Surface coating effectively reduced

Surface coating effectively reduced early peel
spotting in 'Sucrier' banana. Surface coatings at 25%
and 30% also inhibited changes in colour, firmness,
and eating quality. this indicated an inhibition of
ripening. In contrast, 20% surface coating did not
affect these attributes, thus apparently did not impair
ripening. The coatings at 25% and 30% are not
feasible, as they induced off-flavour (30% wax) or reduced the eating quality (25% wax). Therefore,
further tests only used coating treatment at 20%,
besides the control.
Surface coatings seem to act like a plastic film.
It has been found previously to limit gas exchanges
of ripening banana (Amarante & Banks 2001). The
effect of surface coating on early peel spotting might
be the result of reduced flow of oxygen from the
atmosphere to the cells at the peel surface. this might
reduce the oxygen levels in the cells. Choehom et
al. (2004) reported that exogenous oxygen levels
lower than 5% were effective in controlling early
peel spotting in 'Sucrier' banana.
Browning or blackening in plant tissues seems
the result of oxidation of free phenolics. Part of this oxidation seems non-enzymatic, part is catalysed
by PPO (Martinez & Whitaker 1995). PPO plays
an important role in browning in several plant
tissues (Mayer & Harel 1991). However, despite the
difference in peel spotting, there was no difference in
PPO activity between control fruit and fruit treated
with 20% surface coating. Similarly, PPO activity
was not correlated with peel spotting in tests where
spotting was inhibited by oxygen levels below 5%
(Choehom et al. 2004). Weaver & Charley (1974)
also reported that there was no relationship between
PPO activity and browning of banana pulp. PPO
activity is measured in vitro, under conditions
whereby oxygen is not limiting the reaction rate.
Lack of correlation with PPO activity thus indicates
that the potential PPO activity is not limiting the
degree of blackening. The PPO reaction rate in vivo
will depend on at least two factors other than those
measured in vitro: the substrate concentration and
oxygen partial pressure.
Various isoforms of PPO may have different
substrate specificities. We used catechol as a
substrate. This compound is the substrate for PPO
in many tissues of fruits and vegetables (Vâmos-
Vigyâzo 1981). Therefore, we assume that catechol
also provided a suitable substrate to measure PPO
activity in banana peel. The main PPO substrate
depends on the commodity. For example, flavan-3-ol
monomers and dimers are the main PPO substrates
in litchi (Zhang et al. 2000), 3,4-dihydroxyphenyl
alanine (DOPA) is a substrate for PPO in potato
(Chen et al. 1991), /7-coumaryl and caffeoyl-tartaric
acid are substrate for PPO in grape, and chlorogenic
acid is a substrate for PPO in peach and nectarine
(Cheng & Crisosto 1995).
PAL promotes the synthesis of free phenolics
(Camm & Towers 1973). We observed a positive
relationship between early peel spotting and PAL
activity. Low PAL activity might be related with
low free phenolics levels, if the free phenolics
would accumulate. However, no consistent effect
was observed of the 20% surface coating on levels
of free phenolics.
It is concluded that surface coatings considerably
reduced early peel spotting in 'Sucrier' banana and
that this effect was accompanied by a lower PAL
activity. There was no relationship between peel
spotting and PPO activity measured in vitro. We
suggest that the delay of peel spotting, after coating,
might be related to reduced oxygen diffusion into
the peel.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เคลือบผิวลดเปลือกต้นส่องในกล้วย 'Sucrier' เคลือบผิวที่ 25%และ 30% นอกจากนี้ยังยับยั้งการเปลี่ยนแปลงในสี แน่นและรับประทานอาหารคุณภาพ นี้ระบุการยับยั้งการสุก คมชัด เคลือบผิว 20% ไม่ได้มีผลต่อคุณลักษณะเหล่านี้ จึงเห็นได้ชัดว่าไม่ได้เสียหายไม่สุก ไม่ได้เคลือบที่ 25% และ 30%กระทำ เกิดออกรส (ขี้ผึ้ง 30%) หรือลดคุณภาพอาหาร (ขี้ผึ้ง 25%) ดังนั้นการ ทดสอบใช้รักษาเคลือบ 20%นอกจากการควบคุมเคลือบพื้นผิวดูเหมือนจะ ทำหน้าที่เหมือนฟิล์มพลาสติกมันพบก่อนหน้านี้ในการจำกัดการแลกเปลี่ยนก๊าซของสุกกล้วย (โรงแรมอามาร็องชองและธนาคาร 2001) การผลของการเคลือบผิวบนส่องเปลือกต้นอาจผลของการไหลที่ลดลงของออกซิเจนจากการบรรยากาศเซลล์ที่ผิวเปลือก นี้อาจลดระดับออกซิเจนในเซลล์ Choehom ร้อยเอ็ดal. (2004) รายงานว่า ออกซิเจนภายนอกระดับต่ำกว่า 5% มีประสิทธิภาพในการควบคุมก่อนเปลือกที่ส่องในกล้วย 'Sucrier'ดูเหมือนว่าเกรียม หรือกลายเป็นสีดำในเนื้อเยื่อพืชผลของการเกิดออกซิเดชันของ phenolics ฟรี ส่วนหนึ่งของการเกิดออกซิเดชันนี้ดูเหมือนไม่ใช่เอนไซม์ catalysed ส่วนโดย PPO (มาร์ติเนและวิทเทเกอร์ 1995) เล่น PPOบทบาทสำคัญในการเกิดสีน้ำตาลในพืชหลายเนื้อเยื่อ (เมเยอร์และ Harel 1991) อย่างไรก็ตาม แม้มีการความแตกต่างในเปลือกส่อง มีความแตกต่างไม่PPO กิจกรรมควบคุมผลไม้และผลไม้ที่รับการรักษา20% เคลือบผิว ในทำนองเดียวกัน PPO กิจกรรมไม่ถูกความสัมพันธ์กับเปลือกที่ส่องในการทดสอบที่จำถูกยับยั้ง โดยระดับออกซิเจนต่ำกว่า 5%(Choehom et al. 2004) ช่างทอผ้าและสัมพันธ์ (1974)ยัง มีรายงานว่า มีความสัมพันธ์ใด ๆ ระหว่างกิจกรรม PPO และเกรียมเยื่อกล้วย PPOกิจกรรมวัดในหลอดทดลอง ภายใต้เงื่อนไขโดยออกซิเจนคือไม่จำกัดอัตราของปฏิกิริยาขาดความสัมพันธ์กับกิจกรรม PPO จึงบ่งชี้ที่ไม่มีการจำกัดกิจกรรม PPO มีศักยภาพการระดับของการกลายเป็นสีดำ อัตราปฏิกิริยา PPO ในสัตว์ทดลองจะขึ้นกับการใช้งานที่นอกเหนือจากที่วัดในหลอดทดลอง: ความเข้มข้นของพื้นผิว และความดันออกซิเจนบางส่วนIsoforms ต่าง ๆ ของ PPO อาจแตกต่างกันพื้นผิวจำเพาะ เราใช้ catechol เป็นการพื้นผิว สารนี้มีพื้นผิวสำหรับ PPOในเนื้อเยื่อต่าง ๆ ผลไม้และผัก (Vâmos-ทาง Vigyâzo ที่ 1981) ดังนั้น เราสมมติว่า catecholยัง มีพื้นผิวที่เหมาะสมวัด PPOกิจกรรมในเปลือกกล้วย พื้นผิว PPO หลักขึ้นอยู่กับสินค้าที่ซื้อขาย เช่น flavan-3-olอสามารถ dimers มีพื้นผิว PPO หลักในลิ้นจี่ (Zhang et al. 2000), 3, 4-dihydroxyphenylอะลานีน (DOPA) เป็นพื้นผิวสำหรับ PPO ในมันฝรั่ง(Chen et al. 1991), /7-coumaryl และ caffeoyl tartaricกรดมีพื้นผิวสำหรับ PPO ในองุ่น และขึ้นกรดเป็นพื้นผิวสำหรับ PPO ในและคะแนน(เฉิงและ Crisosto 1995)PAL ส่งเสริมการสังเคราะห์ของ phenolics ฟรี(Camm & ทาวเวอร์ 1973) เราสังเกตเห็นบวกความสัมพันธ์ระหว่างต้นเปลือกส่องและ PALกิจกรรม กิจกรรม PAL ต่ำอาจเกี่ยวข้องกับต่ำระดับ phenolics ฟรี หาก phenolics ฟรีจะสะสม อย่างไรก็ตาม ไม่มีผลที่สอดคล้องกันเป็นที่สังเกตของเคลือบผิว 20% ในระดับของฟรี phenolicsมันคือสรุปที่ผิวเคลือบมากลดลงช่วงต้นเปลือกจำใน 'Sucrier' กล้วย และว่า ผลนี้มา โดย PAL ต่ำกิจกรรม มีความสัมพันธ์ใด ๆ ระหว่างเปลือกส่องและกิจกรรม PPO วัดในหลอดทดลอง เราแนะนำให้การหน่วงเวลาของเปลือกส่อง หลังเคลือบอาจเกี่ยวข้องกับการกระจายออกซิเจนลดลงเปลือก

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

เคลือบผิวได้อย่างมีประสิทธิภาพลดลงเปลือกต้น
จำใน Sucrier 'กล้วย เคลือบผิวที่ 25%
และ 30% นอกจากนี้ยังมีฤทธิ์ยับยั้งการเปลี่ยนแปลงในสีแน่น
และคุณภาพการรับประทานอาหาร นี้แสดงให้เห็นการยับยั้งของ
สุก ในทางตรงกันข้ามการเคลือบพื้นผิว 20% ไม่ได้
ส่งผลกระทบต่อคุณลักษณะเหล่านี้จึงเห็นได้ชัดว่าไม่ทำให้เสีย
สุก เคลือบที่ 25% และ 30% ไม่ได้
เป็นไปตามที่พวกเขาเหนี่ยวนำออกรสชาติ (ขี้ผึ้ง 30%) หรือลดคุณภาพการรับประทานอาหาร (25% ขี้ผึ้ง) ดังนั้นการ
ทดสอบต่อไปใช้เฉพาะการรักษาเคลือบที่ 20%
นอกจากนี้การควบคุม.
เคลือบผิวดูเหมือนจะทำหน้าที่เหมือนฟิล์มพลาสติก.
จะได้รับพบก่อนหน้านี้ที่จะ จำกัด การแลกเปลี่ยนก๊าซ
ของกล้วยสุก (Amarante และธนาคาร 2001)
ผลของการเคลือบผิวในจุดเปลือกต้นอาจ
เป็นผลมาจากการไหลที่ลดลงของออกซิเจนจากที่
บรรยากาศให้กับเซลล์ผิวเปลือก นี้อาจจะ
ลดระดับออกซิเจนในเซลล์ Choehom et
al, (2004) รายงานว่าระดับออกซิเจนจากภายนอก
ต่ำกว่า 5% มีประสิทธิภาพในการควบคุมต้น
จำเปลือกใน Sucrier 'กล้วย.
บราวนิ่งหรือการใส่ร้ายป้ายสีในเนื้อเยื่อพืชดูเหมือนว่า
ผลจากการเกิดออกซิเดชันของฟีนอลฟรี เป็นส่วนหนึ่งของการเกิดออกซิเดชันนี้ดูเหมือนว่าไม่ใช่เอนไซม์ส่วนหนึ่งเป็นตัวเร่งปฏิกิริยา
โดย PPO (มาร์ติเน & วิเท 1995) PPO เล่น
บทบาทสำคัญในการเกิดสีน้ำตาลในโรงงานหลาย
เนื้อเยื่อ (เมเยอร์และ Harel 1991) อย่างไรก็ตามแม้จะมี
ความแตกต่างในเปลือกจำไม่มีความแตกต่างใน
กิจกรรม PPO ระหว่างผลไม้ผลไม้การควบคุมและการได้รับการรักษา
ด้วยการเคลือบพื้นผิว 20% ในทำนองเดียวกันกิจกรรม PPO
ไม่ได้มีความสัมพันธ์กับการจำเปลือกในการทดสอบที่
จำถูกยับยั้งโดยระดับออกซิเจนต่ำกว่า 5%
(Choehom et al. 2004) ผู้ประกอบการและชาร์ลี (1974)
นอกจากนี้ยังมีรายงานว่าไม่มีความสัมพันธ์ระหว่าง
กิจกรรม PPO และการเกิดสีน้ำตาลเยื่อกล้วย PPO
กิจกรรมเป็นวัดในหลอดทดลองภายใต้เงื่อนไข
โดยออกซิเจนไม่ได้ จำกัด อัตราการเกิดปฏิกิริยา.
ขาดความสัมพันธ์กับกิจกรรม PPO จึงแสดงให้เห็น
ว่ากิจกรรม PPO ที่อาจเกิดขึ้นไม่ได้ จำกัด
ระดับของการใส่ร้ายป้ายสี อัตรา PPO ปฏิกิริยาในร่างกาย
จะขึ้นอยู่กับเวลาอย่างน้อยสองปัจจัยอื่น ๆ ที่นอกเหนือจากที่
วัดในหลอดทดลอง: ความเข้มข้นของสารตั้งต้นและ
. ออกซิเจนความดันบางส่วน
ไอโซฟอร์มต่างๆของ PPO อาจจะมีความแตกต่างกัน
ไม่เฉพาะเจาะจงสารตั้งต้น เราใช้ catechol เป็น
สารตั้งต้น สารนี้เป็นสารตั้งต้นสำหรับ PPO
ในหลายเนื้อเยื่อของผักและผลไม้ (Vâmos-
Vigyâzo 1981) ดังนั้นเราจึงคิดว่า catechol
ยังให้สารตั้งต้นที่เหมาะสมในการวัด PPO
กิจกรรมในเปลือกกล้วย สารตั้งต้น PPO หลัก
ขึ้นอยู่กับสินค้าโภคภัณฑ์ ยกตัวอย่างเช่น flavan-3-OL
โมโนเมอร์และ dimers เป็นพื้นผิว PPO หลัก
ในลิ้นจี่ (Zhang et al. 2000), 3,4-dihydroxyphenyl
อะลานีน (DOPA) เป็นสารตั้งต้นสำหรับ PPO ในมันฝรั่ง
(Chen et al. 1991), / 7-coumaryl และ caffeoyl-tartaric
กรดเป็นสารตั้งต้นสำหรับ PPO ในองุ่นและ chlorogenic
กรดเป็นสารตั้งต้นสำหรับ PPO ในลูกพีชและเนคทา
(Cheng & Crisosto 1995).
PAL ส่งเสริมการสังเคราะห์ของฟีนอลฟรี
(Camm & Towers 1973) เราสังเกตเห็นในเชิงบวก
ความสัมพันธ์ระหว่างจุดเปลือกต้นและ PAL
กิจกรรม กิจกรรม PAL ต่ำอาจจะเกี่ยวข้องกับ
ระดับต่ำฟีนอลฟรีถ้าฟีนอลฟรี
จะสะสม แต่ไม่มีผลที่สอดคล้องกัน
เป็นข้อสังเกตของการเคลือบผิว 20% ในระดับ
ของฟีนอลฟรี.
มันเป็นข้อสรุปว่าเคลือบผิวมาก
ลดลงเปลือกต้นจำใน Sucrier 'กล้วยและ
ว่าผลกระทบนี้มาพร้อมกับระบบ PAL ต่ำ
กิจกรรม ไม่มีความสัมพันธ์ระหว่างเปลือกเป็น
จุดและกิจกรรม PPO วัดในหลอดทดลอง เรา
แสดงให้เห็นว่าความล่าช้าของเปลือกจุดหลังจากเคลือบ
อาจจะเกี่ยวข้องกับการลดการแพร่กระจายออกซิเจนเข้าสู่
เปลือก

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเคลือบผิวได้อย่างมีประสิทธิภาพลดต้น เปลือกเฉพาะปี sucrier " กล้วย เคลือบผิวที่ 25%และ 30% ยังยับยั้งการเปลี่ยนแปลงสี ความแน่นเนื้อและคุณภาพการรับประทาน นี้พบว่ามีการยับยั้งสุก ในทางตรงกันข้ามการเคลือบผิว 20 % ไม่ได้มีผลต่อคุณสมบัติเหล่านี้จึงเห็นได้ชัดไม่ได้บั่นทอนประสิทธิภาพสุก สารเคลือบที่ 25% และ 30% ไม่ได้ที่เป็นไปได้ที่พวกเขานำออกกลิ่น ( 30% ขี้ผึ้ง ) หรือลดคุณภาพการรับประทาน ( 25% ขี้ผึ้ง ) ดังนั้นการทดสอบเพิ่มเติมเท่านั้น ใช้ชุบที่ 20 %นอกเหนือจากการควบคุมเคลือบผิวที่ดูเหมือนจะทำตัวเป็นฟิล์มพลาสติกมันได้รับการพบก่อนหน้านี้เพื่อ จำกัด การแลกเปลี่ยนก๊าซการสุกของกล้วย ( เต & ธนาคาร 2001 ) ที่ผลของการใช้สารเคลือบผิวบนต้นเปลือกเฉพาะ อาจผลของการลดอัตราการไหลของออกซิเจนจากบรรยากาศให้กับเซลล์ที่ผิวเปลือก นี้ อาจลดระดับออกซิเจนในเซลล์ choehom และอัล ( 2004 ) รายงานว่า ระดับออกซิเจนจากภายนอกต่ำกว่า 5 % มีประสิทธิภาพในการควบคุมก่อน" " sucrier เฉพาะในเปลือกกล้วยสีน้ำตาลหรือ blackening ในเนื้อเยื่อพืชดูเหมือนผลของการเกิดออกซิเดชันของฟีนอลิกส์ฟรี ส่วนหนึ่งของปฏิกิริยานี้ดูเหมือนไม่ใช่เอนไซม์ ส่วนหนึ่งเป็น catalysedโดย PPO ( มาร์ติเนซ & Whitaker 1995 ) ต่อเล่นมีบทบาทสำคัญในการเกิดสีน้ำตาลในพืชหลายเนื้อเยื่อ ( เมเยอร์ & HAREL 1991 ) อย่างไรก็ตาม แม้ความแตกต่างในเปลือกที่ระบุว่า ไม่มีความแตกต่างกันในPPO กิจกรรมระหว่างผลไม้และผลไม้รักษาควบคุมเคลือบพื้นผิว 20% และกิจกรรมของเอนไซม์ PPOไม่มีความสัมพันธ์กับเปลือกเฉพาะในการทดสอบที่ถูกยับยั้งโดยเฉพาะระดับออกซิเจนต่ำกว่า 5 %( choehom et al . 2004 ) วีเวอร์ & ชาร์ลี ( 1974 )ยังมีรายงานว่าไม่มีความสัมพันธ์กิจกรรมของเอนไซม์ PPO และการเกิดสีน้ำตาลของกล้วยเละ PPOกิจกรรมวัดในหลอดทดลอง ภายใต้เงื่อนไขโดยออกซิเจนไม่จำกัดอัตราการเกิดปฏิกิริยา .ขาดความสัมพันธ์กับกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ซึ่งบ่งชี้ว่าว่า กิจกรรมของเอนไซม์ PPO ที่มีศักยภาพไม่ จำกัดระดับของ blackening . PPO อัตราการเกิดปฏิกิริยาในหลอดทดลองจะขึ้นอยู่กับปัจจัยอื่นมากกว่านั้นอย่างน้อยสองวัดในหลอดทดลอง : ฐานรองสมาธิความดันย่อยออกซิเจน .ไอโซฟอร์มต่างๆของ PPO อาจแตกต่างกันแผ่น - . เราใช้แคติคอลเป็นพื้นผิว สารนี้เป็นสารสำหรับ PPOหลาย เนื้อเยื่อของผักและผลไม้ ( V â MOS -vigy â Zo 1981 ) ดังนั้นเราจึงคิดว่าแคติคอลยังให้สารอาหารที่เหมาะสมในการวัด PPOกิจกรรมในเปลือกกล้วย พื้นผิวต่อหลักขึ้นอยู่กับสินค้า ตัวอย่างเช่น flavan-3-olิเมอร์มีพื้นผิวต่อหลักในลิ้นจี่ ( Zhang et al . 3,4-dihydroxyphenyl 2000 )อะลานีน ( โด ) มีพื้นผิวสำหรับ PPO ในมันฝรั่ง( Chen et al . 1991 ) / 7-coumaryl caffeoyl tartaric และกรดเป็นฐานรองสำหรับ PPO ใน องุ่น และคลอโรเจนิกกรดเป็นฐานรองสำหรับ PPO ในลูกพีชและผลไม้เนกเตอริน( Cheng & crisosto 1995 )เพื่อนส่งเสริมการสังเคราะห์โพลีฟีนอลฟรี( แคมม์ & Towers 1973 ) เราพบบวกความสัมพันธ์ระหว่างต้นและเปลือกเฉพาะ พาลกิจกรรม กิจกรรมเพื่อนน้อยอาจจะเกี่ยวข้องกับระดับต่ำฟรีผล ถ้าผลฟรีจะสะสม อย่างไรก็ตาม ยังไม่มีผลที่สอดคล้องกันสังเกตได้จากสารเคลือบผิวในระดับ 20%ของฟีนอลิกส์ฟรีสรุปได้ว่า ผิวเคลือบมากลดต้นเปลือกเฉพาะใน " " และ sucrier กล้วยผลนี้ถูกพร้อม ด้วยเพื่อนลดลงกิจกรรม ไม่มีความสัมพันธ์ระหว่างเปลือกกิจกรรมและกิจกรรมของเอนไซม์ PPO วัดหลอด เราแนะนำว่า ความล่าช้าของเปลือกเฉพาะหลังจากเคลือบอาจจะเกี่ยวข้องกับการลดออกซิเจนในการแพร่กระจายเปลือก