Agar disk diffusion based testing was performed at the Field Disease Investigation Unit, Washington State University College of Veterinary Medicine. Susceptibility was determined as described previously (Bauer et al., 1966). Isolates were cultured in brain heart infusion broth (Hardy Diagnostics, Santa Maria, CA) and adjusted to a McFarland Standard of 0.5. Bacterial lawns were streaked onto Mueller-Hinton agar plates (Hardy Diagnostics). Antibiotic disks (Hardy Diagnostics) containing the following antimicrobial agents were used: ampicillin [10 μg], amoxicillin-clavulanic acid [20 and 10 μg], chloramphenicol [30 μg], kanamycin [30 μg], gentamicin [10 μg], streptomycin [10 μg], trimethoprim-sulfamethoxazole [1.25 and 23.75 μg], tetracycline [30 μg]. After overnight incubation at 37°C inhibition zone diameters were read using a Fowler digital caliper (Newton, MA). Results have been reported previously (Hoelzer et al., 2010). Isolates were classified as resistant or susceptible using resistance breakpoints as reported by CLSI (Table 1) (NCCLS, 2003a, 2003b).
Agar disk diffusion based testing was performed at the Field Disease Investigation Unit, Washington State University College of Veterinary Medicine. Susceptibility was determined as described previously (Bauer et al., 1966). Isolates were cultured in brain heart infusion broth (Hardy Diagnostics, Santa Maria, CA) and adjusted to a McFarland Standard of 0.5. Bacterial lawns were streaked onto Mueller-Hinton agar plates (Hardy Diagnostics). Antibiotic disks (Hardy Diagnostics) containing the following antimicrobial agents were used: ampicillin [10 μg], amoxicillin-clavulanic acid [20 and 10 μg], chloramphenicol [30 μg], kanamycin [30 μg], gentamicin [10 μg], streptomycin [10 μg], trimethoprim-sulfamethoxazole [1.25 and 23.75 μg], tetracycline [30 μg]. After overnight incubation at 37°C inhibition zone diameters were read using a Fowler digital caliper (Newton, MA). Results have been reported previously (Hoelzer et al., 2010). Isolates were classified as resistant or susceptible using resistance breakpoints as reported by CLSI (Table 1) (NCCLS, 2003a, 2003b).
การแปล กรุณารอสักครู่..
แพร่ดิสก์วุ้นทดสอบตามที่ได้ดำเนินการที่โรคฟิลด์หน่วยสืบสวนมหาวิทยาลัยรัฐวอชิงตันวิทยาลัยสัตวแพทยศาสตร์ ความไวต่อการถูกกำหนดตามที่ระบุไว้ก่อนหน้านี้ (Bauer et al., 1966) แยกเลี้ยงในน้ำซุปแช่หัวใจสมอง (ฮาร์ดี้วินิจฉัยซานตามาเรีย, CA) และปรับให้มาตรฐาน McFarland 0.5 สนามหญ้าแบคทีเรียถูกลายลงบน Mueller-Hinton วุ้นแผ่น (ฮาร์ดี้วินิจฉัย) ดิสก์ยาปฏิชีวนะ (ฮาร์ดี้วินิจฉัย) ที่มียาต้านจุลชีพต่อไปนี้ถูกนำมาใช้: ampicillin [10 g] กรด amoxicillin-clavulanic [20 และ 10 g] chloramphenicol [30 ไมโครกรัม] kanamycin [30 ไมโครกรัม] gentamicin [10 g], streptomycin [10 g] trimethoprim-sulfamethoxazole [1.25 และ 23.75 ไมโครกรัม] tetracycline [30 ไมโครกรัม] หลังจากการบ่มค้างคืนที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเส้นผ่าศูนย์กลางบริเวณยับยั้งถูกอ่านได้โดยใช้คาลิเปอร์ดิจิตอลฟาวเลอร์ (นิวตัน, แมสซาชูเซต) ผลที่ได้รับรายงานก่อนหน้านี้ (Hoelzer et al., 2010) แยกถูกจัดให้เป็นทนหรือไวต่อการใช้จุดพักต้านทานตามการรายงานของ CLSI (ตารางที่ 1) (NCCLS, 2003a, 2003b)
การแปล กรุณารอสักครู่..
การทดสอบโดยใช้ดิสก์การกระจายอาหารที่สนามหน่วยสอบสวนโรค คณะสัตวแพทย์ มหาวิทยาลัยวอชิงตัน สเตท ารพิจารณาตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( บาวเออร์ et al . , 1966 ) สามารถเพาะเลี้ยงใน broth ( Hardy แบบ สมอง หัวใจ การตรวจวินิจฉัย ซานตามาเรีย , CA ) และปรับมาตรฐานให้แมคฟาร์แลนด์ 0.5แบคทีเรียสนามหญ้าลายลงบนแผ่นวุ้น มุลเลอร์ ฮินตัน ( Hardy วินิจฉัย ) ยาปฏิชีวนะดิสก์ ( Hardy Diagnostics ) ที่มีต่อยาต้านจุลชีพที่ใช้ : แอมพิ [ 10 μ g ] , amoxicillin clavulanic กรด [ 20 และ 10 μ g ] , chloramphenicol [ 30 μ g ] น [ 30 μ g ] , [ 10 μยา streptomycin g ] , [ 10 μ g ] , [ 1.25 ไตรเมโธพริมซัลฟาเมโทซาโซล 23.75 และ μ g ]เตตราไซคลิน 30 μ [ g ] หลังจากคืนบ่มที่ 37 ° C บริเวณยับยั้งทำการอ่านโดยใช้ Fowler Digital Caliper ( นิวตัน , MA ) ผลลัพธ์ที่ได้รายงานก่อนหน้านี้ ( Hoelzer et al . , 2010 ) ไอโซเลท จัด เป็น ป้องกัน หรือเสี่ยงต่อการต้านทานงานตามจุดต่างๆ ( ตารางที่ 1 ) ( 2003a แบรนด์ , , 2003b )
การแปล กรุณารอสักครู่..