during freeze drying, heat treatmen

during freeze drying, heat treatment, and upon exposure to the
simulated gastric juice (SGJ). However, our subsequent study in
Kiew, Cheow, and Hadinoto (2014) showed that the survival of the
encapsulated LGG biofilm during storage (i.e. 2 weeks at 4
C) was
low at < 2%, hence signifying the need for a better capsule
formulation.
Starch has often been used as a probiotic encapsulant to complement
alginate (Martin, Lara-Villoslada, Ruiz, & Morales, 2013;
Mirzaei, Pourjafar, & Homayouni, 2012; Sultana et al., 2000). A
majority of these studies used high-amylose starch (i.e. resistant
starch) to take advantage of its prebiotic characteristics, despite its
non-specific encapsulating capability. Prebiotic starch is defined as
non-digestible starch that selectively stimulates the growth of
probiotics in the gut by acting as their food sources, thus beneficially
affects the host's health (Figueroa-Gonzalez, Quijano,
Ramirez, & Cruz-Guerrero, 2011).
For planktonic probiotics, both positive and negative effects of
the prebiotic addition on the initial cell density and stress tolerance
of the encapsulated probiotics have been reported. The positive
effects were mostly attributed to the additional protective barrier
afforded by prebiotics, particularly when the encapsulation was
carried out under a harsh environment (e.g. spray drying) (Avila-
Reyes, Garcia-Suarez, Teresa Jimenez, San Martin-Gonzalez, &
Bello-Perez, 2014; Iyer & Kailasapathy, 2005). Not unexpectedly,
the negative effects were typically caused by either compromised
capsule's protective barrier (Heidebach, Foerst, & Kulozik, 2010), or
poorer cell encapsulation efficiency (Chavarri et al., 2010) upon the
addition of prebiotics.
Herein we investigated the effects of adding starch to the
alginate-gum-chitosan matrix on (1) the initial cell density after
preparation and (2) the stress tolerance of the LGG biofilm microcapsules
upon (i) freeze drying, (ii) heating at 100
C for 30 min, (iii)
two-week storage at 4
C, and (iv) SGJ exposure. First, we examined
whether the addition of resistant starch (from maize) could increase
the initial cell density of the LGG biofilm microcapsules by
virtue of the stimulated cell growth in the presence of prebiotics.
Second, as oxidation of the lipid cell membrane has been established
in several studies to be the cause for the poor storage
viability of probiotics (Castro, Teixeira, & Kirby, 1996; Hansen,
Petersen, Risbo, Hummer, & Clausen, 2015), we examined the effects
of adding a modified non-resistant starch (from waxy maize)
thatwas specifically designed for food encapsulation by virtue of its
high resistance to oxidation.
In addition, the storage viability of the LGG biofilm microcapsules
in soy milk beverage was also investigated. Soy milk was
chosen as the model food product in our study because (1) soy milk
represents one of the staple drinks in Asia, particularly in Singapore
and Hong Kong (Canadean, 2012), and (2) long-term consumption
of LGG-enriched milk product has been demonstrated to result in
health benefits compared to placebo treatments, particularly in
children (Hatakka et al., 2001).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ใน ระหว่างแช่แข็งแห้ง ความร้อน และ เมื่อได้รับการจำลองน้ำในกระเพาะอาหาร (SGJ) อย่างไรก็ตาม เราเรียนต่อมาเขียว Cheow และ Hadinoto (2014) แสดงให้เห็นว่าการอยู่รอดของการสรุป LGG ฟิล์มระหว่างการเก็บรักษา (เช่น 2 สัปดาห์ที่ 4 C) คือต่ำ < 2% จึง บ่งบอกต้องแคปซูลดีกว่าสูตรมักจะถูกใช้เป็นเป็นโปรไบโอติก encapsulant แป้งเติมเต็มแอลจิเนต (Martin, Lara Villoslada รูอิซ และรา เลส 2013Mirzaei, Pourjafar, & Homayouni, 2012 ซูล et al. 2000) Aการศึกษาเหล่านี้ส่วนใหญ่ใช้แป้งอมิสูง (เช่นกันแป้ง) การใช้ประโยชน์ของลักษณะของ prebiotic แม้มีการไม่ใช่เฉพาะกรณีความสามารถใน Prebiotic แป้งถูกกำหนดให้เป็นแป้งไม่ย่อยที่เลือกที่จะช่วยกระตุ้นการเติบโตของโปรไบโอติกในลำไส้โดยทำหน้าที่เป็นแหล่งอาหารของพวกเขา ดังนั้นแอ๊บมีผลต่อสุขภาพของโฮสต์ (กี Figueroa, QuijanoRamirez และครูซเกอร์เรโร 2011)โปรไบโอติก planktonic ผลกระทบทั้งบวก และลบของนอกจากนี้ prebiotic บนค่าเผื่อความเครียดและความหนาแน่นเซลล์เริ่มต้นโปรไบโอติกสรุปได้รับรายงาน ในแง่บวกผลได้ส่วนใหญ่เกิดจากการปกป้องเพิ่มเติมafforded โดย prebiotics โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อการ encapsulationนำออกมาภายใต้สภาพแวดล้อมที่รุนแรง (เช่นสเปรย์แห้ง) (Avila-Reyes เทเรซาจิเมเนซ โรการ์เซีย ซานมาร์ตินกอนซาเล ซ &เปเรซ Bello, 2014 Iyer & Kailasapathy, 2005) โดยไม่คาดคิดไม่ได้ผลโดยทั่วไปเกิดจากการบุกรุกของแคปซูลเกราะป้องกัน (Heidebach, Foerst, & Kulozik, 2010), หรือย่อม encapsulation พลังงาน (Chavarri et al. 2010) ตามนอกจากนี้ของ prebioticsในที่นี้เราตรวจสอบผลกระทบของการเพิ่มแป้งไปเมตริกซ์เหงือกแอลจิเนตไคโตซาน (1) ความหนาแน่นหลังจากเซลล์ต้นการเตรียมการและ (2) ความอดทนความเครียดของการ microcapsules ฟิล์ม LGGเมื่อ (i) แช่แข็งแห้ง (ii) ความร้อน 100 c เป็นเวลา 30 นาที, (iiiจัดเก็บ 2 สัปดาห์ที่ 4 C และ (iv) SGJ แสง ครั้งแรก เราตรวจสอบว่าสามารถเพิ่มการเพิ่มแป้งทน (จากข้าวโพด)ความหนาแน่นของเซลล์เริ่มต้นของการ microcapsules ฟิล์ม LGG โดยความประเสริฐของการเจริญเติบโตกระตุ้นเซลล์ใน prebioticsที่สอง มีออกซิเดชันของเยื่อหุ้มเซลล์ไขมัน ก่อให้เกิดในการศึกษาหลายเป็น สาเหตุสำหรับการจัดเก็บไม่ดีชีวิตของโปรไบโอติก (Castro, Teixeira และเคอร์ บี้ 1996 แฮนเซนภาพยนตร์ Risbo, Hummer และ เซน 2015), เราตรวจสอบผลกระทบการเพิ่มแป้งไม่ทนการแก้ไข (จากข้าวโพดคล้ายขี้ผึ้ง)thatwas ที่ออกแบบสำหรับอาหาร encapsulation โดยการกระทาของตนทนต่อการเกิดออกซิเดชันนอกจากนี้ เก็บในเชิงของการ microcapsules ฟิล์ม LGGในนมถั่วเหลือง เครื่องดื่มก็ยังตรวจสอบ นมถั่วเหลืองได้เลือกให้เป็นผลิตภัณฑ์อาหารรูปแบบในการศึกษาของเราเนื่องจากน้ำนมถั่วเหลือง (1)แสดงหลักอย่างใดอย่างหนึ่งเครื่องดื่มในเอเชีย โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสิงคโปร์และฮ่องกง (Canadean, 2012), และการใช้ระยะยาว (2)นมอุดม LGG ผลิตภัณฑ์มีการสาธิตทำประโยชน์ต่อสุขภาพเมื่อเทียบกับยาหลอกรักษา โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเด็ก (Hatakka et al. 2001)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ระหว่างการอบแห้งแช่แข็ง, การรักษาความร้อนและเมื่อสัมผัสกับ
น้ำย่อยจำลอง (SGJ) อย่างไรก็ตามการศึกษาต่อมาเราใน
กิ่ว Cheow และ Hadinoto (2014) แสดงให้เห็นว่าการอยู่รอดของ
ห่อหุ้ม LGG ไบโอฟิล์มระหว่างการเก็บรักษา (เช่น 2 สัปดาห์ที่ 4 องศาเซลเซียส) เป็น
ระดับต่ำที่ <2% จึง signifying จำเป็นสำหรับแคปซูลที่ดีขึ้น
. สูตร
แป้งได้รับมักจะใช้เป็น encapsulant โปรไบโอติกเพื่อเสริม
อัลจิเนต (มาร์ตินลาร่า-Villoslada, รุยซ์และโมราเลส, 2013;
Mirzaei, Pourjafar และ Homayouni 2012;. ชายา, et al, 2000)
ส่วนใหญ่ของการศึกษาเหล่านี้ใช้แป้งสูงอะไมโลส (เช่นทน
แป้ง) เพื่อใช้ประโยชน์จากลักษณะของ prebiotic แม้มันจะ
ความสามารถในการห่อหุ้มเซลล์แสงอาทิตย์ที่ไม่เฉพาะเจาะจง แป้ง prebiotic ถูกกำหนดให้เป็น
แป้งที่ย่อยไม่ว่าเลือกที่จะช่วยกระตุ้นการเจริญเติบโตของ
โปรไบโอติกในลำไส้โดยทำหน้าที่เป็นแหล่งอาหารของพวกเขาจึงประโยชน์
ส่งผลต่อสุขภาพของโฮสต์ (เกรออนซาเลซ, Quijano,
รามิเรซและครูซเกร์เรโร 2011).
สำหรับ โปรไบโอติก planktonic ทั้งผลกระทบในเชิงบวกและเชิงลบของ
การเพิ่ม prebiotic บนเริ่มต้นความหนาแน่นของเซลล์และความเครียดความอดทน
ของโปรไบโอติกห่อหุ้มที่ได้รับรายงาน บวก
ผลกระทบส่วนใหญ่เป็นผลมาจากการป้องกันเพิ่มเติม
afforded โดย prebiotics เฉพาะอย่างยิ่งเมื่อการห่อหุ้มที่ถูก
ดำเนินการภายใต้สภาพแวดล้อมที่รุนแรง (เช่นสเปรย์อบแห้ง) (Avila-
Reyes, ซัวเรซการ์เซียเทเรซาเมเนซ, มาร์ตินซานอนซาเลซและ
เบลโล -Perez 2014; เยอร์และ Kailasapathy 2005) ไม่ได้โดยไม่คาดคิด
ผลกระทบเชิงลบที่ได้รับมักจะเกิดจากการบุกรุก
ป้องกันแคปซูล (Heidebach, Foerst และ Kulozik 2010) หรือ
ประสิทธิภาพของเซลล์ encapsulation ยากจน (Chavarri et al., 2010) เมื่อ
นอกเหนือจาก prebiotics.
ที่นี้เราตรวจสอบผลกระทบ ของการเพิ่มแป้งกับ
เมทริกซ์อัลจิเนต-เหงือกไคโตซานต่อ (1) ความหนาแน่นของเซลล์เริ่มต้นหลังจากที่
การเตรียมการและ (2) ความทนทานต่อความเครียดของ LGG ไมโครไบโอฟิล์ม
เมื่อ (i) การแช่แข็งอบแห้ง (ii) ความร้อนที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที, (iii)
การจัดเก็บสองสัปดาห์ที่ 4 องศาเซลเซียสและ (iv) การสัมผัส SGJ ครั้งแรกที่เราตรวจสอบ
ว่านอกจากนี้แป้งทน (จากข้าวโพด) สามารถเพิ่ม
ความหนาแน่นของเซลล์เริ่มต้นของไมโครแคปซูล LGG ไบโอฟิล์มโดย
อาศัยอำนาจของการเจริญเติบโตของเซลล์กระตุ้นในการปรากฏตัวของ prebiotics ได้.
ประการที่สองเป็นออกซิเดชันของเยื่อหุ้มเซลล์ไขมันที่ได้รับการจัดตั้งขึ้น
ในการศึกษาหลายจะเป็นสาเหตุสำหรับการจัดเก็บไม่ดี
มีชีวิตของโปรไบโอติก (คาสโตร Teixeira และเคอร์บี้ 1996; แฮนเซน
ปีเตอร์เสน Risbo, Hummer, และเซน, 2015) เราตรวจสอบผลกระทบ
ของการเพิ่มแป้งที่ไม่ทนต่อการแก้ไข (จากข้าวโพดข้าวเหนียว)
thatwas ออกแบบมาเฉพาะสำหรับการห่อหุ้มอาหารโดยอาศัยอำนาจของ
ความต้านทานสูงต่อการเกิดออกซิเดชัน.
นอกจากนี้ยังมีศักยภาพในการจัดเก็บข้อมูลของไมโครแคปซูล LGG ไบโอฟิล์ม
ในเครื่องดื่มนมถั่วเหลืองยังได้รับการตรวจสอบ นมถั่วเหลืองได้รับ
เลือกให้เป็นผลิตภัณฑ์อาหารรูปแบบในการศึกษาของเราเพราะ (1) นมถั่วเหลือง
เป็นหนึ่งในเครื่องดื่มหลักในเอเชียโดยเฉพาะในประเทศสิงคโปร์
และฮ่องกง (Canadean, 2012) และ (2) การบริโภคในระยะยาว
ของ LGG- ผลิตภัณฑ์นมอุดมได้รับการแสดงให้เห็นถึงผลใน
ประโยชน์ต่อสุขภาพเมื่อเทียบกับการรักษายาหลอกโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
เด็ก (Hatakka et al., 2001)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในระหว่างการทำให้แห้ง , การรักษาความร้อนและเมื่อสัมผัสกับจำลองในน้ำผลไม้ ( sgj ) อย่างไรก็ตาม ภายหลังการศึกษาของเราเขียว cheow , และ hadinoto ( 2014 ) พบว่าการอยู่รอดของชนิดฟิล์มห่อหุ้มระหว่างการเก็บรักษา ( เช่น 2 สัปดาห์ที่อุณหภูมิ 4 C )ต่ำที่ < 2% จึงแสดงความต้องการแคปซูลดีกว่าการกำหนดแป้งที่ได้รับมักจะใช้เป็นโปรไบโอติกเพื่อเสริม encapsulantอัลจิเนต ( มาร์ติน ลาร่า villoslada รูซ และ โมราเลส , 2013 ;mirzaei pourjafar , และ homayouni , 2012 ; Sultana et al . , 2000 ) เป็นส่วนใหญ่ของการศึกษาเหล่านี้ใช้แป้งอะไมโลสสูง ( เช่น ป้องกันแป้ง ) เพื่อใช้ประโยชน์จากลักษณะของพรีไบโอติก แม้ของไม่ใช่เฉพาะห่อหุ้มความสามารถ พรีไบโอติก แป้ง หมายถึงแป้งที่ไม่ย่อย โดยกระตุ้นการเจริญเติบโตของโปรไบโอติกในไส้ โดยทำหน้าที่เป็นแหล่งอาหารของพวกเขาจึงเป็นหนังสือมีผลต่อสุขภาพของโฮสต์ ( กอนซาเลซ Quijano , ฟิกูโร ,รามิเรส และ ครูซ เกอเรโร่ , 2011 )สำหรับสิ่งมีชีวิตขนาดเล็กมากในน้ำโปรไบโอติก , ผลกระทบทั้งเชิงบวกและเชิงลบของส่วนพรีไบโอติก นอกจากนี้เมื่อความหนาแน่นเซลล์เริ่มต้น และความทนทานต่อความเครียดของ 3 โปรไบโอติกได้รับการรายงาน เป็นบวกผลกระทบส่วนใหญ่เกิดจากการกั้นป้องกันเพิ่มเติมช่วย โดยการเป็นพรีไบโอติกส์ โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อดำเนินการภายใต้สภาพแวดล้อมที่รุนแรง ( เช่น การอบแห้งแบบพ่นฝอย ( - ) ในเรเยส การ์เซีย ซัวเรซ เทเรซ่า เมเนซ , ซาน มาร์ติน กอนซาเลซ , และเบลโล เปเรซ ปี 2014 ; ไอเยอร์ & kailasapathy , 2005 ) ไม่ได้บังเอิญผลกระทบเชิงลบมักจะเกิดจากให้ละเมิดแคปซูลป้องกันอุปสรรค ( heidebach foerst & kulozik , 2553 ) หรือจนเซลล์ประสิทธิภาพการ ( chavarri et al . , 2010 ) บนเพิ่มของพรีไบโอติก .ในที่นี้เราได้ศึกษาผลของการเติมแป้งไปอัลกัม ไคโตซาน ( 1 ) เมทริกซ์ความหนาแน่นเซลล์เริ่มต้นหลังจากการเตรียมและ ( 2 ) ความทนทานต่อความเครียดของฟิล์มชนิดแคปซูลเมื่อ ( 1 ) เจล ( 2 ) ความร้อนที่อุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 30 นาที ( 3 )สองสัปดาห์เก็บที่ 4 องศาเซลเซียส และ ( 4 ) sgj แสง ครั้งแรกที่เราตรวจสอบว่านอกเหนือจากแป้งป้องกัน ( จากข้าวโพด ) สามารถเพิ่มความหนาแน่นเซลล์เริ่มต้นของฟิล์มชนิดแคปซูลโดยคุณธรรมของการกระตุ้นการเจริญเติบโตของเซลล์ในการปรากฏตัวของพรีไบโอติก .ประการที่สอง เป็นปฏิกิริยาออกซิเดชันของลิพิดเยื่อหุ้มเซลล์ถูกก่อตั้งขึ้นในการศึกษาหลายเป็นเหตุให้กระเป๋าไม่ดีความมีชีวิตของโปรไบโอติก ( Castro , TEIXEIRA & เคอร์บี้ , 1996 ; แฮนเซนปีเตอร์เซน risbo , Hummer , และเคลาเซิ่น 2015 ) , เราตรวจสอบผลเพิ่มแป้งทนไม่ดัดแปลง ( จากข้าวโพดข้าวเหนียว ข้าวโพด )ออกแบบโดยเฉพาะสำหรับเป็นอาหาร โดยอาศัยการของมันสูงทนต่อการเกิดออกซิเดชันนอกจากนี้ การเก็บรักษาความมีชีวิตของฟิล์มชนิดแคปซูลในเครื่องดื่มนมถั่วเหลือง ก็ยังศึกษา นมถั่วเหลืองคือเลือกเป็นรูปแบบผลิตภัณฑ์อาหารในการศึกษาของเรา เพราะ ( 1 ) นมถั่วเหลืองเป็นหนึ่งในเครื่องดื่มหลักในเอเชีย โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสิงคโปร์และฮ่องกง ( canadean , 2012 ) และ ( 2 ) การใช้ระยะยาวของอุดมด้วยนมชนิดสินค้าถูกแสดงผลในประโยชน์ต่อสุขภาพเมื่อเทียบกับยาหลอกในการรักษา โดยเฉพาะอย่างยิ่งเด็ก ( hatakka et al . , 2001 )