Inhibition of mycelial growth of F.

Inhibition of mycelial growth of F. fujikuroi by isolated yeasts
was tested according to Zhang et al. (2010b) with minor modifications.
For the dual culture assay (F. fujikuroi + yeast), a loop of
2-day-old yeast cell suspension grown on NYDA (25 C) was
streaked on a 90 mm diameter Petri Dish with PDA at 30 mm from
the border. A 8 mmmycelium disk of F. fujikuroi, grown on Komada
(1975) at 25 C for 5 days was put at 26 mm from the opposite border
and at 26 mm from the yeast streak. For single culture assay, a
mycelium disk of F. fujikuroi was put on PDA plate as a control.
Three replicates were used both for dual and single culture assays.
Plates were incubated at 25 C for 10 days for daily observations of
the mycelial growth of F. fujikuroi. Inhibition of F. fujikuroi growth
was measured as percentage inhibition of radial growth (PIRG) following
the formula (Fokkema, 1976): R1  R2/R1  100, where R1
corresponds to the radial growth of the fungus towards opposite
site, and R2 corresponds to the radial growth of the fungus towards
the antagonist.
The biocontrol efficacy of the yeast strains was also tested on
seeds naturally infected by F. fujikuroi in Petri dishes. Rice seeds
were immersed in 1% NaOCl for 5 min, washed under tap water,
and air-dried. Cell suspensions for seed treatment were prepared
by growing the selected yeast strains in YEMS (Spadaro et al.,
2010) at 25 C for 48 h on a rotary shaker (200 rpm). Cells were collected
by centrifugation at 5000g for 10 min, re-suspended in Ringer
solution, quantified with a Bürker chamber to reach a standard
concentration of 108 cells ml1. The seeds were then immersed in
the antagonist suspension on a rotary shaker at 90 rpm for
15 min, air dried, and placed in Petri dishes with Komada medium.
Twenty-five seeds were placed per Petri dish and three dishes were
prepared per treatment. The dishes were kept at 25 C for 5 and
10 days to evaluate visually and under light microscope the infection
rate by F. fujikuroi. The biocontrol efficacy test on seeds was
carried out twice.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ยับยั้งการเจริญเติบโต mycelial ของ F. fujikuroi โดยยีสต์ที่แยกถูกทดสอบตาม Zhang et al. (2010b) การแก้ไขเล็กน้อยสำหรับการทดสอบสองวัฒนธรรม (F. fujikuroi + ยีสต์), การวนรอบของแก้ไขระงับเซลล์ยีสต์ 2 วันเก่าที่ปลูกบน NYDA (25 C)ลายบนขนาด 90 มม.จานกับ PDA ที่ 30 มม.จากเขตแดน ดิสก์ 8 mmmycelium ของ F. fujikuroi ปลูกบน Komada(1975) ที่ 25 C 5 วันย้ายที่ 26 มม.จากชายแดนตรงข้ามและ 26 มม.จากแนวยีสต์ สำหรับวัฒนธรรมเดี่ยวทดสอบ การยังดิสก์ของ F. fujikuroi ถูกวางบนแผ่น PDA เป็นตัวควบคุมเหมือนกับสามใช้ทั้งคู่ และเดี่ยววัฒนธรรม assaysแผ่นได้รับการกกที่ 25 C 10 วันสังเกตชีวิตประจำวันของการเติบโต mycelial ของ F. fujikuroi ยับยั้งการเติบโต fujikuroi F.โดยวัดเป็นเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการเจริญเติบโตรัศมี (PIRG) ดังต่อไปนี้สูตร (Fokkema, 1976): R1 R2/R1 100 ที่ R1สอดคล้องกับการเติบโตของเชื้อราต่อตรงข้ามรัศมีเว็บไซต์ และ R2 ตรงกับรัศมีเจริญเติบโตของเชื้อราต่อเป็นปฏิปักษ์นอกจากนี้ยังทดสอบประสิทธิภาพ biocontrol ของสายพันธุ์ยีสต์บนเมล็ดตามธรรมชาติเชื้อ F. fujikuroi ในอาหารเพาะ เมล็ดข้าวถูกแช่อยู่ใน 1% NaOCl 5 นาที ล้างใต้น้ำและ air-dried สารแขวนลอยเซลล์การรักษาเมล็ดพันธุ์เตรียมไว้โดยการปลูกสายพันธุ์ยีสต์ที่เลือกใน YEMS (Spadaro et al.,2010) 25 c เป็นเวลา 48 ชั่วโมงในการหมุนปั่น (200 rpm) เซลล์ที่ถูกเก็บรวบรวมโดยการหมุนเหวี่ยงที่ 5000g 10 นาที การระงับในเสียงกริ่งแก้ปัญหา มีห้อง Bürker ไปถึงมาตรฐานวัดความเข้มข้นของเซลล์ 108 มิลลิลิตร 1 เมล็ดแล้วถูกแช่อยู่ในการระงับศัตรูบนปั่นแบบโรตารี่ที่ 90 รอบต่อนาที15 นาที อากาศแห้ง และวางลงในอาหารเพาะมี Komada ปานกลางวางอยู่ยี่สิบห้าเมล็ดต่อจาน และอาหารเช้า 3เตรียมพร้อมต่อการรักษา อาหารถูกเก็บไว้ที่ 25 C 5 และ10 วันเพื่อประเมินภาพ และภาย ใต้กล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงการติดเชื้ออัตรา โดย F. fujikuroi การทดสอบประสิทธิภาพ biocontrol บนเมล็ดไม่ดำเนินการสองครั้ง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ยับยั้งการเจริญเติบโตของเส้นใยของเอฟ fujikuroi โดยยีสต์บางแห่ง
ได้รับการทดสอบตาม Zhang et al, (2010b) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย.
สำหรับการทดสอบวัฒนธรรมคู่ (เอฟ fujikuroi + ยีสต์) วงของ
เซลล์แขวนลอยยีสต์ 2 วันเก่าที่ปลูกใน Nyda (25 องศาเซลเซียส) คือ
ลายบน 90 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลางจาน Petri กับ PDA วันที่ 30 มมจาก
ชายแดน ดิสก์ 8 mmmycelium ของเอฟ fujikuroi ที่ปลูกบน Komada
(1975) อยู่ที่ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 วันถูกนำ 26 มมจากชายแดนตรงข้าม
และ 26 มมจากแนวยีสต์ สำหรับการทดสอบวัฒนธรรมเดียว
ดิสก์เส้นใยของเอฟ fujikuroi ถูกวางลงบนแผ่น PDA เป็นตัวควบคุม.
สามถูกนำมาใช้ซ้ำทั้งคู่และเดี่ยวชุดตรวจวัฒนธรรม.
แผ่นถูกบ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 วันในการสังเกตชีวิตประจำวันของ
การเจริญเติบโตของเส้นใย ของเอฟ fujikuroi ยับยั้งการเจริญเติบโตของเอฟ fujikuroi
วัดเป็นเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการเจริญเติบโตของรัศมี (PIRG) ตาม
สูตร (Fokkema, 1976) นี้: R1? R2 / R1? 100 ที่ R1
สอดคล้องกับการเจริญเติบโตของเชื้อรารัศมีไปทางตรงข้าม
สถานที่และ R2 สอดคล้องกับการเจริญเติบโตของเชื้อรารัศมีต่อ
ศัตรู.
ประสิทธิภาพการควบคุมทางชีวภาพของยีสต์สายพันธุ์นอกจากนี้ยังได้รับการทดสอบ
เมล็ดติดเชื้อตามธรรมชาติโดยเอฟ fujikuroi ใน Petri อาหาร เมล็ดข้าว
ที่ถูกแช่อยู่ใน 1% NaOCl เป็นเวลา 5 นาทีล้างภายใต้น้ำประปา
และอากาศแห้ง เซลล์แขวนลอยสำหรับการรักษาเมล็ดพันธุ์ได้จัดทำขึ้น
โดยการปลูกสายพันธุ์ยีสต์ที่เลือกใน YEMS (Spadaro et al.,
2010) อยู่ที่ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมงในเครื่องปั่นแบบหมุน (200 รอบต่อนาที) เซลล์ที่ถูกเก็บรวบรวม
โดยการหมุนเหวี่ยงที่ 5000G เป็นเวลา 10 นาทีอีกครั้งที่ลอยอยู่ใน Ringer
วิธีการแก้ปัญหาที่มีปริมาณห้องBürkerไปถึงมาตรฐาน
ความเข้มข้นของเซลล์ 108 มล. 1 เมล็ดแช่แล้วใน
การระงับศัตรูในเครื่องปั่นแบบหมุนที่ 90 รอบต่อนาทีสำหรับ
15 นาที, อากาศแห้งและวางไว้ในจานเลี้ยงเชื้อที่มีขนาดกลาง Komada.
ยี่สิบห้าเมล็ดถูกวางไว้ต่อจานเลี้ยงเชื้อและสามอาหารที่ถูก
จัดทำขึ้นต่อการรักษา จานจะถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 และ
10 วันในการประเมินสายตาและภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสงติดเชื้อ
อัตราโดยเอฟ fujikuroi การทดสอบประสิทธิภาพการควบคุมทางชีวภาพในเมล็ดได้รับการ
ดำเนินการเป็นครั้งที่สอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การยับยั้งการเจริญของยีสต์ โดยแยก fujikuroi Fถูกทดสอบตาม Zhang et al . ( 2010b ) ที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อยสำหรับวัฒนธรรมสอง assay ( F . fujikuroi + ยีสต์ ) , ห่วงของ2-day-old เซลล์ยีสต์แขวนลอยที่ปลูกใน nyda ( 25 C )ลายบน 90 มม. เส้นผ่าศูนย์กลางจานแก้วกับ PDA ที่ 30 มม. จากชายแดน 8 mmmycelium ดิสก์ของ F . fujikuroi ปลูกโคมาดะ( 1975 ) ที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 วัน วางที่ 26 มม. จากชายแดนตรงข้ามและที่ 26 มม. จากยีสต์นะ ใช้วัฒนธรรมเดี่ยวเส้นใยของดิสก์ . fujikuroi วางอยู่บนจาน PDA เป็นตัวควบคุมสามแบบใช้ทั้งคู่และเดี่ยววัฒนธรรม ) .แผ่นอุณหภูมิ 25 C เป็นเวลา 10 วัน เพื่อสังเกตทุกวันการเจริญของ F . fujikuroi . การยับยั้งการเจริญเติบโตของ fujikuroi Fวัดเป็นเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการเจริญเติบโตของรัศมี ( pirg ) ดังต่อไปนี้สูตร ( fokkema , 1976 ) : R1 R1 R1 R2 / 100 ที่สอดคล้องกับการเจริญเติบโตของเชื้อราต่อ ตรงข้าม รัศมีเว็บไซต์และ R2 สอดคล้องกับการเจริญเติบโตของเชื้อราที่มีรัศมีพวกปฏิปักษ์โดยไบโอคอนโทรลประสิทธิภาพของสายพันธุ์ยีสต์ก็ทดสอบในเมล็ดตามธรรมชาติที่ติดเชื้อโดย F . fujikuroi ในจานเพาะเลี้ยง เมล็ดพันธุ์ข้าวถูกแช่อยู่ใน 1% ไม่ระบุนาน 5 นาทีล้างภายใต้น้ำประปาและอากาศแห้ง เซลล์แขวนลอยเพื่อรักษาเมล็ดพันธุ์ที่เตรียมไว้โดยการคัดสรรสายพันธุ์ยีสต์ที่เหมาะสมใน yems ( spadaro et al . ,2010 ) ที่อุณหภูมิ 25 C 48 H บนเครื่องปั่น Rotary ( 200 รอบต่อนาที ) เซลล์มีการรวบรวมโดยการปั่นเหวี่ยงที่ 5000g 10 นาทีจะแขวนลอยในสั่นโซลูชั่น quantified กับ B ü rker ห้องให้ได้มาตรฐานความเข้มข้นของ 108 เซลล์ ml1 . แล้วแช่ในเมล็ดศัตรูแขวนในเครื่องปั่นหมุนที่ 90 รอบต่อนาที15 นาที อากาศแห้งและวางไว้ในจานเลี้ยงเชื้อกับโคมาดะ )ยี่สิบห้าเมล็ดถูกวางไว้ต่อจานเพาะเชื้อและสามจานพวกนี้เตรียมต่อ การรักษา อาหารที่ถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 และ10 วันเพื่อประเมินสายตาและกล้องจุลทรรศน์ การติดเชื้อคะแนนโดย F . fujikuroi . การทดสอบประสิทธิภาพไบโอคอนโทรลเมล็ดคือออกไปสองครั้ง