Diets were prepared according to Ro

Diets were prepared according to Rodrigues et al. (2012). Briefly, the
experimental diets were composed of 695 g kg− 1 reference diet (Table 2); 300 g kg− 1 test ingredient; and 5 g kg− 1 chromic oxide (Cho and Slinger, 1979). The reference diet was formulated to meet pro- tein, energy and lysine requirements of jundiá (Meyer and Fracalossi,
2004; Montes-Girao and Fracalossi, 2006); other nutrients fulfilled channel catfish (Ictalurus punctatus) requirements (Webster and Lim,
2002) (Table 2). The reference diet was elaborated with semi-purified
ingredients, and the test ingredients were previously ground and sieved to 850 μm. Dry ingredients were homogenized in a twin-shell blender with further addition of oils and 220 g kg− 1 of water. The mixture was pelleted to 5 mm dye pellets and oven-dried at 55 °C.
Five groups of 25 jundiá at 93.9 ± 34.0 g were equally and randomly distributed into five 200-L cylindrical-conical tanks (four test diets plus one reference diet) in a closed water recirculation system with constant aeration (dissolved oxygen: 6.3 ± 0.2 mg L− 1) and controlled tempera- ture (28.0 ± 0.4 °C). Similarly, five groups of 30 tilapia ranging between
93.7 ± 51.6 g were subjected to the same procedure. During the exper- imental period, jundiá and tilapia initial biomass per tank for each rep- licate was kept at nearly 2300 g and 3000 g, respectively. Fish were acclimated to the experimental diets for 1 week before collecting feces (Bureau and CHO, 1999). All treatments and different fishes were ran- domly distributed in each collecting period. In order to collect enough amount of feces for the analyses, each collecting period was nearly10 days. Fish were fed twice a day (9:00 and 16:00) to apparent satia- tion, which was approximately 30 g kg− 1 body weight for jundiá and35 g kg− 1 body weight for tilapia. One hour after the last daily feeding, the tank walls were cleaned and about 70% of the water volume was renewed to avoid any fecal contamination. Feces were collected in 50-ml tubes fastened at the bottom of the tanks every 6 h, between
18:00 and 06:00. Collection tubes were immersed in ice throughout the fecal collection period to reduce microbial activity. Feces were then centrifuged at 1150 ×g for 5 min and the supernatant discarded. Fecal pellets were dried at 50 °C and stored at − 20 °C for later analysis.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

อาหารถูกจัดเตรียมตามโรดริเกวส et al. (2012) Briefly การอาหารทดลองประกอบด้วยอาหารอ้างอิงที่ 1 kg− 695 g (ตาราง 2); ส่วนผสม 1 ทดสอบ kg− 300 g และ 5 g kg− 1 chromic ออกไซด์ (ช่อและ Slinger, 1979) อาหารอ้างอิงมีสูตรเพื่อตอบสนองความต้องการ นี้โป พลังงาน และแอล-ไลซีนของ jundiá (Meyer และ Fracalossi2004 Montes-Girao และ Fracalossi, 2006); สารอาหาร fulfilled ช่อง catfish (Ictalurus punctatus) ข้อกำหนดอื่น ๆ (เว็บสเตอร์และ Lim2002) (ตาราง 2) อาหารอ้างอิงเป็น elaborated กับกึ่ง purifiedส่วนผสม และการทดสอบส่วนผสมก่อนหน้านี้ดิน และ sieved เพื่อ 850 μm ส่วนผสมแห้งถูก homogenized เป็นกลุ่มในห้องเปลือกเบลนเดอร์มีเพิ่มเติมนอกเหนือจากน้ำมันและ 220 g kg− 1 น้ำ ส่วนผสม pelleted ไป 5 มม.ย้อมขี้ และเตาอบแห้งที่ 55 องศาเซลเซียส5 กลุ่มของ jundiá 25 ที่± 93.9 34.0 กรัมมีเท่า ๆ กัน และสุ่มกระจายเป็น five 200 L ถังทรงกระบอกทรงกรวย (สี่ทดสอบอาหารบวกอาหารอ้างอิง) ในระบบ recirculation ปิดน้ำด้วยคง aeration (ส่วนยุบออกซิเจน: 6.3 ± 0.2 มิลลิกรัม L− 1) และควบคุมอุณหภูมิ-ture (28.0 ± 0.4 ° C) ในทำนองเดียวกัน five กลุ่มของนิล 30 ระหว่าง93.7 ± 51.6 g ถูกต้องในกระบวนการเดียวกัน ช่วง exper-imental, jundiá และปลานิลเริ่มแบบชีวมวลต่อถังสำหรับแต่ละตัวแทน licate ถูกเก็บเกือบ 2300 g และ 3000 g ตามลำดับ ปลาถูก acclimated เพื่ออาหารทดลอง 1 สัปดาห์ก่อนเก็บอุจจาระ (สำนักและช่อ 1999) รักษาและ fishes ต่าง ๆ ทั้งหมดได้วิ่ง-domly กระจายในแต่ละรอบระยะเวลาที่เก็บรวบรวม การเก็บอุจจาระสำหรับการวิเคราะห์จำนวนเพียงพอ รอบระยะเวลาที่สะสมถูก nearly10 วัน ปลาที่เลี้ยงสองวัน (9:00 น.และ 16:00) จะปรากฏ satia-สเตรชัน ซึ่งมีประมาณ 30 g kg− 1 น้ำหนักสำหรับ jundiá and35 g kg− 1 น้ำหนักตัวสำหรับปลานิล หนึ่งชั่วโมงหลังจากล่าสุดทุกวันให้อาหาร มีการทำความสะอาดผนังถัง และประมาณ 70% ของปริมาณน้ำถูกต่ออายุเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนใด ๆ fecal อุจจาระที่เก็บในหลอด 50 ml ยึดที่ด้านล่างของถัง h ทุก 6 ระหว่าง18:00 และ 06:00 หลอดคอลเลกชันถูกแช่อยู่ในน้ำแข็งตลอดระยะเวลาเก็บ fecal เพื่อลดกิจกรรมของจุลินทรีย์ อุจจาระได้แล้ว centrifuged ที่ 1150 กรัม× 5 นาทีและ supernatant ละทิ้ง ขี้ fecal ได้แห้งที่ 50 ° C และเก็บอยู่ที่− 20 ° C สำหรับวิเคราะห์ในภายหลัง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อาหารที่ถูกจัดทำขึ้นตามโรดริกูและคณะ (2012) Brie ชั้น y,
อาหารทดลองประกอบด้วย 695 กรัม kg- 1 อาหารการอ้างอิง (ตารางที่ 2) 300 กรัม kg- 1 ส่วนผสมทดสอบ และ 5 กรัม kg- 1 chromic ออกไซด์ (Cho และ Slinger, 1979) อาหารอ้างอิงเป็นสูตรเพื่อตอบสนองความโปรตีนโปรพลังงานและความต้องการของJundiáไลซีน (เมเยอร์และ Fracalossi,
2004; เญิ-Girao และ Fracalossi, 2006); สารอาหารอื่น ๆ ครบ Fi lled ช่องดวลจุดโทษ Fi แมว (Ictalurus punctatus) ข้อกำหนด (เว็บสเตอร์และลิม
2002) (ตารางที่ 2) อาหารที่ได้รับการอ้างอิงเนื้อหากับเอ็ด Fi กึ่ง Puri
ส่วนผสมและส่วนผสมทดสอบเป็นพื้นดินก่อนหน้านี้และร่อนถึง 850 ไมโครเมตร ส่วนผสมแห้งถูกปั่นในเครื่องปั่นคู่เปลือกนอกจากเพิ่มเติมของน้ำมันและ 220 กรัม kg- 1 ของน้ำ ส่วนผสมที่ถูกเม็ดถึง 5 มมเม็ดสีย้อมและเตาอบแห้งที่อุณหภูมิ 55 ° C.
ห้ากลุ่ม 25 Jundiáที่ 93.9 ± 34.0 กรัมถูกอย่างเท่าเทียมกันและกระจายแบบสุ่มเป็นไฟและ 200-L ถังทรงกระบอกกรวย (สี่อาหารทดสอบบวกอาหารอ้างอิงหนึ่ง ) ในระบบหมุนเวียนน้ำแบบปิดที่มีการเติมอากาศคงที่ (ออกซิเจนละลายน้ำ 6.3 ± 0.2 มิลลิกรัม L- 1) และมีการควบคุมอุณหภูมิ Ture (28.0 ± 0.4 ° ​​C) ในทำนองเดียวกัน Fi และกลุ่มที่ 30 ปลานิลระหว่าง
93.7 ± 51.6 กรัมถูกยัดเยียดให้ขั้นตอนเดียวกัน ในช่วงระยะเวลา exper- imental, Jundiáและชีวมวลปลานิลเริ่มต้นต่อถังสำหรับแต่ละ rep- licate ถูกเก็บไว้ที่เกือบ 2,300 กรัมและ 3,000 กรัมตามลำดับ ปลาจะถูกปรับตัวอาหารทดลองเป็นเวลา 1 สัปดาห์ก่อนที่จะเก็บรวบรวมอุจจาระ (สำนักและ CHO, 1999) การรักษาและ shes ไฟที่แตกต่างกันมีการกระจาย ran- domly ในแต่ละรอบระยะเวลาการจัดเก็บภาษี เพื่อที่จะรวบรวมจำนวนเงินที่เพียงพอของอุจจาระสำหรับการวิเคราะห์ในแต่ละรอบระยะเวลาการจัดเก็บภาษีเป็น nearly10 วัน ปลาเป็นอาหารวันละสองครั้ง (09:00 และ 16:00) เพื่อการ satia- ชัดเจนซึ่งเป็นประมาณ 30 กรัม kg- 1 น้ำหนักตัวสำหรับJundiá and35 กรัม kg- 1 น้ำหนักตัวสำหรับปลานิล หนึ่งชั่วโมงหลังจากที่ให้อาหารทุกวันที่ผ่านมาผนังถังถูกทำความสะอาดและประมาณ 70% ของปริมาณน้ำขึ้นมาใหม่เพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนอุจจาระ อุจจาระถูกเก็บไว้ในหลอด 50 มลยึดที่ด้านล่างของถังทุก 6 ชั่วโมงระหว่าง
18:00 และ 06:00 หลอดเก็บถูกแช่อยู่ในน้ำแข็งตลอดระยะเวลาการเก็บอุจจาระเพื่อลดกิจกรรมของจุลินทรีย์ อุจจาระถูกปั่นแล้วที่ 1150 ×กรัมเป็นเวลา 5 นาทีและใสทิ้ง เม็ดอุจจาระแห้งที่ 50 องศาเซลเซียสและเก็บไว้ที่ - 20 ° C สำหรับการวิเคราะห์ในภายหลัง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

อาหารที่เตรียมจาก Rodrigues et al . ( 2012 ) บรี fl Y ,
อาหารทดลองประกอบด้วย 695 กรัมต่อกิโลกรัมอาหารอ้างอิง− 1 ( ตารางที่ 2 ) ; 300 กรัมต่อกิโลกรัม− 1 ทดสอบส่วนประกอบ และ 5 กรัมต่อกิโลกรัม− 1 โครมิกออกไซด์ ( โช และ Slinger , 1979 ) อาหารที่ถูกอ้างอิงสูตรเจอโปร - เทียน , พลังงานและความต้องการไลซีนของ jundi . kgm ( เมเยอร์และ fracalossi
, 2004 ; เญิน girao และ fracalossi , 2006 )สารอาหารที่ครบจึงสะสมในช่องแมวจึง Sh ( ictalurus punctatus ) ความต้องการ ( เว็บสเตอร์และ Lim
2002 ) ( ตารางที่ 2 ) ข้อมูลอ้างอิง อาหารถูก elaborated กับกึ่งปุริจึงเอ็ด
ส่วนผสมและวัสดุการทดสอบก่อนหน้านี้ขนาด 850 เมตร พื้นดิน และμส่วนผสมแห้งถูกบดในเครื่องปั่นกะลาแฝดยังเพิ่มเติมของตัวขับและ 220 กรัมต่อกิโลกรัม− 1 น้ำส่วนผสมเป็นเม็ด 5 มม. เม็ดสี และอบให้แห้งที่อุณหภูมิ 55 องศา C .
5 กลุ่ม 25 jundi . kgm ที่±ร้อยละ 93.9 และ G กันกระจายแบบสุ่มในจึงได้ 200-l ทรงกระบอกทรงกรวย รถถัง ( สี่ทดสอบอาหารบวกหนึ่งอ้างอิงอาหาร ) ในระบบน้ำหมุนเวียนแบบปิดด้วยค่าออกซิเจนละลาย : 6.3 ± 0.2 mg L − 1 ) และควบคุมอุณหภูมิ - ture ( 28 ± 0.4 องศา C ) ในทํานองเดียวกันจึงได้กลุ่ม 30 ปลานิลในช่วงระหว่าง
93.7 ± 51.6 G ถูกต้องในขั้นตอนเดียวกัน ระหว่างชุดทดลอง - imental ระยะเวลา jundi . kgm และปลานิลมวลชีวภาพเริ่มต้นต่อถังสำหรับตัวแทนแต่ละ - licate ถูกเก็บไว้ที่เกือบ 2 , 300 กรัม และ 3 , 000 กรัม ตามลำดับ ปลาเป็น acclimated ในอาหารทดลอง 1 สัปดาห์ก่อนเก็บอุจจาระ ( สำนัก และ โช , 1999 )การรักษาทั้งหมดและเธอจึงต่างกัน รัน - domly กระจายในแต่ละระยะเวลาเก็บ . เพื่อที่จะรวบรวมปริมาณเพียงพอของอุจจาระในการวิเคราะห์แต่ละระยะเวลาเก็บได้ nearly10 วัน ปลาเป็นอาหารวันละสองครั้ง ( ตอน 9 และ 16 : 00 ) เพื่อแจ้ง satia - tion ซึ่งมีน้ำหนักประมาณ 30 กรัมต่อกิโลกรัม− 1 ตัว jundi . kgm และ 35 กรัมต่อกิโลกรัมน้ำหนักตัว− 1 สำหรับปลานิลหนึ่งชั่วโมงหลังให้อาหารทุกวัน ล่าสุด ผนังถังสะอาดประมาณ 70 % ของปริมาตรน้ำที่ถูกต่ออายุเพื่อหลีกเลี่ยงการใด ๆอุจจาระปนเปื้อน อุจจาระเชิง 50 มล. หลอดยึดที่ด้านล่างของถังทุก 6 ชั่วโมง ระหว่าง
18 06 . หลอดคอลเลกชันที่ถูกแช่อยู่ในน้ำแข็งตลอดระยะเวลาการเก็บอุจจาระเพื่อลดกิจกรรมของจุลินทรีย์อุจจาระเป็นระดับที่ 1150 ×กรัมเป็นเวลา 5 นาทีและนำทิ้ง อุจจาระขี้แห้งที่ 50 ° C และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 20 ° C −สำหรับการวิเคราะห์ในภายหลัง