CLSM of BF01mut colonizing plant tissues.
(A) Surface of maize roots and,
(B) junction area, adjacent to an emerging root hair. The bacteria grew around the root hair base. Images 3A and B were taken eight days after inoculation.
(C) Arabidopsis primary root tip,
(D) Arabidopsis root hair. Images 3C and D were taken seven days after inoculation.
(E) Lemna root covered by FB01mut biofilm.
(F) Lemna frond, ventral side, colonized by FB01mut. Images 3E and F were taken nine days after inoculation.
Moreover, during prolonged incubation time (around nine days)dense biofilms consisting of shorter, compact cells were formed.During this process cell shape altered from rod- to dumpy barrel or square-like structure
After eight days of growing in MS soft agar at room temperature,the primary root of Z. mays was grown rapidly up to a length of 20 cm. A segment of the primary root, located around 2–8cm distant from the root tip, a region especially rich on emerging lateral roots, was found heavily colonized by FB01mut, which formed micro-colonies onto surface of outer epidermis cells of the primary root (Fig. 4A) and at the junctions of primary root and lateral roots(Fig. 4B). In general, GFP labeled bacteria were detected in decreasing density towards root tip. A phenomenon previously reported for tomato root colonization by P. fluorescens (Chin-A-Woeng et al.,1997). Transmission electron microscopy (TEM) from cross sections of maize primary root, revealed that bacterial cells colonized surface of the root as biofilm (Davey and O’Toole, 2000) by forming
several cell layers on it (Fig. 4A). Thickness of the layer did not exceed 2–3m as revealed by computer aided 3D-analysis of the TEM images. Whilst FZB42 and FB01mut, respectively, when colonizing maize roots, colonized preferentially base and adjacent parts of primary root including the junction between root epidermis and root hairs (Fig. 4D), the same bacteria, when applied to Arabidopsis plantlets, colonized plant roots in a different mode. Here, primary
root tip and the tip area of emerging lateral roots and root hairs were preferred targets of colonization by FZB42 and its derivative FB01mut (Fig. 4C and D). On surface of Arabidopsis roots, a significant portion of colonizing bacteria grew in patches along grooves
or niches formed at the border regions of adjacent epidermis cells.Growth within this physically protected area might lead to a more intimate contact to root surface which could result in better utilization of nutrients excreted by the root.B. amyloliquefaciens colonized too the roots and the ventral side of L. minor fronds. Bacterial colonization started at root tips, and
at the junction linking fronds and roots, where micro-colonies became visible 24 h after inoculation. During following days, bacterial micro-colonies spread over whole surface of fronds and roots. Colonization of Lemna culminated in forming of a local biofilm that covered surface of Lemna root (Fig. 4E). Notably, nine days after inoculating, nearly the whole ventral side of Lemna fronds was found colonized by Bacillus cells (Fig. 4F) suggesting that fronds
are preferred sites of bacterial colonization.
clsm ของ bf01mut colonizing เนื้อเยื่อพืช
( )
พื้นผิวของรากข้าวโพดและ ( B ) พื้นที่รอยต่อติดกับอินเดียเป็นรากผม แบคทีเรียที่เติบโตรอบ ๆรากขนฐาน ภาพ 3A และ B ถ่าย 8 วันหลังจากปลูกเชื้อ
( C ) Arabidopsis หลักรากปลาย
( D ) ราก Arabidopsis ของผม ภาพที่ 3 C และ D ได้เจ็ดวันหลังจากที่ได้รับ .
( e ) บริการ fb01mut รากปกคลุมด้วยฟิล์ม .
( ฉ ) บริการทางใบ หน้าด้าน ปกครองโดย fb01mut . ภาพ 3E และ F ถูกเก้าวันหลังจากปลูกเชื้อ
นอกจากนี้ ในระหว่างเวลาในการบ่มนาน ( ประมาณเก้าวัน ) หนาแน่นไบโอฟิล์มประกอบด้วยสั้น กระชับเซลล์ขึ้น ในระหว่างขั้นตอนนี้เซลล์รูปร่างเปลี่ยนแปลงจาก Rod - ม่อต้อบาร์เรลหรือตารางเช่นโครงสร้าง
หลังจากแปดวันของการเติบโตในอาหาร MS นุ่มที่อุณหภูมิห้องรากหลักของซี เมย์ก็เติบโตขึ้นอย่างรวดเร็วถึงความยาว 20 ซม. ส่วนของรากปฐมภูมิตั้งอยู่ประมาณ 2 – 8 ห่างจากปลายรากฟัน ภูมิภาคโดยเฉพาะอุดมไปด้วยรากด้านข้างใหม่ พบมากเมืองขึ้น fb01mut ซึ่งก่อตั้งอาณานิคมบนพื้นผิวด้านนอกของหนังกำพร้าไมโครเซลล์ของรากปฐมภูมิ ( รูปที่ 4 ) และในช่วงของรากและรากปฐมภูมิ ( รูปด้านข้าง4B ) โดยทั่วไปพบว่าแบคทีเรีย GFP ลดลงความหนาแน่นต่อปลายราก เป็นปรากฏการณ์ที่ก่อนหน้านี้รายงานการรากมะเขือเทศโดย P . fluorescens ( chin-a-woeng et al . , 1997 ) กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนแบบส่องกราด ( TEM ) จากข้ามส่วนของรากข้าวโพด ประถมศึกษา พบว่า เซลล์แบคทีเรียประเภทผิวของรากเป็นฟิล์ม ( เดวี่ และ AMD , 2000 ) โดยสร้าง
หลายเซลล์ชั้นนั้น ( รูปที่ 4 ) ความหนาของชั้น ไม่เกิน 2 - 3 M พบว่าโดยการใช้คอมพิวเตอร์ช่วยวิเคราะห์แบบ 3 มิติของภาพ และในขณะที่ fzb42 fb01mut ตามลำดับ เมื่อเข้ายึดครองอาณานิคม preferentially รากข้าวโพด ฐานและส่วนที่ติดกันของรากปฐมภูมิ ได้แก่ การเชื่อมต่อระหว่างใบ ราก และรากขน ( รูป 4D ) , แบคทีเรียเหมือนกันเมื่อใช้กับต้น Arabidopsis ตกเป็นเมืองขึ้น , รากพืชในโหมดที่แตกต่างกัน ที่นี่ , ปลายรากปฐมภูมิ
และทิปพื้นที่ด้านข้างเกิดราก และขนรากเป็นเป้าหมายของการล่าอาณานิคมโดย fzb42 ที่ต้องการและอนุ fb01mut ( ภาพที่ 4C และ D ) บนพื้นผิวของราก Arabidopsis ส่วนสําคัญของแบคทีเรียที่เติบโตในแพทช์ตามร่อง colonizing
หรือ niches เกิดขึ้นในพื้นที่ชายแดนของผิวหนังเซลล์ที่อยู่ติดกัน การเจริญเติบโตภายในร่างกายนี้ปกป้องพื้นที่อาจนำไปสู่การติดต่ออย่างใกล้ชิดกับผิวรากฟัน ซึ่งอาจส่งผลดีกว่าการใช้สารอาหารที่ขับโดยราก . . amyloliquefaciens colonized ด้วยรากและด้านล่างของ L . ผู้เยาว์ fronds . กลุ่มแบคทีเรียที่รากและ
เริ่มเคล็ดลับที่แยกการเชื่อมโยง fronds และราก ซึ่งไมโครอาณานิคมกลายเป็นมองเห็นได้ 24 ชั่วโมงหลังจากการฉีดวัคซีน ในช่วงต่อไปนี้วัน เชื้อไมโครอาณานิคมกระจายไปทั่วพื้นผิวทั้งหมดของ fronds และราก การตั้งอาณานิคมของบริการ culminated ในรูปของไบโอฟิล์มท้องถิ่นที่ครอบคลุมพื้นผิวของราก ( ภาพบริการ 4E ) โดย เก้าวัน หลังการฉีดวัคซีน ,เกือบทั้งหมดของ fronds ) ด้านบริการพบเมืองขึ้นในเซลล์ ( รูปที่แทนที่ ) บอกว่า fronds
ที่ต้องการเว็บไซต์ของกลุ่มแบคทีเรีย .
การแปล กรุณารอสักครู่..