาย
ย่อยวิเคราะห์โดยวิธี Atomic absorption แกรไฟต์เตา
( gfaas ; aa240z โพ วอลนัตครีก ,
, CA ) และอุปนัยคู่พลาสมาสเปกโทรเมตรี ( ICP ;
Perkinelmer 5300dv Waltham , EPA , MA ) ผ่านวิธี 2007 .
หาปริมาณของโครเมียม และ เป็นดีใน PV
ผิวราก รากพืช ( 0