phenotype thereby permitting the us

phenotype thereby permitting the use of CTCs as a predictive
factor in clinical trials (Andree KC et al., 2016). Nevertheless,
there is growing evidence that detection of CTCs based on
cytological or antigen detection does not reflect the total
pool of disseminating cells and may even ignore highly clinically
relevant subpopulations like the multicellular mesenchymal
CTC clusters (Yang et al., 2015; Yu et al., 2013).
In the current study, we were able to detect at least one
CTC in 90% of samples, including those from non-metastatic
CRCs, by using the ScreenCell size-based device which is
significantly higher than what has been reported by other
technics, especially those using epithelial immunoselection.
This is in agreement with the notion that the most widely
used technics likely underestimate the real number of total
CTCs by which supposedly are most likely to initiate new tumors
or metastasis (Cao et al., 2015; Barriere et al., 2014a,
2014b; Yu et al., 2013).
In contrast, we acknowledge that small CTCs, which are
close to leucocytes in size, would be lost using this technic
(Williams et al., 2012). Moreover, even if we are able to detect
a higher number of tumor cells, it is at the expense of lower
specificity due to leucocyte contamination. Consequently, if
we wish to carry out molecular characterization of CTCs using
this device, we need an extremely sensitive method in order to
detect very small amounts of mutant DNA. We here propose a
combination of techniques that improves our capacity to
detect mutants of interest in CTCs based on multiplex KRAS
ddPCR-assay and which furthermore appear feasible to implement
by a hospital platform.
Collectively, our data show that it is feasible to use the
KRAS mutant multiplex screening assay exploiting ddPCR
technologies. The sensitivity observed in the studies presented
here (about 0.05%) is clearly superior to what is
observed for other technics in current use. The association

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กนิจึงเอื้ออำนวยการใช้ CTCs เป็นการทำนายปัจจัยในการทดลองทางคลินิก (อาเดเลีย KC et al. 2016) อย่างไรก็ตามมีหลักฐานการเติบโตที่ใช้ตรวจหา CTCscytological หรือการตรวจหา antigen ไม่สะท้อนผลรวมสระว่ายน้ำของแพร่เซลล์ และอาจสนใจสูงทางการแพทย์subpopulations ที่เกี่ยวข้องเช่นการหลายเซลล์ mesenchymalกลุ่ม CTC (Yang et al. 2015 Yu et al. 2013)ในการศึกษาปัจจุบัน เราก็สามารถตรวจพบอย่างน้อยหนึ่งCTC 90% ของตัวอย่าง รวมทั้งจากไม่แพร่กระจายCRCs โดยใช้ ScreenCell ขนาดอุปกรณ์ซึ่งเป็นอย่างมีนัยสำคัญสูงกว่าสิ่งที่มีการรายงานอื่น ๆtechnics โดยเฉพาะอย่างยิ่งผู้ที่ใช้ immunoselection เยื่อบุผิวนี่คือข้อตกลงความคิดที่แพร่หลายมากที่สุดมีแนวโน้มใช้ technics ประมาทรวมจำนวนจริงCTCs ซึ่งคาดคะเนมักจะเริ่มงอกใหม่หรือแพร่กระจาย (Cao et al. 2015 Barriere et al. 2014a2014b Yu et al. 2013)ในทางตรงข้าม เราทราบว่า ขนาดเล็ก CTCs ซึ่งเป็นใกล้เคียงกับเม็ดเลือดขาวขนาด จะหายไปโดยใช้เทคนิคนี้(Williams et al. 2012) นอกจากนี้ แม้ว่าเราจะสามารถตรวจพบสูงกว่าจำนวนเซลล์เนื้องอก เป็นค่าใช้จ่ายต่ำกว่าความจำเพาะเนื่องจากปนเปื้อน leucocyte ดังนั้น ถ้าเราต้องการดำเนินการลักษณะโมเลกุลของ CTCs ใช้อุปกรณ์นี้ เราจำเป็นวิธีการสำคัญมากเพื่อให้ตรวจพบจำนวนเล็กน้อยกลายพันธุ์ดีเอ็นเอ ที่นี่เรานำเสนอเป็นชุดของเทคนิคที่ช่วยเพิ่มความสามารถให้เราตรวจหาการกลายพันธุ์น่าสนใจใน CTCs อิงคราสมัลติเพล็กซ์ddPCR assay ซึ่งนอกจากแสดงและเหมาะสมในการใช้โดยแพลตฟอร์มโรงพยาบาลโดยรวม ข้อมูลของเราแสดงว่า มันเป็นสิ่งที่เหมาะสมในการใช้การมัลติเพล็กซ์ตรวจวิเคราะห์การใช้ประโยชน์จาก ddPCR กลายพันธุ์คราสเทคโนโลยี ความไวในการสังเกตในการศึกษาที่นำเสนอที่นี่ (ประมาณ 0.05%) จะมีอะไรดีกว่าอย่างชัดเจนข้อสังเกตสำหรับ technics อื่น ๆ ปัจจุบันใช้ ความสัมพันธ์ของ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ฟีโนไทป์จึงอนุญาตให้ใช้ CTCs เป็นทำนาย
ปัจจัยในการทดลองทางคลินิก (Andree KC et al., 2016) อย่างไรก็ตาม
มีหลักฐานเพิ่มขึ้นว่าการตรวจสอบของ CTCs ขึ้นอยู่กับ
เซลล์วิทยาหรือการตรวจหาแอนติเจนไม่สะท้อนรวม
สระว่ายน้ำของเซลล์เผยแพร่และอาจไม่สนใจอย่างสูงทางคลินิก
ประชากรที่เกี่ยวข้องเช่นเซลล์ mesenchymal
กลุ่ม CTC (Yang et al, 2015;. Yu et al, ., 2013)
ในการศึกษาในปัจจุบันเราก็สามารถที่จะตรวจสอบอย่างน้อยหนึ่ง
CTC ใน 90% ของกลุ่มตัวอย่างรวมถึงผู้ที่จากการไม่แพร่กระจาย
CRCs โดยใช้อุปกรณ์ขนาดตาม ScreenCell ซึ่งเป็น
ที่สูงกว่าสิ่งที่ได้รับรายงานจากคนอื่น ๆ อย่างมีนัยสำคัญ
เทคนิคโดยเฉพาะอย่างยิ่ง ผู้ที่ใช้ immunoselection เยื่อบุผิว
นี้อยู่ในข้อตกลงกับความคิดที่ว่ากันอย่างกว้างขวางที่สุด
เทคนิคแนวโน้มว่าจะใช้ประมาทจำนวนที่แท้จริงของการรวม
CTCs โดยซึ่งคาดว่ามีแนวโน้มที่จะเริ่มต้นการเนื้องอกใหม่
หรือการแพร่กระจาย (Cao et al, 2015;. Barriere, et al, 2014a.
2014b; Yu et al., 2013)
ในทางตรงกันข้ามเรารับทราบว่า CTCs ขนาดเล็กซึ่งมีความ
ใกล้เคียงกับเซลล์เม็ดเลือดขาวในขนาดที่จะหายไปโดยใช้เทคนิคนี้
(วิลเลียมส์ et al., 2012) นอกจากนี้แม้ว่าเราจะสามารถตรวจสอบ
จำนวนที่สูงขึ้นของเซลล์มะเร็งก็เป็นค่าใช้จ่ายของการลด
ความจำเพาะเนื่องจากการปนเปื้อนของเม็ดโลหิตขาว ดังนั้นหาก
เราต้องการที่จะดำเนินการลักษณะโมเลกุลของ CTCs ใช้
อุปกรณ์นี้เราต้องเป็นวิธีการที่มีความสำคัญมากในการที่จะ
ตรวจสอบปริมาณที่น้อยมากของดีเอ็นเอของมนุษย์กลายพันธุ์ ที่นี่เรานำเสนอ
การผสมผสานของเทคนิคที่ช่วยเพิ่มขีดความสามารถของเราในการ
ตรวจหาการกลายพันธุ์ที่น่าสนใจใน CTCs ขึ้นอยู่กับ multiplex KRAS
ddPCR-ทดสอบและที่ยิ่งไปกว่านั้นปรากฏเป็นไปได้ที่จะใช้
แพลตฟอร์มโรงพยาบาล
เรียกรวมกันว่าข้อมูลของเราแสดงให้เห็นว่ามันเป็นไปได้ที่จะใช้
ทดสอบ KRAS กลายพันธุ์คัดกรอง multiplex เอาเปรียบ ddPCR
เทคโนโลยี ความไวในการสังเกตในการศึกษาที่นำเสนอ
ที่นี่ (ประมาณ 0.05%) เห็นได้ชัดที่เหนือกว่าสิ่งที่เป็น
ข้อสังเกตสำหรับเทคนิคอื่น ๆ ในการใช้งานในปัจจุบัน สมาคม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ฟีโนไทป์จึงอนุญาตให้ใช้ ctcs เป็นพยากรณ์ปัจจัยในการทดลองทางคลินิก นเดร เคซี et al . , 2016 ) อย่างไรก็ตามมีหลักฐานว่า การเติบโตของ ctcs ตามสามารถตรวจหาแอนติเจนหรือไม่สะท้อนทั้งหมดสระว่ายน้ำแบบเซลล์และอาจไม่สนใจอย่างสูงทางการแพทย์แต่ละที่เกี่ยวข้องเช่นหลายเซลล์มีเซนไคมอลกลุ่ม CTC ( หยาง et al . , 2015 ; ยู et al . , 2013 )ในการศึกษาปัจจุบัน เราสามารถที่จะตรวจสอบอย่างน้อยหนึ่งCTC ใน 90% ของตัวอย่าง รวมทั้งไม่แพร่กระจายจากcrcs โดยใช้อุปกรณ์ที่เป็น screencell ขนาดตามสูงกว่าที่ได้รับรายงานอื่น ๆเทคนิค โดยเฉพาะผู้ที่ใช้บุ immunoselection .นี้สอดคล้องกับความคิดนั้นมากที่สุดอย่างกว้างขวางใช้เทคนิคอาจประมาทจำนวนที่แท้จริงของทั้งหมดctcs ที่น่าจะมีโอกาสมากที่สุดที่จะเริ่มต้นการงอกใหม่หรือการแพร่กระจาย ( เคา et al . , 2015 ; บาร์รีเย่ร์ 2014a et al . ,2014b ; ยู et al . , 2013 )ในทางตรงกันข้าม เรายอมรับว่า ctcs ขนาดเล็กซึ่งเป็นใกล้ leucocytes ขนาดจะหายไปนี้โดยใช้เทคนิค( วิลเลียม et al . , 2012 ) นอกจากนี้ แม้เราจะสามารถตรวจสอบตัวเลขที่สูงขึ้นของเซลล์มะเร็ง มันเป็นค่าใช้จ่ายต่ำวิธีเนื่องจากการปนเปื้อนระดับ . ดังนั้นถ้าเราต้องการที่จะดำเนินการลักษณะทางโมเลกุลของ ctcs โดยใช้อุปกรณ์นี้ เราต้องมีวิธีการที่ละเอียดอ่อนมากเพื่อตรวจสอบปริมาณที่น้อยมากของพวกกลายพันธุ์ดีเอ็นเอ ที่นี่เราเสนอการรวมกันของเทคนิคที่ช่วยเพิ่มความสามารถของเราตรวจหาสายพันธุ์ของความสนใจใน ctcs ตาม kras มัลติเพล็กซ์ddpcr assay และที่นอกจากนี้ยังเป็นไปได้ที่จะใช้ปรากฏโดยโรงพยาบาลแพลตฟอร์มเรียกข้อมูลของเราแสดงให้เห็นว่ามันเป็นไปได้ที่จะใช้kras multiplex การทดสอบการคัดกรอง ddpcr กลายพันธุ์เทคโนโลยี ความไวและการศึกษาที่นำเสนอที่นี่ ( ประมาณ 0.05 % ) จะชัดกว่าอะไรสังเกตสำหรับเทคนิคอื่น ๆในการใช้งานปัจจุบัน สมาคม