2. Experimental procedures 2.1. Cya

2. Experimental procedures
2.1. Cyanobacteria
Two cyanobacteria were used in this study: Anabaena circinalis (ref strain ANA188B, AWQC, Adelaide SA, Australia) and Cylindrospermopsis raciborskii (ref strain CYP011K, AWQC, Adelaide SA, Australia). The strain of A. circinalis produced both geosmin and saxitoxins, while the strain of C. raciborskii produced cylindrospermopsin (CYN). Both cyanobacteria were cultured in ASM-1 medium according to the methods of Gorham et al. (1964). The culture was incubated at 20 °C under 12 h rotating light darkness flux at light intensity of 70 μmol s−1 m−2 .
Samples for cyanobacterial enumeration (by microscopy using a Nikon Eclipse 50i microscope) were treated with Lugol's iodine, pressurised to 750 kPa for 2 min to collapse gas vesicles, then counted in a gridded Sedgewick–Rafter chamber at 200× magnification using methods described previously (Brookes et al., 1994). Tests for cell viability were conducted (on a sub-sample in the absence of Lugol's iodine) by assessing the autofluorescence (chlorophyll a) of the cells with a mercury lamp using a WG2 setup on the microscope: the wavelength of light (green) used to excite the sample was 480–550 nm which produced a red emission spectra.
2.2. Waters studied Raw water was obtained from the inlet of two WTPs and stored at 4 °C until used. Plant A inlet water (turbidity=81 NTU, dissolved organic carbon (DOC)=7.6 mg L−1 , UV absorbance at 254 nm (UV254)= 0.095 cm−1 , pH=7.6) was supplied by TRILITY Pty Ltd in South Australia, Australia. Plant B inlet water (turbidity=3 NTU, DOC=4.6 mg L−1 , UV absorbance at 254 nm (UV254)=0.070 cm−1 , pH=7.5) was supplied by Sydney Water in New South Wales, Australia.
2.3. Coagulation experiments Coagulation experiments were conducted at room temperature (25 °C) to generate cyanobacterial-laden sludge using a method similar to Chow et al. (1999). Briefly, a PB-900 programmable six paddle jar stirrer and B-Ker2 gator jars (Phipps and Bird, USA) containing 2 L of cyanobacterial-spiked waters was used. Coagulant (either aluminium sulphate as Al2(SO4)3•18H2O (0–100 mg L−1 ) or ferric chloride as anhydrous FeCl3 (0–60 mg L−1 )) was added while stirring at 200 rpm (G= 480 s−1 ). After 1 min the speed was reduced to 20 rpm (G= 18 s−1 ) for 14 min. The samples were allowed to settle for 15 min. Samples were taken from the resultant supernatant to determine cell counts, cell viability and metabolite concentrations.
2.4. Direct filtration and backwash simulation Direct filtration was simulated using a W4 Filterability Index Unit (Armfield, UK). Full details, specifications and manufacturer's instructions of the unit are available on their website (http://www. discoverarmfield.co.uk/data/w4/). The unit employed a small laboratory sand filter, where sand media (effective size 0.65–0.75 mm) was sampled from the filter beds of Plant B and placed in the unit for subsequent experiments. A volume of approximately 26 mL of sand was used for experiments (filter diameter of 3.8 cm, sand bed height 2.3 cm). Experiments were conducted using 2× 5 L of coagulated cyanobacterial-spiked Plant B inlet water. Optimum coagulation conditions were applied, i.e. 10 mg L−1 ferric chloride; however, 1 mg L−1 of LT425 polymer (Ciba Specialty Chemicals, Australia) was also applied as cationic coagulant aids are employed at this WTP. The first 5 L was passed through the unit at the beginning of the afternoon in 1 L aliquots, after which time the sand was left overnight in the unit to simulate the practices at Plant B. The last 5 L were subsequently passed through the unit the morning after, also in 1 L aliquots. Samples were regularly taken (after the addition of each 1 L aliquot) from the sand filter influent and effluent to determine cell counts and metabolite concentrations. A filtration rate of 12 m h−1 was employed for the experiments which was identical to that of Plant B's design rate.
At the completion of the direct filtration simulation experiments above, cyanobacterial-laden sand media was removed from the W4 Filterability Index Unit and added into 1 L of Plant B water in a gator jar. To mimic filter backwash the suspension was agitated in the PB-900 programmable paddle jar stirrer (Phipps and Bird, USA) for 30 min at 260 rpm and samples taken at 15 and 30 min to determine cell counts and viability and metabolite concentrations in the resultant supernatant. The agitation conditions were relatively harsh but were conducted to simulate a worse-case scenario.
2.5. Sludge degradation and metabolite release Two 5 L cyanobacterial-spiked water samples were coagulated in 5 L gator jars (see Section 2.3 above) and the flocs allowed to settle for 15 min, after which time the supernatant was decanted. The remaining sludge in the two samples was combined into a single gator jar and 5 L of lagoon supernatant (sampled from the full-scale WTP) was added to the cyanobacterial-laden sludge. Samples were taken from the supernatant at regular intervals to determine cell counts and metabolite concentrations. In addition, samples were also taken from the sludge to determine cell viability.
2.6. Analyses Samples for geosmin analyses were pre-concentrated using a solid phase microextraction syringe fibre (Supelco, Australia) and analysed on a 7890 Gas Chromatograph System with 5975C VL Series Mass Selective Detector (Agilent Technologies, Australia) against quantified labelled internal standards (Ultrafine Chemicals, UK). Full details of this method have been documented by Graham and Hayes (1998).
Prior to high performance liquid chromatographic (HPLC) analysis, CYN was concentrated from sample waters by solid phase extraction using methods described previously (Metcalf et al., 2002). A1100 series HPLC system comprising of a quaternary pump, autosampler and photodiode array detector (Agilent Technologies, Australia) was employed using a previously published method (Ho et al., 2011).
A commercially available enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) (Abraxis, USA) was employed for the analysis of saxitoxins. The concentrations of the samples were determined by interpolation using a standard curve constructed with each run. Full description of the analysis is available on the website (www.abraxiskits.com). Results were expressed as saxitoxin toxicity equivalents, STX-eq.
Samples for DOC and UV254 analyses were filtered through 0.45 μm pre-rinsed membranes. DOC was measured using a Sievers 900 Total Organic Carbon Analyser (GE Analytical Instruments, USA). UV254 was measured through a 1 cm quartz cell using an Evolution 60 Spectrophotometer (Thermo Scientific, USA). Turbidity measurements were conducted on a 2100AN Laboratory Turbidimeter (Hach, USA).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2 การขั้นตอนที่ทดลอง 2.1 cyanobacteria Cyanobacteria สองใช้ในการศึกษานี้: Anabaena circinalis (อ้างอิงต้องใช้ ANA188B, AWQC แอดิเลด SA ออสเตรเลีย) และ Cylindrospermopsis raciborskii (อ้างอิงต้องใช้ CYP011K, AWQC แอดิเลด SA ออสเตรเลีย) สายพันธุ์ของ A. circinalis ผลิต geosmin และ saxitoxins ในขณะที่สายพันธุ์ของ C. raciborskii ผลิต cylindrospermopsin (CYN) ทั้ง cyanobacteria มีอ่างในเข้ม 1 ตามวิธีของ Gorham et al. (1964) วัฒนธรรมถูก incubated ที่ 20 ° C ภายใต้ 12 h หมุนแสงความมืดไหลที่ความเข้มแสงของ 70 μmol s−1 m−2 ตัวอย่างการ cyanobacterial การแจงนับ (โดยใช้กล้องจุลทรรศน์ Nikon คราส 50i microscopy) ได้รับไอโอดีนของ Lugol, pressurised ไป 750 kPa สำหรับ 2 นาทีเพื่อยุบแก๊สอสุจิ นั้นนับในหอ Sedgewick – เบดแบบ gridded ที่ขยาย 200 รายโดยใช้วิธีการอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (เดอะ et al., 1994) ทดสอบในเซลล์นี้ได้ดำเนินการ (ตามตัวอย่างย่อยของไอโอดีนของ Lugol) จาก autofluorescence (คลอโรฟิลล์ a) ของเซลล์ที่มีโคมไฟดาวพุธโดยใช้การตั้งค่า WG2 บนกล้องจุลทรรศน์: 480-550 nm ซึ่งผลิตแรมสเป็คตราการเล็ดรอดสีแดงมีความยาวคลื่นของแสง (สีเขียว) ใช้ในการกระตุ้นตัวอย่างด้วย 2.2 ศึกษาน้ำดิบน้ำรับจากอ่าวสอง WTPs และเก็บที่ 4 ° C จนกว่าจะใช้ โรงงานทางเข้าของน้ำ (ความขุ่น = 81 NTU ละลายอินทรีย์คาร์บอน (DOC) = 7.6 มิลลิกรัม L−1, UV absorbance ที่ 254 nm (UV254) = 0.095 cm−1, pH = 7.6) โดย TRILITY Pty Ltd ในเซาท์ออสเตรเลีย ออสเตรเลีย พืช B ทางเข้าของน้ำ (ความขุ่น = 3 NTU, DOC = 4.6 มิลลิกรัม L−1, UV absorbance ที่ 254 nm (UV254) = 0.070 cm−1, pH = 7.5) โดยน้ำซิดนีย์นิวเซาธ์เวลส์ ออสเตรเลีย 2.3 การแข็งตัวของเลือดเลือดแข็งตัวทดลองได้ดำเนินการทดลองที่อุณหภูมิห้อง (25 ° C) เพื่อสร้าง cyanobacterial ลาดินตะกอนโดยใช้วิธีการคล้ายกับชาวร้อยเอ็ด al. (1999) สั้น ๆ การ PB-900 โปรแกรม 6 พายช้อนคนขวดและขวดรวดเร็วคุณ B Ker2 (Phipps และนก สหรัฐอเมริกา) ประกอบด้วย cyanobacterial spiked น้ำ 2 ลิตรใช้ Coagulant (ทั้งอลูมิเนียมซัลเฟตเป็น Al2 (SO4) 3•18H2O (0 – 100 mg L−1) หรือคคลอไรด์ FeCl3 ไดเป็น (0 – 60 mg L−1)) ถูกเพิ่มในขณะที่กวนที่ 200 rpm (G = 480 s−1) หลังจาก 1 นาที ความเร็วถูกลดลงเป็น 20 rpm (G = 18 s−1) ในนาทีที่ 14 ตัวอย่างได้รับอนุญาตให้ชำระสำหรับ 15 นาทีตัวอย่างที่ได้มาจาก resultant supernatant กำหนดจำนวนเซลล์ เซลล์ชีวิต และ metabolite ความเข้มข้น 2.4. ตรงจำลอง backwash และกรองที่กรองโดยตรงถูกจำลองโดยใช้หน่วยดัชนี Filterability W4 (Armfield สหราชอาณาจักร) รายละเอียดเต็มรูปแบบ ข้อกำหนด และคำแนะนำของผู้ผลิตของหน่วยจะพร้อมใช้งานบนเว็บไซต์ของตน (http://www. discoverarmfield.co.uk/data/w4/) หน่วยทำงานตัวกรองทรายของห้องปฏิบัติการขนาดเล็ก ที่ทรายสื่อ (ผลขนาด 0.65-0.75 มม.) ความจากเตียงกรองของโรงงาน B และวางในหน่วยสำหรับการทดลองภายหลัง ปริมาตรของทรายประมาณ 26 mL ใช้สำหรับการทดลอง (ตัวกรองเส้นผ่านศูนย์กลาง 3.8 ซม. ทรายเตียงสูง 2.3 cm) ได้ดำเนินการทดลองใช้ 2 × 5 L coagulated cyanobacterial spiked B โรงงานทางเข้าของน้ำ ดีเฟนสภาพใช้ เช่น 10 มก. L−1 คคลอไรด์ อย่างไรก็ตาม 1 mg L−1 LT425 พอลิเมอร์ (สารเคมีพิเศษ Ciba ออสเตรเลีย) ถูกยังใช้กับพนักงานช่วย cationic coagulant ที่นี้ WTP L 5 แรกถูกผ่านหน่วยต้นบ่ายใน aliquots 1 L หลังจากเวลาที่ทรายถูกทิ้งค้างคืนในหน่วยเพื่อจำลองการปฏิบัติที่โรงงานบี L 5 ล่าสุดได้มาผ่านหน่วยตอนเช้าหลังจาก นอกจากนี้ใน aliquots 1 L ตัวอย่างอย่างสม่ำเสมอไป (หลังจากนี้แต่ละส่วนลงตัว 1 L) จาก influent กรองทรายและน้ำเพื่อกำหนดความเข้มข้นการตรวจนับและ metabolite เซลล์ อัตราการกรอง 12 m h−1 ถูกจ้างสำหรับการทดลองที่ได้เหมือนกับที่โรงงาน B ออกแบบอัตรา ที่เสร็จสมบูรณ์กรองโดยตรงการจำลองการทดลองข้างต้น cyanobacterial ลาดินทรายสื่อถูกลบออกจากหน่วยดัชนี Filterability W4 และเข้า L 1 B พืชน้ำในขวดรวดเร็วคุณ เพื่อเลียนแบบกรอง backwash การระงับได้นั้นกระตุ้นทำในที่ PB-900 โปรแกรมพายขวดช้อนคน (Phipps และนก สหรัฐอเมริกา) สำหรับ 30 นาที 260 rpm และตัวอย่างที่นำมาที่ 15 และ 30 นาทีเพื่อตรวจสอบเซลล์นับ และชีวิต และ metabolite ความเข้มข้นใน supernatant ผลแก่ อาการกังวลต่อเงื่อนไขค่อนข้างรุนแรง แต่ได้ดำเนินการเพื่อจำลองสถานการณ์กรณีแย่ลง 2.5 ตะกอนย่อยสลาย metabolite ปล่อยสอง 5 L cyanobacterial spiked น้ำตัวอย่างที่ coagulated ในขวดรวดเร็วคุณ 5 L (ดูหัวข้อ 2.3 ข้างต้น) และ flocs ที่อนุญาตให้จ่ายในนาที 15 หลังจากที่เวลา supernatant ถูก decanted ตะกอนที่เหลือในตัวอย่างที่สองได้รวมกันในขวดเดียวรวดเร็วคุณ และ L 5 ของ supernatant ลากูน (ตัวอย่างจาก WTP เอา) ถูกเพิ่มตะกอน cyanobacterial รับภาระ ตัวอย่างที่ถ่ายจาก supernatant ที่อย่างสม่ำเสมอเพื่อกำหนดจำนวนเซลล์และความเข้มข้นของ metabolite นอกจากนี้ ตัวอย่างได้ยังนำจากตะกอนที่จะกำหนดชีวิตของเซลล์ 2.6 การวิเคราะห์ตัวอย่างสำหรับวิเคราะห์ geosmin เข้มข้นก่อนใช้เป็นเฟสของแข็ง microextraction เข็มเส้นใย (Supelco ออสเตรเลีย) และ analysed ในระบบแก๊ส Chromatograph 7890 กับ 5975 C VL ชุดมวลใช้เครื่องตรวจจับ (Agilent เทคโนโลยี ออสเตรเลีย) กับ quantified มันภายในมาตรฐาน (Ultrafine เคมี สหราชอาณาจักร) รายละเอียดทั้งหมดของวิธีการนี้ได้ถูกจัด โดยเกรแฮมและเฮยส์ (1998) ก่อนที่จะหลอมเหลว chromatographic (HPLC) วิเคราะห์ CYN ได้เข้มข้นจากน้ำตัวอย่าง โดยการแยกเฟสของแข็งโดยใช้วิธีการอธิบายไว้ก่อนหน้านี้ (Metcalf et al., 2002) A1100 ชุด HPLC ระบบประกอบด้วยการ quaternary ปั๊ม autosampler และ photodiode เรย์จับ (Agilent เทคโนโลยี ออสเตรเลีย) ถูกว่าจ้างโดยใช้วิธีการเผยแพร่ก่อนหน้านี้ (โฮจิมินห์ et al., 2011) เป็นเอนไซม์ที่ใช้ได้ในเชิงพาณิชย์ immunosorbent เชื่อมโยง assay (ELISA) (Abraxis สหรัฐอเมริกา) ได้รับการว่าจ้างสำหรับการวิเคราะห์ของ saxitoxins ความเข้มข้นของตัวอย่างถูกกำหนด โดยสอดแทรกที่ใช้เส้นโค้งมาตรฐานที่สร้างขึ้น ด้วยการทำงานแต่ละ คำอธิบายโดยละเอียดของการวิเคราะห์อยู่บนเว็บไซต์ (ส่วน www.abraxiskits.com) มีแสดงผลเป็นเทียบเท่า toxicity saxitoxin, STX eq. ตัวอย่างการวิเคราะห์เอกสารและ UV254 ถูกกรองผ่านเยื่อหุ้มก่อน rinsed μm 0.45 เอกสารถูกวัดโดยใช้กับ Sievers 900 รวมอินทรีย์คาร์บอน Analyser (GE เครื่องมือวิเคราะห์ สหรัฐอเมริกา) UV254 ที่วัดผ่านเซลล์ควอตซ์ 1 ซ.ม.ใช้การวิวัฒนาการ 60 เครื่องทดสอบกรดด่าง (เทอร์โมวิทยาศาสตร์ สหรัฐอเมริกา) ความขุ่นของน้ำวัดได้ดำเนินการใน Turbidimeter ห้องปฏิบัติการ 2100AN (Hach สหรัฐอเมริกา)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2. ขั้นตอนการทดลอง
2.1 ไซยาโนแบคทีเรียสองไซยาโนแบคทีเรียถูกนำมาใช้ในการศึกษานี้: Anabaena circinalis (ANA188B ความเครียดอ้างอิง, AWQC, Adelaide SA, ออสเตรเลีย) และ Cylindrospermopsis raciborskii (CYP011K ความเครียดอ้างอิง, AWQC, Adelaide SA, ออสเตรเลีย)
ความเครียดจากการ circinalis เอที่ผลิตทั้ง geosmin และ saxitoxins ในขณะที่สายพันธุ์ซี raciborskii ที่ผลิต cylindrospermopsin (CYN) ไซยาโนแบคทีเรียทั้งสองเลี้ยงในกลาง ASM-1 ตามวิธีการของกอร์แฮมเอตอัล (1964) วัฒนธรรมที่ได้รับการบ่มที่อุณหภูมิ 20 องศาเซลเซียสต่ำกว่า 12 ชั่วโมงหมุนฟลักซ์ความมืดแสงความเข้มของแสง 70 ไมโครโมล s-1 เมตร-2.
ตัวอย่างสำหรับการแจงนับไซยาโนแบคทีเรีย (โดยใช้กล้องจุลทรรศน์โดยใช้กล้องจุลทรรศน์ Nikon คราส 50i) ได้รับการรักษาด้วยไอโอดีน Lugol ของแรงดัน 750 กิโลปาสคาลเป็นเวลา 2 นาทีเพื่อยุบถุงก๊าซนับจากนั้นใน gridded เซดจ์วิก-Rafter ห้องที่ 200 ×ขยายโดยใช้วิธีการอธิบายไว้ก่อนหน้า (บรูกส์ et al., 1994) การทดสอบความมีชีวิตเซลล์ได้ดำเนินการ (ในตัวอย่างย่อยในกรณีที่ไม่มีไอโอดีน Lugol ฯ ) โดยการประเมิน Autofluorescence (คลอโรฟิล) ของเซลล์ที่มีโคมไฟปรอทใช้การตั้งค่า WG2 บนกล้องจุลทรรศน์: ความยาวคลื่นของแสง (สีเขียว) ที่ใช้ เพื่อกระตุ้นตัวอย่างเป็น 480-550 นาโนเมตรซึ่งผลิตการปล่อยสเปกตรัมสีแดง.
2.2 Waters ศึกษาน้ำดิบที่ได้รับจากทางเข้าของทั้งสอง WTPs และเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียสจนกว่าจะใช้ พืชน้ำที่ไหลเข้า (ขุ่น = 81 NTU ละลายอินทรีย์คาร์บอน (DOC) = 7.6 มก. L-1, การดูดกลืนรังสียูวีที่ 254 นาโนเมตร (UV254) = 0.095 ซม 1, ค่า pH = 7.6) ได้ถูกจัดทำโดย TRILITY Pty Ltd ในออสเตรเลียใต้ , ออสเตรเลีย. พืชน้ำที่ไหลเข้า B (ขุ่น = 3 NTU, DOC = 4.6 มก. L-1, การดูดกลืนรังสียูวีที่ 254 นาโนเมตร (UV254) = 0.070 ซม 1, ค่า pH = 7.5) ได้ถูกจัดทำโดยซิดนีย์น้ำในนิวเซาธ์เวลส์ออสเตรเลีย.
2.3 การแข็งตัวของการทดลองการทดลองได้ดำเนินการแข็งตัวที่อุณหภูมิห้อง (25 องศาเซลเซียส) เพื่อสร้างตะกอนไซยาโนแบคทีเรียที่รับภาระโดยใช้วิธีการคล้ายกับเชา et al, (1999) สั้น ๆ เป็นโปรแกรม PB-900 หกขวดพายกวน B-Ker2 ขวดจระเข้ (ฟิบส์และนก, สหรัฐอเมริกา) ที่มี 2 ลิตรน้ำไซยาโนแบคทีเรีย-ถูกแทงถูกนำมาใช้ ตกตะกอน (ทั้งอลูมิเนียมซัลเฟตเป็น Al2 (SO4) 3 • 18H2O (0-100 มิลลิกรัม L-1) หรือเฟอริกคลอไรด์เป็นปราศจาก FeCl3 (0-60 มก. L-1)) ถูกเพิ่มเข้ามาในขณะที่กวนที่ 200 รอบต่อนาที (G = 480 s -1) หลังจาก 1 นาทีความเร็วลดลงถึง 20 รอบต่อนาที (G = 18 s-1) เป็นเวลา 14 นาที กลุ่มตัวอย่างที่ได้รับอนุญาตให้ชำระสำหรับ 15 นาที ตัวอย่างที่นำมาจากสารละลายผลเพื่อตรวจสอบจำนวนเซลล์ที่มีศักยภาพและความเข้มข้นของเซลล์เมตาบอ.
2.4 กรองโดยตรงและการจำลองย้อนกรองโดยตรงจำลองโดยใช้ W4 filterability ดัชนียูนิท (Armfield สหราชอาณาจักร) รายละเอียดรายละเอียดและคำแนะนำของผู้ผลิตของหน่วยที่มีอยู่บนเว็บไซต์ของพวกเขา (http: // www. discoverarmfield.co.uk/data/w4/) หน่วยลูกจ้างกรองทรายห้องปฏิบัติการขนาดเล็กที่สื่อทราย (ขนาดที่มีประสิทธิภาพ 0.65-0.75 มิลลิเมตร) เป็นตัวอย่างจากเตียงกรองพืช B และวางไว้ในหน่วยการทดลองที่ตามมา ปริมาณประมาณ 26 มิลลิลิตรของทรายที่ใช้สำหรับการทดลอง (เส้นผ่าศูนย์กลางกรอง 3.8 ซม. ความสูงของเตียงทราย 2.3 เซนติเมตร) ทดลองใช้ 2 × 5 ลิตรของไซยาโนแบคทีเรียแห้งกรัง-ถูกแทงพืชน้ำที่ไหลเข้า B เงื่อนไขการแข็งตัวที่เหมาะสมถูกนำไปใช้คือ 10 มิลลิกรัม L-1 เฟอริกคลอไรด์; แต่ 1 มิลลิกรัม L-1 จากพอลิเมอ Lt425 (Ciba Specialty Chemicals, ออสเตรเลีย) ถูกนำมาใช้เป็นเครื่องช่วยตกตะกอนประจุบวกมีการจ้างงาน WTP นี้ ครั้งแรก 5 ลิตรก็ผ่านไปผ่านหน่วยที่จุดเริ่มต้นของช่วงบ่าย 1 aliquots L หลังจากที่เวลาที่ทรายถูกทิ้งไว้ค้างคืนในหน่วยเพื่อจำลองการปฏิบัติที่โรงงานบี 5 ลิตรถูกส่งต่อมาผ่านหน่วย ตอนเช้าหลังจากนั้นใน 1 aliquots L ตัวอย่างถูกนำมาเป็นประจำ (หลังการเพิ่มของแต่ละ aliquot 1 ลิตร) จากอิทธิพลกรองทรายและน้ำทิ้งเพื่อตรวจสอบจำนวนเซลล์และความเข้มข้นของสาร อัตราการกรอง 12 MH-1 เป็นลูกจ้างสำหรับการทดลองซึ่งเป็นเหมือนกับว่าอัตราการออกแบบโรงงานข.
ที่เสร็จสิ้นการทดลองจำลองการกรองโดยตรงข้างต้นสื่อทรายไซยาโนแบคทีเรียภาระถูกลบออกจากหน่วยดัชนี W4 filterability และเพิ่ม เป็น 1 ลิตรพืชน้ำ B ในขวดจระเข้ เพื่อเลียนแบบตัวกรองย้อนระงับได้ตื่นเต้นใน PB-900 พายกวนขวดโปรแกรม (ฟิบส์และนก USA) เป็นเวลา 30 นาทีที่ 260 รอบต่อนาทีและตัวอย่างถ่ายที่ 15 และ 30 นาทีเพื่อตรวจสอบจำนวนเซลล์และความมีชีวิตและความเข้มข้นของสารในผลลัพธ์ ใส เงื่อนไขการกวนค่อนข้างรุนแรง แต่ได้ดำเนินการในการจำลองสถานการณ์เลวร้ายยิ่งกรณี.
2.5 การย่อยสลายกากตะกอนน้ำเสียและการปล่อยสารสอง 5 ลิตรตัวอย่างน้ำไซยาโนแบคทีเรีย-ถูกแทงที่ถูกจับตัวใน 5 ขวด L จระเข้ (ดูมาตรา 2.3 ด้านบน) และกลุ่มแบคทีเรียที่ได้รับอนุญาตที่จะชำระเป็นเวลา 15 นาทีหลังจากที่ใสถูก decanted กากตะกอนที่เหลืออยู่ในสองตัวอย่างถูกรวมกันเป็นขวดจระเข้เดียวและ 5 ลิตรใสลากูน (ตัวอย่างจาก WTP เต็มรูปแบบ) ถูกบันทึกอยู่ในตะกอนไซยาโนแบคทีเรียที่รับภาระ ตัวอย่างที่นำมาจากสารละลายในช่วงเวลาปกติเพื่อตรวจสอบจำนวนเซลล์และความเข้มข้นของสาร นอกจากนี้กลุ่มตัวอย่างยังถูกนำมาจากตะกอนเพื่อตรวจสอบความมีชีวิตเซลล์.
2.6 การวิเคราะห์ตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ geosmin อยู่ก่อนเข้มข้นโดยใช้ของแข็ง microextraction เส้นใยเข็มฉีดยา (Supelco, ออสเตรเลีย) และวิเคราะห์ใน 7890 ระบบแก๊ส Chromatograph กับ 5975C VL ชุดมวลชนเลือกเครื่องตรวจจับ (Agilent Technologies, ออสเตรเลีย) กับมาตรฐานการติดป้ายภายในวัด (Ultrafine สารเคมี สหราชอาณาจักร) รายละเอียดของวิธีการนี้ได้รับการรับรองโดยเกรแฮมและเฮย์ส (1998).
ก่อนที่จะมีประสิทธิภาพสูงของเหลวโครมา (HPLC) วิเคราะห์ CYN เข้มข้นจากน้ำตัวอย่างจากของแข็งสกัดโดยใช้วิธีการอธิบายไว้ก่อนหน้า (เมทคาล์ฟ et al., 2002) A1100 ชุดระบบ HPLC ประกอบด้วยปั๊มสี่, ฉีดตัวอย่างอัตโนมัติและโฟโตไดโอดเครื่องตรวจจับอาร์เรย์ (Agilent Technologies, ออสเตรเลีย) ถูกจ้างโดยใช้วิธีการเผยแพร่ก่อนหน้านี้ (โฮ et al., 2011).
เอนไซม์เชิงพาณิชย์ที่มีการเชื่อมโยงอิมมูโน assay (ELISA) (Abraxis, USA) ได้รับการวิเคราะห์ saxitoxins ความเข้มข้นของกลุ่มตัวอย่างที่ถูกกำหนดโดยการแก้ไขโดยใช้เส้นโค้งที่สร้างขึ้นด้วยมาตรฐานการทำงานในแต่ละ รายละเอียดของการวิเคราะห์ที่มีอยู่ในเว็บไซต์ (www.abraxiskits.com) ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นรายการเทียบเท่าพิษ saxitoxin, STX-EQ.
ตัวอย่างสำหรับ DOC และการวิเคราะห์ UV254 ถูกกรองผ่านเยื่อ 0.45 ไมโครเมตรก่อนล้าง DOC ถูกวัดโดยใช้ Sievers 900 รวมอินทรีย์วิเคราะห์คาร์บอน (GE เครื่องมือในการวิเคราะห์, สหรัฐอเมริกา) UV254 วัดผ่านมือถือ 1 ซมควอทซ์ใช้วิวัฒนาการ 60 Spectrophotometer (เทอร์โมวิทยาศาสตร์สหรัฐอเมริกา) การวัดความขุ่นได้ดำเนินการในห้องปฏิบัติการ 2100AN เครื่องวัดความขุ่น (Hach สหรัฐอเมริกา)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . ขั้นตอนการทดลอง
2.1 . ไซยาโนแบคทีเรีย ~
2 การศึกษาครั้งนี้ Anabaena circinalis ( Ref : เมื่อย ana188b awqc , อเดเลด ซา ออสเตรเลีย ) และ cylindrospermopsis raciborskii ( Ref เมื่อย cyp011k awqc , อเดเลด ซา ออสเตรเลีย ) สายพันธุ์ของ circinalis และผลิตทั้ง geosmin แซกซิท็อกซิน ในขณะที่สายพันธุ์ของ raciborskii ผลิต cylindrospermopsin ( ซิน )ทั้งต้นกล้าเพาะเลี้ยงใน asm-1 ขนาดกลาง ตามวิธีการของกอร์แฮม et al . ( 1964 ) วัฒนธรรม คือ บ่มที่อุณหภูมิ 20 ° C ใน 12 ชั่วโมง ไฟหมุน ความมืดของความเข้มแสง 70 μ mol s − 1 m − 2
ตัวอย่างระบบยูแจง ( ด้วยกล้องจุลทรรศน์การใช้กล้องจุลทรรศน์ Nikon คราส 50i ) ได้รับการรักษาด้วย lugol ของไอโอดีนแรงดัน 750 กิโลปาสคาล 2 มินยุบเล็กแก๊สแล้วนับใน gridded เซดจ์วิค ( จันทันห้องที่ 200 ×ขยายโดยใช้วิธีการที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( บรูกส์ et al . , 1994 )การทดสอบเซลล์ ( ในตัวอย่างมีวัตถุประสงค์ย่อยในการขาดงานของ lugol ของไอโอดีน ) โดยการประเมิน autofluorescence ( คลอโรฟิลล์ ) จากเซลล์ที่มีปรอทโคมไฟ โดยใช้การตั้งค่า wg2 บนกล้องจุลทรรศน์ : ความยาวคลื่นของแสง ( สีเขียว ) ใช้เพื่อกระตุ้นจำนวน 480 – 550 nm ซึ่งผลิตการปล่อยสเปกตรัม สีแดง
2.2 .น้ำใช้น้ำดิบที่ได้จากท่อสอง wtps ที่เก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 องศา C จนใช้ พืชใช้น้ำ ( ขุ่น = 81 NTU ละลายอินทรีย์คาร์บอน ( DOC ) = 0.9 mg L − 1 , การดูดกลืนแสงยูวีที่ 254 nm ( uv254 ) = 0.095 cm − 1 , pH = 7.6 ) ถูกจัดโดย trility Pty Ltd ในออสเตรเลียใต้ , ออสเตรเลีย น้ำโรงงาน B = 3 ปากน้ำ ( ความขุ่น NTU หมอ = 4.6 mg L − 1 , การดูดกลืนแสงยูวี ที่ 254 nm ( uv254 ) = 0��� cm − 1 , pH = 7.5 ) ถูกจัดโดยซิดนีย์ในรัฐนิวเซาท์เวลส์ , ออสเตรเลีย
2.3 การทดลองการทดลองตกตะกอนแข็งตัวที่อุณหภูมิห้อง ( 25 องศา C ) เพื่อสร้างระบบยูหนักตะกอนโดยใช้วิธีการคล้ายกับเชา et al . ( 1999 ) สั้น ๆ , pb-900 โปรแกรมหกโอ่งและไห b-ker2 ใบพัดกวนจระเข้ ( ฟิปส์และนก ,สหรัฐอเมริกา ) ประกอบด้วย 2 ลิตรน้ำระบบยูนาใช้ การตกตะกอน ( ทั้งสารส้มเป็น al2 ( ปา ) 3 - 18h2o ( 0 – 100 mg L − 1 ) หรือ เฟอร์ริค คลอไรด์เป็น anhydrous FeCl3 ( 0 – 60 mg L − 1 ) เพิ่มในขณะที่กวนที่ความเร็วรอบ 200 รอบต่อนาที ( G = 480 s − 1 ) หลังจาก 1 นาทีความเร็วลดลงถึง 20 รอบ / นาที ( G = 18 s − 1 ) 14 นาทีจำนวนอนุญาตให้ตั้งถิ่นฐานเป็นเวลา 15 นาทีตัวอย่างถ่ายจากนำ้เพื่อตรวจสอบเซลล์นับ ความมีชีวิตของเซลล์และระดับความเข้มข้น
2.4 . ระบบกรองโดยตรง และวิศกรระบบกรองตรง ) โดยใช้ดัชนี filterability W4 ( หน่วย ร์มฟิลด์ , อังกฤษ ) รายละเอียด สเปค และคําแนะนําของผู้ผลิตของหน่วยที่มีอยู่บนเว็บไซต์ของพวกเขา ( http : / / www . discoverarmfield.co .อังกฤษ / ข้อมูล / W4 / ) หน่วยที่ใช้ห้องปฏิบัติการขนาดเล็กกรองทราย ซึ่งทรายสื่อ ( มีประสิทธิภาพขนาด 0.65 – 0.75 มิลลิเมตร ) ตัวอย่างจากตัวกรองเตียงของพืชและอยู่ในหน่วยการทดลองที่ตามมา ปริมาณประมาณ 26 มล ทรายใช้สำหรับการทดลอง ( กรองขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 3.8 เซนติเมตร ความสูงทราย 2.3 ซม. )การทดลองใช้ 2 × 5 ลิตรที่เตรียมจากพืชระบบยูบีน้ำเข้า . เงื่อนไขการใช้ที่เหมาะสมคือ 10 mg L − 1 เฟอร์ริคคลอไรด์ ; อย่างไรก็ตาม , 1 mg L − 1 lt425 พอลิเมอร์ ( Ciba สารเคมีชนิดพิเศษ ออสเตรเลีย ) ถูกใช้เป็นสารช่วยในการบำบัดที่เรานี้5 ครั้งแรกผมผ่านหน่วยที่จุดเริ่มต้นของช่วงบ่าย 1 ผมเฉยๆ หลังจากทรายทิ้งค้างคืนในหน่วยจำลองการปฏิบัติที่โรงงาน บี ช่วง 5 - โดยผ่านหน่วยตอนเช้าหลังจากที่เวลา นอกจากนี้ ใน 1 ชั้นเฉยๆ .ตัวอย่างถูกนำมาใช้อย่าง ( หลังจากเติมแต่ละลิตรส่วนลงตัว ) จากระบบกรองทรายและน้ำเพื่อตรวจสอบเซลล์ คือ อุณหภูมิ ความเข้มข้น การกรองอัตรา 12 M H − 1 เป็นเครื่องมือในการทดลอง ซึ่งก็เหมือนกับที่โรงงาน B ออกแบบอัตรา
ที่สมบูรณ์ของการกรองโดยจำลองการทดลองข้างต้นกลุ่มสื่อที่ถูกลบออกจากระบบยูทรายหน่วยดัชนี filterability W4 และเพิ่มเป็น 1 ลิตรของน้ำในโรงงาน B . โอ่ง เลียนแบบตัวกรองล้างย้อนระงับกระวนกระวาย ใน pb-900 ใบพัดกวน ( ( โถ ฟิปส์และนก ,สหรัฐอเมริกา ) สำหรับ 30 นาทีที่ 260 รอบต่อนาทีและตัวอย่างที่ 15 และ 30 นาทีเพื่อตรวจสอบนับเซลล์และความมีชีวิตและระดับความเข้มข้นในนำ้ . เงื่อนไขการได้ค่อนข้างรุนแรง แต่การทดลองเพื่อจำลองสถานการณ์กรณีที่เลวร้าย
2.5การย่อยสลายอาหารกากและปล่อยสองลิตรระบบยูตบกันในตัวอย่างน้ำ 5 ขวด . L ( ดูมาตรา 2.3 ขึ้นไป ) และสูงอนุญาตให้ตั้งถิ่นฐานเป็นเวลา 15 นาที หลังจากนำกำลังรินเวลาที่เหลือกากตะกอนในทั้งสองกลุ่มตัวอย่างถูกรวมลงในขวดเดียว และ 5 . l ( ลากูนนำตัวอย่างจากเราเต็มที่ ) คือการเพิ่มตะกอนหนัก ระบบยู . ตัวอย่างถ่ายจากนำในช่วงเวลาปกติเพื่อตรวจสอบเซลล์ คือ อุณหภูมิ ความเข้มข้น นอกจากนี้ กลุ่มตัวอย่างยังถ่ายจากตะกอนเพื่อตรวจสอบเซลล์ .
2.6การวิเคราะห์ตัวอย่างเพื่อวิเคราะห์ geosmin เป็น pre เข้มข้นใช้โซลิดเฟส microextraction เข็มไฟเบอร์ ( supelco ออสเตรเลีย ) และวิเคราะห์ใน 7890 แก๊สด้วยระบบ 5975c VL มวลชุดเลือกเครื่องตรวจจับ ( Agilent Technologies , ออสเตรเลีย ) กับวัดที่มีมาตรฐานภายใน ( เคมี , อังกฤษสด )details full โทรหาฉัน been documented by graham ( hayes ( ความกระหาย ) .
ก่อนโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูง ( HPLC ) การวิเคราะห์ ซินก็เข้มข้นจากตัวอย่างน้ำ โดยการสกัดด้วยเฟสของแข็งโดยใช้วิธีการที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ ( เมทคาล์ฟ et al . , 2002 ) a1100 ชุด 4 ระบบ ประกอบด้วย ซึ่ง autosampler ปั๊ม , และเครื่องตรวจจับเรย์โฟโตไดโอด ( Agilent เทคโนโลยีaustralia ) was employed previously published method ( ho et al . , 2011 ) .
a ในเชิงพาณิชย์เอนไซม์ลิงค์ immunosorbent assay ( ELISA ) ( abraxis , USA ) เป็นเครื่องมือในการวิเคราะห์แซกซิท็อกซิน . ความเข้มข้นของตัวอย่างการประมาณค่าโดยใช้มาตรฐานเส้นโค้งสร้างด้วยแต่ละคนวิ่ง รายละเอียดของการวิเคราะห์สามารถใช้ได้บนเว็บไซต์ ( www .abraxiskits . com ) ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นซาซิทอกซินพิษ ส่วน stx-eq.
, ตัวอย่าง DOC และ uv254 วิเคราะห์ถูกกรองผ่าน 0.45 μ M ก่อนล้างเยื่อ หมอก็วัดโดยใช้เครื่องวิเคราะห์ปริมาณอินทรีย์คาร์บอนซีเวิร์ส 900 ( สหรัฐอเมริกา GE วิเคราะห์เครื่องมือ ) uv254 วัดผ่าน 1 ซม. ควอตซ์เซลล์โดยใช้วิวัฒนาการ 60 Spectrophotometer ( เทอร์โมวิทยาศาสตร์ , USA )การวัดความขุ่นมีวัตถุประสงค์ใน 2100an ปฏิบัติการ turbidimeter ( HACH , USA )