The total content of ABA in the embryo depended upon its development and ranged from
0.044 to 0.95 mg per embryo (data not shown) with
the highest and lowest values observed on the
same dates as in the case of ABA concentration.
This pattern of change in ABA level in 2n ZE
during development is consistent with that reported
for other species [2–4,11]. However, the
values obtained in our study of the concentration
of ABA in ZE, especially at the peak, (expressed
on FW basis) are somewhat higher than those
cited in the literature (but are still within a physiological
range). For example, the respective values
for zygotic embryos of bean [21], rapeseed [11] and
of soybean [4] are about 1.75, 3 and 17 mg g1
FW. In some species, however, as, for example, in
Picea glauca, the concentration of ABA in embryos
when recalculated on a FW basis is almost
the same (49.5 mg g1 FW vs. 51.1 mg g1 FW)
[22]. It is worth mentioning that the values of
ABA concentration in fruit tissues of cucumber
recorded by Kim et al. [23] and Kuz’mina [24] for
appropriate stages are comparable with those obtained
in our study.
In order to compare whether other tissues of the
ovule, besides the embryo, also contain ABA, its
level in the whole ovule, testa, and in the ovary
tissues surrounding the seeds, is parallel with the
dissected embryos, has been determined on a few
dates (Table 1). The content of ABA in the whole
ovule increased considerably (by about 40-fold)
between 14 and 21 DAP and further by more than
3-fold during the next 3 days (Table 1). Although
the concentration of ABA in the ovule both at 21
and 24 DAP was 2–3-fold lower than in the
embryo, the content of ABA in the ovule was
greater (0.54 mg ovule1 versus 0.40 mg per embryo
and 1.68 mg per ovule versus 0.95 mg per
embryo, respectively) (Table 1). Also the testa
contained ABA (3.86 mg g1 FW and 0.06 mg g1
FW at 21 and 24 DAP, respectively) (Table 1), as
well as, the ovary tissues surrounding the seeds
(0.382 mg g1 FW determined on 35 DAP).
The results of this study clearly show that in
addition to the embryos, other tissues of the
ovules and of the ovary surrounding the seeds also
contain ABA. Since, as concluded by Nakamura
et al. [25], ABA applied to leaves is translocated to
the grains of rice, we may assume that the surrounding
tissues may also be a source of ABA for
the embryos. The large decrease (by about 60-fold)
in the concentration of ABA in the testa observed
here between 21 and 24 DAP coincides with a
substantial increase of this hormone in the embryo,
also supports this point of view. On the
other hand, however, Rajasekaran et al. [26] are
not convinced that import of ABA to the embryo
from other parts takes place.
The total content of ABA in the embryo depended upon its development and ranged from0.044 to 0.95 mg per embryo (data not shown) withthe highest and lowest values observed on thesame dates as in the case of ABA concentration.This pattern of change in ABA level in 2n ZEduring development is consistent with that reportedfor other species [2–4,11]. However, thevalues obtained in our study of the concentrationof ABA in ZE, especially at the peak, (expressedon FW basis) are somewhat higher than thosecited in the literature (but are still within a physiologicalrange). For example, the respective valuesfor zygotic embryos of bean [21], rapeseed [11] andof soybean [4] are about 1.75, 3 and 17 mg g1FW. In some species, however, as, for example, inPicea glauca, the concentration of ABA in embryoswhen recalculated on a FW basis is almostthe same (49.5 mg g1 FW vs. 51.1 mg g1 FW)[22]. It is worth mentioning that the values ofABA concentration in fruit tissues of cucumberrecorded by Kim et al. [23] and Kuz’mina [24] forappropriate stages are comparable with those obtainedin our study.In order to compare whether other tissues of theovule, besides the embryo, also contain ABA, itslevel in the whole ovule, testa, and in the ovarytissues surrounding the seeds, is parallel with thedissected embryos, has been determined on a fewdates (Table 1). The content of ABA in the wholeovule increased considerably (by about 40-fold)between 14 and 21 DAP and further by more than3-fold during the next 3 days (Table 1). Althoughthe concentration of ABA in the ovule both at 21and 24 DAP was 2–3-fold lower than in theembryo, the content of ABA in the ovule wasgreater (0.54 mg ovule1 versus 0.40 mg per embryoand 1.68 mg per ovule versus 0.95 mg perembryo, respectively) (Table 1). Also the testacontained ABA (3.86 mg g1 FW and 0.06 mg g1FW at 21 and 24 DAP, respectively) (Table 1), aswell as, the ovary tissues surrounding the seeds(0.382 mg g1 FW determined on 35 DAP).The results of this study clearly show that inaddition to the embryos, other tissues of theovules and of the ovary surrounding the seeds alsocontain ABA. Since, as concluded by Nakamuraet al. [25], ABA applied to leaves is translocated tothe grains of rice, we may assume that the surroundingtissues may also be a source of ABA forthe embryos. The large decrease (by about 60-fold)in the concentration of ABA in the testa observedhere between 21 and 24 DAP coincides with asubstantial increase of this hormone in the embryo,also supports this point of view. On theother hand, however, Rajasekaran et al. [26] arenot convinced that import of ABA to the embryofrom other parts takes place.
การแปล กรุณารอสักครู่..

The total content of ABA in the embryo depended upon its development and ranged from
0.044 to 0.95 mg per embryo (data not shown) with
the highest and lowest values observed on the
same dates as in the case of ABA concentration.
This pattern of change in ABA level in 2n ZE
during development is consistent with that reported
for other species [2–4,11]. However, the
values obtained in our study of the concentration
of ABA in ZE, especially at the peak, (expressed
on FW basis) are somewhat higher than those
cited in the literature (but are still within a physiological
range). For example, the respective values
for zygotic embryos of bean [21], rapeseed [11] and
of soybean [4] are about 1.75, 3 and 17 mg g1
FW. In some species, however, as, for example, in
Picea glauca, the concentration of ABA in embryos
when recalculated on a FW basis is almost
the same (49.5 mg g1 FW vs. 51.1 mg g1 FW)
[22]. It is worth mentioning that the values of
ABA concentration in fruit tissues of cucumber
recorded by Kim et al. [23] and Kuz’mina [24] for
appropriate stages are comparable with those obtained
in our study.
In order to compare whether other tissues of the
ovule, besides the embryo, also contain ABA, its
level in the whole ovule, testa, and in the ovary
tissues surrounding the seeds, is parallel with the
dissected embryos, has been determined on a few
dates (Table 1). The content of ABA in the whole
ovule increased considerably (by about 40-fold)
between 14 and 21 DAP and further by more than
3-fold during the next 3 days (Table 1). Although
the concentration of ABA in the ovule both at 21
and 24 DAP was 2–3-fold lower than in the
embryo, the content of ABA in the ovule was
greater (0.54 mg ovule1 versus 0.40 mg per embryo
and 1.68 mg per ovule versus 0.95 mg per
embryo, respectively) (Table 1). Also the testa
contained ABA (3.86 mg g1 FW and 0.06 mg g1
FW at 21 and 24 DAP, respectively) (Table 1), as
well as, the ovary tissues surrounding the seeds
(0.382 mg g1 FW determined on 35 DAP).
The results of this study clearly show that in
addition to the embryos, other tissues of the
ovules and of the ovary surrounding the seeds also
contain ABA. Since, as concluded by Nakamura
et al. [25], ABA applied to leaves is translocated to
the grains of rice, we may assume that the surrounding
tissues may also be a source of ABA for
the embryos. The large decrease (by about 60-fold)
in the concentration of ABA in the testa observed
here between 21 and 24 DAP coincides with a
substantial increase of this hormone in the embryo,
also supports this point of view. On the
other hand, however, Rajasekaran et al. [26] are
not convinced that import of ABA to the embryo
from other parts takes place.
การแปล กรุณารอสักครู่..

เนื้อหาทั้งหมดของ ABA ในตัวอ่อนขึ้นอยู่กับการพัฒนาและระหว่าง
0.044 เพื่อ 0.95 มิลลิกรัมต่อเอ็มบริโอ ( ข้อมูลไม่แสดง ) กับ
สูงสุดและต่ำสุดค่าสังเกตในวันที่
เช่นเดียวกับในกรณีของ ABA ความเข้มข้น .
นี้รูปแบบของการเปลี่ยนแปลงในระดับ ABA ใน 2n ze
ในระหว่างการพัฒนาที่สอดคล้อง กับรายงาน
สำหรับชนิดอื่น ๆและ 4,11 [ 2 ] อย่างไรก็ตาม
ที่ได้ในการศึกษาของความเข้มข้น
ของ ABA ใน ze , โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่จุดสูงสุด ( แสดง
บน FW พื้นฐาน ) จะค่อนข้างสูงกว่า
อ้างในวรรณคดี ( แต่ยังอยู่ในทางสรีรวิทยา
ช่วง ) ตัวอย่างเช่น ตามค่า
สำหรับตัวอ่อนเป็นต้นถั่ว [ 21 ] , rapeseed [ 11 ] และ [ 4 ]
ของถั่วเหลืองประมาณ 1.75 , 3 และ 17 มิลลิกรัมกรัม 1
FW ในบางชนิด อย่างไรก็ตาม เป็น ตัวอย่าง ใน
picea glauca ความเข้มข้นของ ABA ในเอ็มบริโอ
เมื่อคำนวณบน FW พื้นฐานเกือบ
เหมือนกัน ( 49.5 mg G FW 1 vs 51.1 มก. กรัม 1 FW )
[ 22 ] เป็นมูลค่าการกล่าวขวัญว่าค่า
ABA ความเข้มข้นในเนื้อเยื่อของผลแตงกวา
บันทึกโดย Kim et al . [ 23 ] และ kuz'mina [ 24 ]
ขั้นตอนที่เหมาะสม ทัดเทียมกับค่า
ในการศึกษาของเราเพื่อเปรียบเทียบว่าเนื้อเยื่ออื่นๆของ
ออวุล นอกจากนี้ตัวอ่อนยังมี ABA ,
) ออวุล ทั้งเทสต้า และในรังไข่
เนื้อเยื่อรอบเมล็ด ขนานกับ
ผ่าตัวอ่อนได้รับการพิจารณาไม่กี่
วัน ( ตารางที่ 1 ) เนื้อหาของ ABA ในการเข้าสู่ระบบทั้งหมด
เพิ่มขึ้นอย่างมาก ( ประมาณ 40 เท่า )
ระหว่าง 14 และ 21 DAP และเพิ่มเติมมากกว่า
3-fold ในอีก 3 วัน ( ตารางที่ 1 ) แม้ว่า
ความเข้มข้นของ ABA ในการเข้าสู่ระบบทั้งใน 21
24 DAP 2 – 3-fold น้อยกว่า
ตัวอ่อน เนื้อหาของ ABA ในการเข้าสู่ระบบได้มากขึ้น ( 0.54 มิลลิกรัมออวุล
1 กับ 0.40 มิลลิกรัมต่อทารกในครรภ์
และ 1.68 มก. ต่อออวุลและ 0.95 มิลลิกรัมต่อ
ตัวอ่อน ตามลำดับ ) ตารางที่ 1 ) นอกจากนี้ เทสทา
ที่มีอยู่ ABA ( 3.86 mg ต่อ 1 FW และ 0.06 มิลลิกรัมต่อ 1
FW ที่ 21 และ 24 DAP ,ตามลำดับ ( ตารางที่ 1 ) ,
ทั้งรังไข่เยื่อเมล็ด
( 0.382 มิลลิกรัมกรัม 1 FW กำหนด 35 DAP )
) ผลการศึกษานี้แสดงให้เห็นอย่างชัดเจนว่าใน
นอกจากตัวอ่อนเนื้อเยื่ออื่น ๆของ
ออวุลและรังไข่รอบเมล็ดยัง
ประกอบด้วย 2 . เนื่องจาก เป็นสรุปโดยนากามูระ
et al . [ 25 ] , ABA ใช้กับใบ translocated
เม็ดข้าวเราอาจจะคิดว่ารอบ
เนื้อเยื่ออาจเป็นแหล่งของ ABA สำหรับ
ตัวอ่อน . การลดขนาดใหญ่ ( ประมาณ 60 เท่า )
ในความเข้มข้นของ ABA ในเทสลา สังเกต
ที่นี่ระหว่าง 21 และ 24 DAP coincides กับ
เพิ่มขึ้นอย่างมากของฮอร์โมนนี้ในตัวอ่อน
ยังสนับสนุนมุมมองนี้ บน
มืออื่น ๆ , อย่างไรก็ตาม , rajasekaran et al . [ 26 ]
ไม่มั่นใจว่าเข้าของ ABA เพื่อตัวอ่อน
จากส่วนอื่น ๆเกิดขึ้น
การแปล กรุณารอสักครู่..
