2.6. In-Vitro Assay of Plant Extrac

2.6. In-Vitro Assay of Plant Extracts against Pyricularia grisea
The fungitoxic effect of different plant extracts in-vitro were studied by inoculating PDA with 14-day-old pure
cultures of P. grisea [19]. Small mycelia segments (5 mm) were made using a sterile 5 mm diameter cork borer.
Each mycelial segment was then transferred singly onto the centre of each PDAPE Petri dishes at 1%, 5%, 10%
and 25% concentrations (v/v). The PDA Petri dishes without plant extracts were used as negative control and
PDA mixed with Apron Star® 42 WS contained 20% Thiamethoxam, 20% Metalaxyl-M and 2% Difenoconazole,
trade names Cruiser and Actara were included as positive controls. The experiments were laid out in a split plot
in a randomized complete block design with rice blast as main plot and plant extracts as a subplots with 50
treatments (12 plant extracts with 4 different concentrations and 2 controls: Apron Star® 42 WS and distilled
water). The inoculated Petri dishes were sealed with masking tape and incubated at 28˚C - 32˚C for five days in
alternating cycles of 12 hours light and darkness to induce growth of P. grisea. Radial growth of P. grisea was
then recorded after every three days for up to 21 days after inoculation by measuring mycelial growth diameters
along two diagonal lines previously drawn on the reverse side of each Petri dish to serve as a reference, using a
30 cm plastic ruler to determine the effectiveness of plant extracts. Calculation of percent inhibition of fungal
J. Hubert et al.
605
growth was estimated based on Ogbeborand Adekunle [26] methods as follows: Percentage mycelial inhibition
= 100 (Mycelial growth diameter in control—Mycelial growth diameter in treatment)/Mycelial growth diameter
in control. The treatments that showed high percentage control in in-vitro by reducing P. grisea growth were selected and the experiments were repeated twice.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.6. ในหลอดทดลองทดสอบของสารสกัดจากพืชกับ Pyricularia griseaผล fungitoxic ของพืชต่าง ๆ สารสกัดจากมือมีศึกษา โดย inoculating PDA กับ 14-วันเก่าบริสุทธิ์วัฒนธรรมของ P. grisea [19] ส่วน mycelia เล็ก (5 มม.) ใช้เป็นหมัน 5 มม.เส้นผ่าศูนย์กลางไม้ก๊อกมอดทำแต่ละส่วนที่ mycelial แล้วโอนย้าย singly บนศูนย์กลางของแต่ละ PDAPE เพาะอาหาร 1%, 5%, 10%และความเข้มข้น 25% (v/v) อาหารเพาะ PDA โดยใช้สารสกัดจากพืชควบคุมค่าลบ และPDA ที่ผสมกับผ้ากันเปื้อน Star® 42 WS อยู่ 20% 20%, Thiamethoxam Metalaxyl M และ 2% Difenoconazoleชื่อทางการค้าเรือลาดตะเวณและ Actara ถูกรวมเป็นตัวควบคุมเชิงบวก การทดลองที่จัดทำในแผนแยกในการออกแบบบล็อกสุ่มสมบูรณ์ด้วยข้าวระเบิดเป็นพล็อตหลักและพืชแยกเป็น subplots กับ 50ทรีทเมนท์ (สารสกัดจากพืช 12 ความเข้มข้นแตกต่างกัน 4 และควบคุม 2: ผ้ากันเปื้อน Star® 42 WS และกลั่นน้ำ) ปิดผนึก ด้วยเทปกาว และรับการกกที่ 28˚C - 32˚C ห้าวันในจานเพาะ inoculatedสลับรอบแสง 12 ชั่วโมงและความมืดจะทำให้เกิดการเจริญเติบโตของ P. grisea เติบโตรัศมีของ P. griseaบันทึกหลังทุกวันสามถึง 21 วันหลังจากกักบริเวณ โดยการวัดเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญเติบโต mycelialตามแนวเส้นทแยงมุมสองก่อนหน้านี้ วาดที่ด้านหลังของแต่ละจานเป็นการอ้างอิง ใช้เป็นไม้บรรทัดพลาสติก 30 ซม.เพื่อตรวจสอบประสิทธิภาพของพืชสารสกัด การคำนวณเปอร์เซ็นต์การยับยั้งของเชื้อราJ. Hubert et al605เติบโตประมาณอิงวิธี Ogbeborand Adekunle [26] ดังนี้: เปอร์เซ็นต์การยับยั้ง mycelial= 100 (เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญเติบโต mycelial ในการควบคุม — เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญเติบโต Mycelial ในการรักษา) / Mycelial เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญเติบโตในการควบคุม เลือกวิธีการรักษาที่แสดงให้เห็นเปอร์เซ็นต์สูงควบคุมในในหลอดทดลอง โดยการลดการเจริญเติบโตของ P. grisea และการทดลองซ้ำกันสองครั้ง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.6 ในหลอดทดลอง Assay ของสารสกัดจากพืชกับ Pyricularia grisea
ผล fungitoxic ของสารสกัดจากพืชที่แตกต่างกันในหลอดทดลองได้รับการศึกษาโดยการฉีดวัคซีน PDA กับ 14 วันเก่าบริสุทธิ์
วัฒนธรรมของ P. grisea [19] ส่วนเส้นใยขนาดเล็ก (5 มิลลิเมตร) ถูกสร้างขึ้นมาโดยใช้การฆ่าเชื้อ 5 มิลลิเมตรหนอนเจาะขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางก๊อก.
แต่ละส่วนของเส้นใยจากนั้นก็ย้ายลำพังบนศูนย์กลางของแต่ละจาน PDAPE Petri ที่ 1%, 5%, 10%
และความเข้มข้น 25% (v / V ) อาหาร PDA Petri สารสกัดจากพืชโดยไม่ต้องถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุมเชิงลบและ
PDA ผสมกับผ้ากันเปื้อนStar® 42 WS ที่มีอยู่ 20% Thiamethoxam 20% คลุกเมล็ด-M และ 2% Difenoconazole,
ชื่อทางการค้าครุยเซอร์และ Actara ถูกรวมเป็นตัวควบคุมในเชิงบวก การทดลองออกมาวางในพล็อตแยก
ในแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์ด้วยระเบิดข้าวเป็นพล็อตหลักและสารสกัดจากพืชเป็นย่อย ๆ ที่มี 50
รักษา (12 สารสกัดจากพืชที่มี 4 ระดับความเข้มข้นแตกต่างกันและ 2 การควบคุม: ผ้ากันเปื้อนStar® 42 WS และกลั่น
น้ำ ) อาหารเลี้ยงเชื้อเชื้อถูกปิดผนึกด้วยเทปกาวและบ่มที่อุณหภูมิ 28C - 32C เป็นเวลาห้าวันใน
การสลับรอบของแสง 12 ชั่วโมงและความมืดที่จะทำให้เกิดการเจริญเติบโตของ P. grisea การเจริญเติบโตในแนวรัศมีของ P. grisea ถูก
บันทึกไว้แล้วหลังจากที่ทุกสามวันถึง 21 วันหลังจากการฉีดวัคซีนโดยการวัดขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญของเส้นใย
พร้อมสองเส้นทแยงวาดก่อนหน้านี้ในด้านหลังของแต่ละจานเลี้ยงเชื้อเพื่อใช้เป็นข้อมูลอ้างอิงโดยใช้
พลาสติก 30 ซม. ผู้ปกครองเพื่อตรวจสอบประสิทธิภาพของสารสกัดจากพืช การคำนวณการยับยั้งเชื้อราเปอร์เซ็นต์ของ
เจ . ฮิวเบิร์ตอัล
605
การเจริญเติบโตเป็นที่คาดกันขึ้นอยู่กับ Ogbeborand Adekunle [26] วิธีการดังต่อไปนี้: ร้อยละของเส้นใยยับยั้ง
= 100 (เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญของเส้นใยในการควบคุมการเจริญเติบโตของเส้นใยขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางในการรักษา) / เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญของเส้นใย
ในการควบคุม การรักษาที่แสดงให้เห็นว่าการควบคุมในเปอร์เซ็นต์ที่สูงในหลอดทดลองโดยการลดการเจริญเติบโตของ grisea พีได้รับการคัดเลือกและการทดลองที่ถูกซ้ำกันสองครั้ง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.6 ในนอร์เวย์ต้านเชื้อราของสารสกัดนาน 2 ชั่วโมงผล fungitoxic ของต่าง ๆ สารสกัดจากพืชในหลอดทดลอง ศึกษาโดยการฉีดวัคซีน PDA กับ 14 วัน เก่า แท้วัฒนธรรมของ P . นาน 2 ชั่วโมง [ 19 ] เส้นใยขนาดเล็กกลุ่ม ( 5 มม. ) ทำให้การเป็นหมัน 5 มม. เส้นผ่าศูนย์กลางไม้เจาะ .ของแต่ละส่วนถูกโอนไปยังศูนย์เดี่ยวของแต่ละ pdape จานเลี้ยงเชื้อที่ 1% , 5% , 10%และที่ความเข้มข้น 25% ( v / v ) PDA จานเพาะเลี้ยงโดยไม่ต้องใช้สารสกัดจากพืช เช่น การควบคุมและลบPDA ที่ผสมกับผ้ากันเปื้อนดาว® 42 WS ที่มีอยู่ 20% มี 20 % metalaxyl-m ไดฟีโนโคนาโซลและ 2 % ,ชื่อทางการค้า actara Cruiser และถูกรวมเป็นตัวควบคุมบวก วางแผนการทดลองแบบ Split plotในแผนการทดลองแบบ Randomized Complete Block Design กับข้าวระเบิดเป็นหลักวางแผนและสารสกัดจากพืชเป็น 50 ใบด้วยการรักษา ( 12 สารสกัดจากพืชที่มี 4 ระดับความเข้มข้น 2 การควบคุม : ผ้ากันเปื้อนดาว® 42 WS และกลั่นน้ำ ) ในจานเพาะเลี้ยงเชื้อได้ปิดผนึกด้วยเทปกาว และบ่มที่อุณหภูมิ 28 ˚ C - 32 ˚ C เป็นเวลา 5 วันในสลับวงจรของความมืดและแสงสว่าง 12 ชั่วโมง เพื่อให้เกิดการเจริญเติบโตของ P . นาน 2 ชั่วโมง . การเจริญเติบโตของรัศมีของหน้า นาน 2 ชั่วโมง คือแล้วบันทึกหลังจากทุกๆ 3 วัน ได้ถึง 21 วัน หลังการฉีดวัคซีน โดยวัดเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญตามสองแนวทแยงก่อนหน้านี้วาดบนด้านหลังของแต่ละจาน Petri เพื่อเป็นการอ้างอิงโดยใช้30 เซนติเมตร ไม้บรรทัดพลาสติก เพื่อศึกษาประสิทธิภาพของสารสกัดจากพืช การคำนวณเปอร์เซ็นต์การยับยั้งเชื้อราเจ ( et al .605การประมาณการตาม ogbeborand adekunle [ 26 ] วิธีการดังนี้ : ร้อยละของการยับยั้ง= 100 ( เส้นผ่าศูนย์กลางเจริญในการควบคุมการเจริญเติบโตของขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางเจริญรักษา )ในการควบคุม ทรีทเม้นต์เพื่อแสดงการควบคุมค่าในร่างกายโดยการลดของจำนวนหน้า นาน 2 ชั่วโมง และการทดลองซ้ำ 2 ครั้ง