From the EHP-infected penaeid shrim

From the EHP-infected penaeid shrimp, the hepatopancreas was
removed and pooled (4–5 shrimp) into one sample. From tanks
holding EHP-infected shrimp, feces and water were sampled. The
tank water was concentrated 150 times with a Microsep Advance
Centrifugal Device (PALL Corporation) and used for DNA extraction.
Total DNA was extracted from each sample using a High-pure DNA
template preparation kit (Roche Bioscience) or a Maxwell-16 Cell
LEV DNA purification kit (Promega).
To test the specificity of EHP-primers, PCR assays were performed
with DNA templates from 2 parasitic diseases: (1) cotton
shrimp disease, P. monodon collected from Madagascar in 2006,
these shrimp showed a whitish muscle, their DNA were positive
for a Pleistophora-like microsporidium determined by small subunit
rRNA gene sequencing (Genbank No. KP825331); (2) ameoba
disease, these P. vannamei suffered substantial mortality and were
found, through histological examination, to be infected with
amoeba (species not determined).
To ensure the EHP-primers did not react to host genomes, DNA
templates were prepared from: (1) specific-pathogen-free (SPF)
P. vannamei (>10 samples) and P. monodon (3 samples) from
Hawaii, US; (2) Penaeus indicus (2 samples) from Saudi Arabia;
(3) P. stylirostris (2 samples) cultured in New Caledonia; (4)
Macrobrachium rosenbergii (2 samples) from the Philippines; (5)
crabs (7 samples, unknown species) collected in the vicinity of
shrimp ponds located in the Saudi Arabia; (6) polychaetes
(3 samples), Artemia biomass (9 samples), squid (2 samples), krill
(2 samples), these were sent from various commercial providers.
2.3. 18S rRNA gene PCR and cloning
For PCR assays, PuReTaq Ready-To-Go PCR beads (GE
Healthcare) were used. The primers for amplifying the 18S rRNA
gene are 18S-F (50
-CACCAGGTTGATTCTGCCTGA) and 18S-R
(50
-TCTGAAATAGTGACGGGCGG). The PCR reaction contained
200 lM of each dNTP, 0.2 lM of each primer, 10 mM Tris–HCl
(pH 9.0), 50 mM KCl, 1.5 mM MgCl2, 2.5 U Taq DNA polymerase
and 1 ll of extracted DNA (10 ng to 100 ng ll
1
). The amplification
was performed with the following cycling parameters: initiation
denaturation at 94 C for 3 min, followed by 35 cycles of
94 C for 30 s, 55 C for 30 s, and 72 C for 1 min, and a final
extension at 72 C for 5 min. Following PCR, PCR products were
analyzed in a 1.2% agarose gel containing ethidium bromide. A
band at 1 kb was excised and extracted for DNA, cloned into
the pGEM-T-Easy vector (Promega), and designated as clone
pEHP-1. Through DNA sequencing, the cloned insert was determined
to be 1146-bp (GenBank No. KP759285). The search for
the significant similarity with sequences in GenBank was performed
using BLAST at National Center for Biotechnology
Information (NCBI).
2.4. Probe labeling and in situ hybridization
The pEHP-1 plasmid DNA was used to generate a probe for ISH.
The gene probe was labeled with digoxigenin-11-dUTP (Roche) in a
PCR reaction as described by Mari et al. (1998). The primers used
for the labeling reaction were EHP-F (50
-GGGAACGACGAACGGCTC
AG) and EHP-R1 (50
-TGCCTTGATGAGACACTGTT) that generated a
1.1 kb fragment. Following PCR, the digoxigenin-labeled DNA
probe was precipitated with ethanol, re-suspended in water, and
stored at 20 C. The probe for cotton shrimp disease,
Pleistophora-like microsporidium, was generated from a cloned
16S RNA gene region.
The Davidson’s AFA fixed shrimp were processed, embedded in
paraffin, and sectioned (4 lm thick) in accordance with standard
methods (Lightner, 1996). After deparaffinization, hydration,
proteinase K digestion, and post-fixation, sections were overlaid
with 500 ll of hybridization solution (4  SSC, 50% formamide,
1  Denhardt’s solution, 5% dextran sulfate, 0.5 lg/ml salmon
sperm DNA) containing the EHP probe (0.2 lg/ml). Slides were
placed on a heated surface at 90 C for 10 min and hybridized overnight
at 42 C. Final detection was performed with
anti-digoxigenin antibody conjugated to alkaline phosphatase
(Roche) that was visualized using nitroblue tetrazolium and
5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate.
2.5. EHP PCR assay
For PCR assays, PuReTaq Ready-To-Go PCR beads were used. The
primers for detecting the EHP are EHP-510F (50
-GCCTGAGAGATG
GCTCCCACGT) and EHP-510R (50
-GCGTACTATCCCCAGAGCCCGA).
Amplifications were performed with the following cycling
parameters: initial denaturation at 94 C for 3 min, followed by
35 cycles of 94 C for 30 s, 60 C for 30 s, and 72 C for 30 s, and a
final extension at 72 C for 5 min.
3. Results and

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

จากกุ้งติดเชื้อ EHP penaeid, hepatopancreas ถูกเอาออก และทางถูกพู (กุ้ง 4-5) เป็นตัวอย่างหนึ่ง จากถังจับกุ้งที่ติดเชื้อ EHP อุจจาระและน้ำมีความ ที่ถังน้ำมีความเข้มข้น 150 เท่ากับล่วงหน้า Microsep เป็นอุปกรณ์แรงเหวี่ยง (แถบวาย คอร์ปอเรชั่น) และใช้สำหรับการสกัดดีเอ็นเอดีเอ็นเอทั้งหมดถูกแยกจากแต่ละตัวอย่างโดยใช้ดีเอ็นเอบริสุทธิ์สูงแม่เตรียมชุด (ซื้อ Roche) หรือเซลล์แมกซ์เวลล์-16ดีเอ็นเอลิฟเยฟอกชุด (Promega)การทดสอบ specificity ของ EHP-ไพรเมอร์ PCR assays ดำเนินกับดีเอ็นเอแม่แบบจากโรค 2 เสียงฟู่เหมือนกาฝาก: ฝ้าย (1)โรคกุ้ง P. monodon รวบรวมจากมาดากัสการ์ในปี 2006กุ้งเหล่านี้แสดงให้เห็นว่ากล้ามสี ดีเอ็นเอของพวกเขาได้บวกสำหรับ microsporidium Pleistophora เช่นที่กำหนด โดยย่อยขนาดเล็กลำดับยีน rRNA (หมายเลข Genbank KP825331); (2) ameobaโรค กุลา P. เหล่านี้ได้รับความเดือดร้อนพบการตายและพบ ผ่านการตรวจสรีรวิทยา ติดเชื้ออะมีบา (ชนิดไม่กำหนด)ให้ EHP-ไพรเมอร์ไม่ได้ไม่ตอบสนองการโฮสต์ genomes ดีเอ็นเอแม่แบบที่เตรียมจาก: (1) เฉพาะการศึกษาฟรี (SPF)P. vannamei (> 10 ตัวอย่าง) และ P. monodon (3 ตัวอย่าง) จากฮาวาย เรา (2) กุ้งกุลาหม้อ (2 อย่าง) จากซาอุดีอาระเบีย(3) P. stylirostris (ตัวอย่าง 2) อ่างในนิวแคลิโดเนีย (4)กุ้งก้ามกราม (ตัวอย่าง 2) จากฟิลิปปินส์ (5)ปู (7 ตัวอย่าง ไม่ทราบชนิด) ที่รวบรวมใน vicinity ของบ่อกุ้งอยู่ในซาอุดิอาระเบีย (6) polychaetes(3 ตัวอย่าง), อาร์ทีเมีย (9 ตัวอย่าง), ปลาหมึก (2 ตัวอย่าง), เคย(2 ตัวอย่าง), เหล่านี้ถูกส่งจากผู้ให้บริการเชิงพาณิชย์ต่าง ๆ2.3. ยีน rRNA 18S PCR และโคลนสำหรับ PCR assays, PCR พร้อม PuReTaq ไปลูกปัด (GEการดูแลสุขภาพ) ที่เคย ไพรเมอร์สำหรับมือ 18S rRNAยีนมี 18S-F (50-CACCAGGTTGATTCTGCCTGA) และ 18S R(50-TCTGAAATAGTGACGGGCGG) ปฏิกิริยา PCR อยู่200 lM ละ dNTP, 0.2 lM แต่ละพื้น ตรี – HCl 10 มม.(pH 9.0), 50 mM KCl, MgCl2, 1.5 mM 2.5 U Taq DNA พอลิเมอเรสและ 1 จะแยกดีเอ็นเอ (10 ng ไป 100 ng จะ1). ขยายการได้ดำเนินการกับพารามิเตอร์ต่อไปนี้ขี่จักรยาน: เริ่มต้นdenaturation ที่ 94 C สำหรับ 3 นาที ตาม ด้วยรอบ 35 ของC 94 สำหรับ 30 s, 55 C 30 s และ 72 C 1 นาที และตัวสุดท้ายส่วนขยายที่ 72 C สำหรับ 5 นาที ต่อ PCR ผลิตภัณฑ์ PCR ได้วิเคราะห์ในเจ 1.2% agarose ประกอบด้วยโบรไมด์ ethidium Aวงที่ 1 kb มี excised และสกัดสำหรับ DNA โคลนลงในเวกเตอร์ pGEM-T-ง่าย (Promega), และกำหนดให้เป็นโคลนpEHP-1 ผ่านการจัดลำดับของดีเอ็นเอ กำหนดแทรกโคลนจะ 1146-bp (หมายเลข GenBank KP759285) การค้นหาทำสำคัญคล้ายคลึงกับลำดับใน GenBankใช้ระเบิดที่ศูนย์แห่งชาติด้านเทคโนโลยีชีวภาพข้อมูล (NCBI)2.4 การติดฉลาก และใน situ hybridization โพรบดีเอ็นเอ pEHP 1 plasmid ถูกใช้เพื่อสร้างการโพรบสำหรับอิชโบโพรบยีนถูกติดป้าย digoxigenin-11-dUTP (Roche) ในการPCR reaction as described by Mari et al. (1998). The primers usedfor the labeling reaction were EHP-F (50-GGGAACGACGAACGGCTCAG) and EHP-R1 (50-TGCCTTGATGAGACACTGTT) that generated a1.1 kb fragment. Following PCR, the digoxigenin-labeled DNAprobe was precipitated with ethanol, re-suspended in water, andstored at 20 C. The probe for cotton shrimp disease,Pleistophora-like microsporidium, was generated from a cloned16S RNA gene region.The Davidson’s AFA fixed shrimp were processed, embedded inparaffin, and sectioned (4 lm thick) in accordance with standardmethods (Lightner, 1996). After deparaffinization, hydration,proteinase K digestion, and post-fixation, sections were overlaidwith 500 ll of hybridization solution (4  SSC, 50% formamide,1  Denhardt’s solution, 5% dextran sulfate, 0.5 lg/ml salmonsperm DNA) containing the EHP probe (0.2 lg/ml). Slides wereplaced on a heated surface at 90 C for 10 min and hybridized overnightat 42 C. Final detection was performed withanti-digoxigenin antibody conjugated to alkaline phosphatase(Roche) that was visualized using nitroblue tetrazolium and5-bromo-4-chloro-3-indolyl phosphate.2.5. EHP PCR assayFor PCR assays, PuReTaq Ready-To-Go PCR beads were used. Theprimers for detecting the EHP are EHP-510F (50-GCCTGAGAGATGGCTCCCACGT) and EHP-510R (50-GCGTACTATCCCCAGAGCCCGA).Amplifications were performed with the following cyclingparameters: initial denaturation at 94 C for 3 min, followed byรอบ 35 ของ 94 C สำหรับ 30 s, 60 C 30 s และ 72 C สำหรับ 30 s และ aส่วนขยายที่สุดท้ายที่ 72 C สำหรับ 5 นาที3. ผลลัพธ์ และ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

จากกุ้ง EHP
เชื้อตับถูกลบออกและรวบรวม(4-5 กุ้ง) เป็นหนึ่งในตัวอย่าง จากถังถือ EHP กุ้งที่ติดเชื้ออุจจาระและน้ำที่ถูกเก็บตัวอย่าง น้ำถังเข้มข้น 150 ครั้งมี Microsep ล่วงหน้าอุปกรณ์แรงเหวี่ยงหนีศูนย์(พอลคอร์ปอเรชั่น) และใช้สำหรับการสกัดดีเอ็นเอ. รวมดีเอ็นเอที่สกัดจากแต่ละตัวอย่างโดยใช้ดีเอ็นเอสูงบริสุทธิ์แม่แบบของการจัดทำชุด (Roche ชีววิทยาศาสตร์) หรือแมกซ์เวล-16 เซลล์ LEV . ชุดฟอกดีเอ็นเอ (Promega) เพื่อทดสอบความจำเพาะของ EHP-ไพรเมอร์ที่ตรวจ PCR ได้ดำเนินการกับดีเอ็นเอแม่แบบจาก2 โรคพยาธิ (1) ผ้าฝ้ายโรคกุ้งกุ้งกุลาดำที่รวบรวมจากมาดากัสการ์ในปี 2006 กุ้งเหล่านี้แสดงให้เห็นว่ากล้ามเนื้อสีขาว ดีเอ็นเอของพวกเขาเป็นบวกสำหรับmicrosporidium Pleistophora เหมือนถูกกำหนดโดยหน่วยย่อยขนาดเล็กrRNA ลำดับยีน (ฉบับที่ Genbank KP825331); (2) ameoba โรคเหล่านี้ได้รับความเดือดร้อนพี vannamei การตายที่สำคัญและพบได้ผ่านการตรวจสอบเนื้อเยื่อจะได้รับการติดเชื้ออะมีบา(สายพันธุ์ที่ไม่ได้กำหนด). เพื่อให้แน่ใจว่า EHP-ไพรเมอร์ไม่ได้ตอบสนองในการเป็นเจ้าภาพจีโนมดีเอ็นเอแม่แบบที่เตรียมจาก(1) เฉพาะเชื้อโรคฟรี (SPF) พี กุ้งขาว (> 10 ตัวอย่าง) และกุ้งกุลาดำ (3 ตัวอย่าง) จากฮาวายสหรัฐ (2) Penaeus indicus (2 ตัวอย่าง) จาก Saudi Arabia; (3) พี stylirostris (2 ตัวอย่าง) ที่เลี้ยงในนิวแคลิ; (4) Macrobrachium rosenbergii (2 ตัวอย่าง) จากประเทศฟิลิปปินส์ (5) ปู (7 ตัวอย่างสายพันธุ์ที่ไม่รู้จัก) เก็บรวบรวมไว้ในบริเวณใกล้เคียงของบ่อเลี้ยงกุ้งที่ตั้งอยู่ในประเทศซาอุดีอาระเบีย; (6) polychaetes (3 ตัวอย่าง), ชีวมวลอาร์ทีเมีย (9 ตัวอย่าง) ปลาหมึก (2 ตัวอย่าง) เคย(2 ตัวอย่าง) เหล่านี้ถูกส่งมาจากผู้ให้บริการในเชิงพาณิชย์ต่างๆ. 2.3 18S rRNA ยีน PCR และการโคลนสำหรับการตรวจPCR, PuReTaq พร้อม-To-Go ลูกปัด PCR (GE ดูแลสุขภาพ) ถูกนำมาใช้ ไพรเมอร์สำหรับการขยาย 18S rRNA ยีน 18S-F (50 -CACCAGGTTGATTCTGCCTGA) และ 18S-R (50 -TCTGAAATAGTGACGGGCGG) ปฏิกิริยา PCR ที่มีอยู่200 LM ของแต่ละ dNTP 0.2 LM ของแต่ละไพรเมอร์ 10 มิลลิ Tris-HCl (pH 9.0) 50 มิลลิ KCl 1.5 มิลลิ MgCl2 2.5 U Taq ดีเอ็นเอโพลิเมอร์และ1 LL ดีเอ็นเอที่สกัด (10 ng 100 งะ LL 1) ขยายได้ดำเนินการกับพารามิเตอร์การขี่จักรยานต่อไปนี้: การเริ่มต้น denaturation ที่ 94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 นาทีตามด้วย 35 รอบของ94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 วินาที 55 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 วินาทีและ 72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 นาทีและสุดท้ายส่วนขยายที่72 C เป็นเวลา 5 นาที ต่อไปนี้ PCR ผลิตภัณฑ์ PCR ถูกวิเคราะห์ในเจลagarose 1.2% ที่มีโบรไมด์ ethidium วงวันที่ 1 กิโลไบต์ถูกตัดและสกัดดีเอ็นเอโคลนเข้าไปในpGEM-T-ง่ายเวกเตอร์ (Promega) และกำหนดให้เป็นโคลนpEHP-1 ผ่านลำดับดีเอ็นเอแทรกโคลนถูกกำหนดให้เป็น 1146-bp (GenBank หมายเลข KP759285) สำหรับการค้นหาความคล้ายคลึงกันอย่างมีนัยสำคัญกับลำดับใน GenBank ได้ดำเนินการโดยใช้ระเบิดที่ศูนย์แห่งชาติเพื่อเทคโนโลยีชีวภาพสารสนเทศ(NCBI). 2.4 การติดฉลากและการสอบสวนในแหล่งกำเนิดพันธุ์ที่ได้รับการ pEHP-1 พลาสมิดดีเอ็นเอใช้ในการสร้างสอบสวน ISH ได้. สอบสวนยีนถูกกำกับด้วย digoxigenin-11-dUTP (Roche) ในปฏิกิริยาPCR ตามที่อธิบายมารีเอตอัล (1998) ไพรเมอร์ที่ใช้สำหรับการติดฉลากปฏิกิริยาเป็น EHP-F (50 -GGGAACGACGAACGGCTC AG) และ EHP-R1 (50 -TGCCTTGATGAGACACTGTT) ที่สร้างส่วน1.1 กิโล ต่อไปนี้ PCR ที่ digoxigenin ติดฉลากดีเอ็นเอสอบสวนได้รับการตกตะกอนด้วยเอทานอลอีกครั้งที่ลอยอยู่ในน้ำและเก็บไว้ที่20 องศาเซลเซียสการสอบสวนโรคกุ้งฝ้ายmicrosporidium Pleistophora เหมือนถูกสร้างขึ้นจากโคลน16S ภูมิภาคยีน RNA. เดวิดสันของ AFA กุ้งคงถูกประมวลผลที่ฝังอยู่ในพาราฟินและตัด(4 ไมครอนหนา) ตามมาตรฐานวิธีการ(Lightner, 1996) หลังจาก deparaffinization ชุ่มชื้นโปรย่อยอาหารK, และหลังการตรึงส่วนที่ถูกซ้อนทับกับ500 LL ของการแก้ปัญหาการผสมพันธุ์ (4? เอสเอส, ไมด์ 50%, 1 การแก้ปัญหา Denhardt ของซัลเฟต dextran 5%, 0.5 แอลจี / ปลาแซลมอนมลดีเอ็นเอของอสุจิ) ที่มีการสอบสวน EHP (0.2 LG / ml) ภาพนิ่งที่ถูกวางไว้บนพื้นผิวที่ให้ความร้อนที่ 90 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาทีและไฮบริดในชั่วข้ามคืนที่42 องศาเซลเซียสการตรวจสอบรอบชิงชนะเลิศได้ดำเนินการกับแอนติบอดีต่อต้านdigoxigenin ผันไปด่าง phosphatase (Roche) ที่ถูกมองเห็นโดยใช้ tetrazolium nitroblue และ5 โบรโม-4-chloro ฟอสเฟต -3-indolyl. 2.5 ทดสอบ PCR EHP สำหรับการตรวจ PCR, PuReTaq พร้อม-To-Go ลูกปัด PCR ถูกนำมาใช้ ไพรเมอร์สำหรับการตรวจสอบ EHP มี EHP-510F (50 -GCCTGAGAGATG GCTCCCACGT) และ EHP-510R (50 -GCGTACTATCCCCAGAGCCCGA). เครื่องขยายเสียงได้รับการดำเนินการกับการขี่จักรยานต่อไปนี้พารามิเตอร์: denaturation เริ่มต้นที่ 94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 นาทีตามด้วย 35 รอบของ 94 C เป็นเวลา 30 วินาที 60 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 วินาทีและ 72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 วินาทีและนามสกุลสุดท้ายที่72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที. 3 ผลการทดลองและ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

จากอันดับเครดิตที่ติดเชื้อชนิดกุ้ง , กุ้งคือ
เอาออก และ pooled ( 4 – 5 กุ้ง ) เป็นหนึ่งในตัวอย่าง จากถัง
ถือกุ้งอันดับเครดิตที่ติดเชื้อ อุจจาระและน้ำตัวอย่าง .
ถังน้ำเข้มข้น 150 ครั้ง ด้วย microsep ล่วงหน้า
แรงเหวี่ยงอุปกรณ์ ( พอล คอร์ปอเรชั่น ) และใช้สำหรับการสกัดดีเอ็นเอ .
ดีเอ็นเอทั้งหมดสกัดจากแต่ละตัวอย่างดีเอ็นเอโดยใช้
บริสุทธิ์สูงชุดการเตรียมแม่แบบ ( โรช Bioscience ) หรือเซลล์ดีเอ็นเอบริสุทธิ์ maxwell-16
เลฟ Kit ( promega ) .
ทดสอบความจำเพาะของวิธี PCR หรืออันดับเครดิต , จำนวน
กับดีเอ็นเอแม่แบบจาก 2 โรคพยาธิ ( 1 ) โรคกุ้งฝ้าย
, กุ้งกุลาดำ ที่รวบรวมจากมาดากัสการ์ในปี 2006
กุ้งเหล่านี้พบว่ากล้ามเนื้อ ขาว ดีเอ็นเอของพวกเขาบวก
สำหรับ pleistophora เหมือน microsporidium กำหนดโดยขนาดเล็ก 1
rRNA ยีนลำดับ ( ขนาดไม่ kp825331 ) ; ( 2 ) ameoba
P . vannamei ทรมานจากโรคเหล่านี้อย่างมากและ
พบผ่านครีบ จะติดเชื้ออะมีบา ( ชนิดไม่ระบุ )
.
เพื่อให้อันดับเครดิตชนิดไม่ตอบสนองต่อโฮสต์ จีโนม , ดีเอ็นเอ
แม่แบบที่เตรียมจาก( 1 ) เฉพาะปลอดโรค ( SPF )
P . vannamei ( 10 ตัวอย่าง ) และกุ้งกุลาดำ ( 3 ตัวอย่าง ) จาก
ฮาวาย เรา ( 2 ) แบบปลักร้ ( 2 ตัวอย่าง ) จากซาอุดิอาระเบีย ;
( 3 ) หน้า stylirostris ( 2 ตัวอย่าง ) ที่เพาะเลี้ยงในนิวแคลิโดเนีย ; ( 4 )
กุ้งก้ามกราม ( ตัวอย่าง 2 ) จากฟิลิปปินส์ และ ( 5 )
ปู ( 7 ตัวอย่าง ไม่ทราบชนิด ที่รวบรวมในบริเวณ
บ่อเลี้ยงกุ้งอยู่ในซาอุดิอารเบีย ;( 6 ) เพรียง
( 3 ตัวอย่าง ) , อาร์ทีเมีย ชีวมวล ( 9 คน ) , ปลาหมึก ( 2 ตัวอย่าง ) กุ้งเคย
( 2 ตัวอย่าง ) นี้ถูกส่งจากผู้ให้บริการเชิงพาณิชย์ต่างๆ
2.3 18S rRNA ยีน PCR และโคลน
สำหรับ PCR พบ puretaq , พร้อมที่จะไปจากลูกปัด ( GE
Healthcare ) สถิติที่ใช้ ไพรเมอร์สำหรับ amplifying 18S rRNA ยีน 18s-f ( 50

- caccaggttgattctgcctga ) และ 18s-r
( 50
- tctgaaatagtgacgggcgg )การตรวจปฏิกิริยาที่มีอยู่
200 LM ของแต่ละ dntp 0.2 LM ของแต่ละสีรองพื้น 10 มม. นอกจากนี้ – HCl
( พีเอช 9.0 ) . 50 มม. 1.5 มม. ชุด 2.5 วูทัค DNA polymerase
1 จะสกัดดีเอ็นเอ ( 10 กรัม 100 ng ll
1
) การเพิ่มปริมาณได้ด้วยค่า

( จักรยานต่อไปนี้ : เริ่มต้นที่ 94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 3 นาที ตามด้วย 35 รอบ
94 C 30 S 55 C 30 , และ 72 องศาเซลเซียสนาน 1 นาทีและส่วนขยายสุดท้าย
72 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีโดยต่อไปนี้ผลิตภัณฑ์ PCR ถูก
วิเคราะห์ใน 1.2% เจลที่มีทิเดียมโบรไมด์ . เป็นวงดนตรีที่บางครั้งถูก
1 ตัดและสกัดดีเอ็นเอโคลนเข้า pgem-t-easy เวกเตอร์ ,
( promega ) และกำหนดให้เป็นโคลน
pehp-1 . ผ่านการจัดลำดับดีเอ็นเอ การโคลนใส่ตั้งใจ
เป็น 1146 BP ( ขนาดไม่ kp759285 ) ค้นหา
ความคล้ายคลึงกันอย่างมีนัยสำคัญกับลำดับในการใช้ระเบิดที่พบ

ศูนย์ข้อมูลเทคโนโลยีชีวภาพแห่งชาติ ( ncbi ) .
2.4 . ตรวจสอบฉลากและใน situ hybridization
ดีเอ็นเอพลาส pehp-1 ถูกใช้เพื่อสร้างค้นหา ish .
ยีนตัวถูกกับ digoxigenin-11-dutp ( โรช ) ในปฏิกิริยา PCR
ตามที่อธิบายไว้โดยมาริ et al . ( 1998 ) ไพรเมอร์ใช้