Description: Bornavirus is the caus

Description: Bornavirus is the causative agent of Borna disease. Borna disease virus (BDV) is a negative-stranded neurotropic RNA virus. A neurotropic virus is a virus which can infect nerve cells, or which does so preferentially. A few commonly known neurotropic viruses are Rabies, Herpes virus, Poliovirus, and Japanese Encephalitis.

Borna disease was first recognized in 1885 in cavalry horses in the town of Borna in Saxony, Germany. BDV, the virus that causes Borna Disease, appears to have a wide host range having been detected in birds, horses, cattle, sheep, dogs and foxes. In 1995, the virus was isolated from cats suffering from a "staggering disease". In 2000, a Swedish researcher isolated BDV from wild birds including mallards and jackdaws. BDV has also been found in ostrich farms in Australia. It is generally accepted that ADV causes a persistent infection of the central nervous system (CNS). This infection can be expressed in varying degrees from mild behavioral changes to severe neurological disease.
Bornavirus was first described in psittaciforms in 2008 by researchers at UCSF who were studying a group of five parrots suffering from Proventricular Dilatation Disease (PDD). Using microarray technology, the group isolated a negative-stranded RNA virus from three of the five birds. This virus was determined to be a member of the Bornaviridae family. The researchers named the avian strain 'Avian Bornavirus' (ABV).


It has long been believed that PDD is caused by an enveloped neurotropic virus that in some cases causes cytokine storm resulting from lymphocyte infiltration to the proventriculus (forestomach), ventriculus (gizzard), and areas of the small intestines. As a result of the damage, birds are unable to digest their food properly. In some birds with PDD, the severely dilated thin wall of the proventriculus may rupture, resulting in movement of undigested food into the abdominal cavity causing severe infection which many times leads to rapid death.

Research strongly suggests that ABV plays a pivotal role in the onset of PDD in birds. ABI has tested over 5000 samples from both suspect and non-suspect birds. Samples from over 500 cases of PDD diagnosed birds have been confirmed to have ABV antibodies as well as Borna virus RNA. However, there is also a large population of birds that have tested positive for ABV but have not developed any clinical signs of PDD.
New research confirms that cloacal swabs and fecal samples are not a reliable source of ABV RNA due to the inconsistent shedding of the virus and destructive forces like bacteria, enzymes and other contaminants found in the feces. This results in an unacceptable percentage of false negatives by PCR.
ABV has been found in samples from countries in Europe, Asia, African and South America.
ABV is also being studied as a possible causitive agent of conditions such as skin inflammation, feather plucking, self mutilation, major neurological problems, and chronic bacterial and fungal infections.
In May 2010, we recieved feather samples from 6 birds who are chronic feather pluckers. 5 of the 6 birds tested positive for ABV by rtPCR using feather samples. None of these birds were suffering from any weight problems as observed by the vetrinarian treating them.
________________________________________
Transmission: Bornavirus transmission is not well understood. Bornavirus is thought to be primarily transferred from one individual to another through direct or intimate contact, or by exposure to infected fecal material. Avian Biotech is currently studying ABV transmission from an infected female to an egg and performing testing to determine embryonic infection of ABV. Additional work is being done to study ABV-specific antibody levels in the yolk of an egg laid by an infected bird. ABI is also studying cellular transmission and variations in specific ABV protein expression from one individual to another.
________________________________________
Symptoms: Signs suggestive of PDD include weight loss over a period of weeks to months despite a good appetite, passage of undigested food, vomiting, abdominal distention, and impaction of the crop and proventriculus.
Neurological signs include intermittent shaking of the bird's head, feather plucking and mutilation, problems with balance, moaning or crying due to digestive problems, change in aggression, and seizures. Some or all of these signs may or may not be present.
It is also important to note that in many cases birds infected with ABV may not develop any symptoms of ABD or PDD for years or even decades before the onset of disease. It is still unknown if a percentage of birds may never develop any symptoms of disease but may continue to function as a reservoir for ABV and allow the virus to infect other birds.
________________________________________
Prevention: In 2010 ABI began testing a sub-unit vaccine to prevent the spread of the disease and the results are looking very promising.
To disinfect areas that may have been contaminated by bornavirus, use an oxidizer solution such as diluted bleach: 50 parts water to 1 part bleach, plus a small amount of dish soap as a wetting agent.
________________________________________
Treatment: There are no known treatments for ABV infections. ABI is looking forward to conducting experimental treatments using ABI's own parrot-specific gamma and alpha interferon, as well as combining these cytokins with specific anti-viral drugs. Proventricular Dilatation Disease (PDD
________________________________________
Diagnosis: Complete ABV/PDD panel!!
Two methods of identifying ABV infection are available at ABI: serology (rELISA) which tests for immunological exposure to specific ABV antigens, and direct rtPCR which detects the presence of ABV-specific RNA. Our complete ABV panel includes both the rtPCR and the ELISA panel.
ABV ELISA panel consists of 4 AVB-specific proteins (P40, P24, P29, and matrix). A small serum sample is required for the rELISA panel.

ABV rtPCR panel is a multiplex assay that amplifies both conserved ABV M&N segment genes as well as two internal RNA controls (housekeeping genes). Internal controls are extremely important to confirm proper RNA isolation. For routine ABV screening using rtPCR, the most reliable samples are chest or breast contour feathers.
Cloacal or vent swabs as well as fecal samples are not recommended for routine screening due to the intermittent shedding of the virus, as well as bacterial and enzymatic degradation, that greatly reduce the reliability of this sample type. Because of the neurotropic nature of the virus, blood is also not recommended for rtPCR.
For postmortem detection of ABV RNA, samples from the brain, proventricular tissue, or crop biopsies stored in alcohol are preferred.
Animal Genetics' latest publication on ABV was submitted for publication to the Journal of Veterinarian Diagnostic Investigation. Our research paper describes current methods used by Animal Genetics for detection of ABV. This paper also demonstrates the effectiveness of testing for ABV from feathers, and compares the reliability of a feather sample with a cloacal swab and serum sample.
________________________________________
Sample: Serum samples are currently accepted for ELISA. However, fecal samples and blood cards are being evaluated and could become an alternative sample for ELISA. Cloacal swabs are not considered an reliable source for ABV RNA and should not be submitted by them selfs for rtPCR. Due to the neurotropic nature of the virus, the calamus of 4-8 plucked chest or breast feathers provides the best source of viral RNA for screening of birds infected with ABV.
Postmortem testing requires a small brain tissue sample placed in alcohol. Detailed information has been submitted for publication in the "Journal of Veterinary Diagnostic Investigation". Proventricular Dilatation Disease (PDD)
________________________________________
Handling: Samples should be submitted by overnight or two day air.
________________________________________
Limitations: Because of mutations occurring in ABV genome, it may be difficult to detect all subtypes. Proventricular Dilatation Disease (PDD
________________________________________
References:

HOME -DNA SEXING - DISEASE TESTING - RESULTS - PRICING - FAQ - LINKS
FREE COLLECTION KITS - DOWNLOAD FORMS - AVIAN CONNECTION - Member Login


http://www.avianbiotech.com/diseases/bornavirus.htm
Borna disease is an infectious neurological syndrome[1] of warm-blooded animals, caused by Borna disease virus (BDV), which causes abnormal behaviour and fatality. The Borna disease virus is a neurotropic virus and is a member of the Bornaviridae family within the Mononegavirales order.
Although the Borna disease virus is mainly seen as the causative agent of borna disease in horses and other animals, it also infects humans and is therefore considered to be azoonotic agent. The role of BDV in human illness is controversial and it is yet to be established whether BDV causes any overt disease in humans. However, correlative evidence exists linking BDV infection with neuropsychiatric disorders such as bipolar disorder.[2]
Contents
[hide]
• 1 Epidemiology
o 1.1 Vectors
o 1.2 Animals
• 2 History
o 2.1 Psychiatric disease
• 3 References
Epidemiology[edit]
Vectors[edit]
The mode of transmission of BDV is unclear but probably occurs through intranasal exposure to contaminated saliva or nasal secretions. Following infection, individuals may develop Borna disease, or may remain subclinical, possibly acting as a carrier of the virus.
Animals[edit]
Borna virus appears to have a wide host range, having been detected in horses, cattle, sheep, dogs and foxes. In 1995, the virus was isolated from cats suffering from a "staggering disease" in Sweden. Since that time, the virus has also been detected in cats in Japan and Britain.
Borna virus has been detected in humans, and researchers have presented evidence connecting these i

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

รายละเอียด: Bornavirus เป็นตัวแทนสาเหตุการ Borna โรค Borna โรคไวรัส (BDV) เป็นควั่นลบ neurotropic อาร์เอ็นเอไวรัส Neurotropic ไวรัสคือ ไวรัสที่สามารถติดเชื้อเซลล์ประสาท หรือที่ไม่ได้ขึ้นก่อน ไวรัส neurotropic รู้จักกันโดยทั่วไปไม่มีโรค Herpes, Poliovirus แล้วไวรัสสมอง อักเสบญี่ปุ่น โรค Borna เป็นครั้งแรกรู้จักใน 1885 ในม้าทหารม้าในเมือง Borna ในแซกโซนี เยอรมนี BDV ไวรัสที่เป็นสาเหตุของโรค Borna ดูเหมือนจะ มีช่วงกว้างของโฮสต์ไม่พบในนก ม้า วัว แกะ สุนัข และละมั่งสุนัขจิ้งจอก ใน 1995 ไวรัสถูกแยกต่างหากจากแมวที่ทุกข์ทรมานจาก "โรคส่าย" ในปี 2000 นักวิจัยสวีเดนแยกต่างหาก BDV จากนกป่ารวมทั้ง mallards และ jackdaws BDV ยังพบในนกกระจอกเทศฟาร์มในออสเตรเลีย โดยทั่วไปยอมรับว่า ADV เป็นสาเหตุของการติดเชื้อแบบถาวรของระบบประสาทส่วนกลาง (CNS) เชื้อนี้สามารถแสดงได้ในองศาที่แตกต่างจากการเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมอ่อนโรคระบบประสาทอย่างรุนแรงก่อน Bornavirus ถูกอธิบายใน psittaciforms ในปี 2008 โดยนักวิจัยที่ UCSF ที่ได้ศึกษากลุ่มแพร์รอทส์ห้าที่ทุกข์ทรมานจาก Proventricular Dilatation โรค (PDD) โดยใช้เทคโนโลยี microarray กลุ่มแยกต่างหากควั่นลบไวรัสอาร์เอ็นเอจากสามห้านก ไวรัสนี้ได้กำหนดให้ สมาชิกของครอบครัว Bornaviridae นักวิจัยชื่อพันธุ์นก 'นก Bornavirus' (ABV)มันมีนานแล้วเชื่อว่า PDD เกิดจากไวรัส neurotropic เป็น enveloped ที่ในบางกรณีทำให้เกิดพายุอย่างไร cytokine ที่เกิดจากการแทรกซึมของ lymphocyte proventriculus (forestomach), ventriculus (gizzard), และพื้นที่ของลำไส้เล็ก จากความเสียหาย นกไม่สามารถย่อยอาหารได้อย่างถูกต้อง ในนกบาง PDD กำแพงบางอย่างโป่ง proventriculus อาจ rupture เกิดเคลื่อนไหว undigested อาหารเข้าไปในช่องท้องที่ทำให้เกิดการติดเชื้ออย่างรุนแรงหลายครั้งซึ่งนำไปสู่ความตายอย่างรวดเร็ววิจัยขอแนะนำว่า ABV เล่น pivotal role ในเริ่มเป็น PDD ในนก ลักชัวรี่ได้ทดสอบมากกว่า 5000 ตัวอย่างจากสงสัยและสงสัยไม่ใช่นก ได้รับการยืนยันตัวอย่างจากนก PDD การวินิจฉัยกรณีที่ 500 จะมีแอนตี้ ABV Borna ไวรัสอาร์เอ็นเอ อย่างไรก็ตาม มีประชากรนกที่ได้ทดสอบบวก ABV แต่ได้พัฒนาสัญญาณ PDD ใด ๆ ทางคลินิก ขนาดใหญ่งานวิจัยใหม่ยืนยันตัวอย่าง fecal และหยอดทวารร่วม swabs ไม่เชื่อถือแหล่งที่มาของอาร์เอ็นเอ ABV เนื่องจากยังไม่สอดคล้องส่องของไวรัส และทำลายกองกำลังเช่นแบคทีเรีย เอนไซม์ และสารปนเปื้อนอื่น ๆ ที่พบในอุจจาระ ซึ่งผลลัพธ์ในเปอร์เซ็นต์ไม่สามารถยอมรับสิ่งเท็จโดย PCRABV พบในตัวอย่างจากประเทศในยุโรป เอเชีย แอฟริกา และอเมริกาใต้ABV ยังกำลังเรียนเป็นตัวแทน causitive เป็นไปได้ของเงื่อนไขเช่นผิวหนังอักเสบ ถอนขนนก นองตัวเอง ปัญหาระบบประสาทสำคัญ และโรคติดเชื้อแบคทีเรีย และเชื้อราIn May 2010, we recieved feather samples from 6 birds who are chronic feather pluckers. 5 of the 6 birds tested positive for ABV by rtPCR using feather samples. None of these birds were suffering from any weight problems as observed by the vetrinarian treating them.________________________________________Transmission: Bornavirus transmission is not well understood. Bornavirus is thought to be primarily transferred from one individual to another through direct or intimate contact, or by exposure to infected fecal material. Avian Biotech is currently studying ABV transmission from an infected female to an egg and performing testing to determine embryonic infection of ABV. Additional work is being done to study ABV-specific antibody levels in the yolk of an egg laid by an infected bird. ABI is also studying cellular transmission and variations in specific ABV protein expression from one individual to another.________________________________________Symptoms: Signs suggestive of PDD include weight loss over a period of weeks to months despite a good appetite, passage of undigested food, vomiting, abdominal distention, and impaction of the crop and proventriculus.Neurological signs include intermittent shaking of the bird's head, feather plucking and mutilation, problems with balance, moaning or crying due to digestive problems, change in aggression, and seizures. Some or all of these signs may or may not be present.It is also important to note that in many cases birds infected with ABV may not develop any symptoms of ABD or PDD for years or even decades before the onset of disease. It is still unknown if a percentage of birds may never develop any symptoms of disease but may continue to function as a reservoir for ABV and allow the virus to infect other birds.________________________________________Prevention: In 2010 ABI began testing a sub-unit vaccine to prevent the spread of the disease and the results are looking very promising.To disinfect areas that may have been contaminated by bornavirus, use an oxidizer solution such as diluted bleach: 50 parts water to 1 part bleach, plus a small amount of dish soap as a wetting agent.________________________________________Treatment: There are no known treatments for ABV infections. ABI is looking forward to conducting experimental treatments using ABI's own parrot-specific gamma and alpha interferon, as well as combining these cytokins with specific anti-viral drugs. Proventricular Dilatation Disease (PDD________________________________________Diagnosis: Complete ABV/PDD panel!!Two methods of identifying ABV infection are available at ABI: serology (rELISA) which tests for immunological exposure to specific ABV antigens, and direct rtPCR which detects the presence of ABV-specific RNA. Our complete ABV panel includes both the rtPCR and the ELISA panel.ABV ELISA panel consists of 4 AVB-specific proteins (P40, P24, P29, and matrix). A small serum sample is required for the rELISA panel.ABV rtPCR panel is a multiplex assay that amplifies both conserved ABV M&N segment genes as well as two internal RNA controls (housekeeping genes). Internal controls are extremely important to confirm proper RNA isolation. For routine ABV screening using rtPCR, the most reliable samples are chest or breast contour feathers.Cloacal or vent swabs as well as fecal samples are not recommended for routine screening due to the intermittent shedding of the virus, as well as bacterial and enzymatic degradation, that greatly reduce the reliability of this sample type. Because of the neurotropic nature of the virus, blood is also not recommended for rtPCR.For postmortem detection of ABV RNA, samples from the brain, proventricular tissue, or crop biopsies stored in alcohol are preferred.Animal Genetics' latest publication on ABV was submitted for publication to the Journal of Veterinarian Diagnostic Investigation. Our research paper describes current methods used by Animal Genetics for detection of ABV. This paper also demonstrates the effectiveness of testing for ABV from feathers, and compares the reliability of a feather sample with a cloacal swab and serum sample.________________________________________Sample: Serum samples are currently accepted for ELISA. However, fecal samples and blood cards are being evaluated and could become an alternative sample for ELISA. Cloacal swabs are not considered an reliable source for ABV RNA and should not be submitted by them selfs for rtPCR. Due to the neurotropic nature of the virus, the calamus of 4-8 plucked chest or breast feathers provides the best source of viral RNA for screening of birds infected with ABV.Postmortem testing requires a small brain tissue sample placed in alcohol. Detailed information has been submitted for publication in the "Journal of Veterinary Diagnostic Investigation". Proventricular Dilatation Disease (PDD)________________________________________Handling: Samples should be submitted by overnight or two day air.________________________________________Limitations: Because of mutations occurring in ABV genome, it may be difficult to detect all subtypes. Proventricular Dilatation Disease (PDD________________________________________References: HOME -DNA SEXING - DISEASE TESTING - RESULTS - PRICING - FAQ - LINKSFREE COLLECTION KITS - DOWNLOAD FORMS - AVIAN CONNECTION - Member Loginhttp://www.avianbiotech.com/diseases/bornavirus.htmBorna disease is an infectious neurological syndrome[1] of warm-blooded animals, caused by Borna disease virus (BDV), which causes abnormal behaviour and fatality. The Borna disease virus is a neurotropic virus and is a member of the Bornaviridae family within the Mononegavirales order.Although the Borna disease virus is mainly seen as the causative agent of borna disease in horses and other animals, it also infects humans and is therefore considered to be azoonotic agent. The role of BDV in human illness is controversial and it is yet to be established whether BDV causes any overt disease in humans. However, correlative evidence exists linking BDV infection with neuropsychiatric disorders such as bipolar disorder.[2]Contents [hide] • 1 Epidemiologyo 1.1 Vectorso 1.2 Animals• 2 Historyo 2.1 Psychiatric disease• 3 ReferencesEpidemiology[edit]Vectors[edit]The mode of transmission of BDV is unclear but probably occurs through intranasal exposure to contaminated saliva or nasal secretions. Following infection, individuals may develop Borna disease, or may remain subclinical, possibly acting as a carrier of the virus.Animals[edit]Borna virus appears to have a wide host range, having been detected in horses, cattle, sheep, dogs and foxes. In 1995, the virus was isolated from cats suffering from a "staggering disease" in Sweden. Since that time, the virus has also been detected in cats in Japan and Britain.Borna virus has been detected in humans, and researchers have presented evidence connecting these i

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

คำอธิบาย: Bornavirus เป็นสาเหตุของการเกิดโรค Borna โรคไวรัส Borna (BDV) เป็นเชิงลบประสาทเกลียวไวรัสอาร์เอ็นเอ ไวรัสประสาทเป็นไวรัสที่สามารถติดเชื้อเซลล์ประสาทหรือที่ไม่ได้พิเศษ ไม่กี่ที่รู้จักกันทั่วไปไวรัสประสาทเป็นโรคพิษสุนัขบ้าไวรัสเริมโปลิโอและโรคไข้สมองอักเสบญี่ปุ่น. โรค Borna ได้รับการยอมรับเป็นครั้งแรกในปี 1885 ในม้าทหารม้าในเมือง Borna แซกโซนีเยอรมนี BDV ไวรัสที่เป็นสาเหตุของโรค Borna ดูเหมือนจะมีช่วงกว้างโฮสต์ที่ได้รับการตรวจพบในนก, ม้า, วัวแกะและสุนัขจิ้งจอกสุนัข ในปี 1995 ไวรัสที่แยกได้จากแมวทุกข์ทรมานจากโรค "ส่าย" ในปี 2000 นักวิจัยสวีเดน BDV แยกจากนกป่ารวมทั้ง Mallards และ jackdaws BDV ยังได้รับการพบในฟาร์มนกกระจอกเทศในออสเตรเลีย เป็นที่ยอมรับกันโดยทั่วไปว่า ADV ทำให้เกิดการติดเชื้อถาวรของระบบประสาทส่วนกลาง (CNS) เชื้อนี้สามารถแสดงออกในองศาที่แตกต่างจากการเปลี่ยนแปลงพฤติกรรมรุนแรงที่จะเกิดโรคทางระบบประสาทอย่างรุนแรง. Bornavirus เป็นครั้งแรกใน psittaciforms ในปี 2008 โดยนักวิจัยที่ UCSF ที่ได้รับการศึกษาในกลุ่มของห้านกแก้วที่ทุกข์ทรมานจากการขยาย Proventricular โรค (PDD) โดยใช้เทคโนโลยี microarray กลุ่มที่แยกไวรัส RNA เชิงลบเกลียวจากสามในห้านก ไวรัสนี้ได้รับการมุ่งมั่นที่จะเป็นสมาชิกของครอบครัว Bornaviridae นักวิจัยตั้งชื่อสายพันธุ์นก 'นก Bornavirus (ABV). มันมีมานานเชื่อว่า PDD เกิดจากไวรัสประสาท enveloped ว่าในบางกรณีทำให้เกิดพายุไซโตไคน์ที่เกิดจากการแทรกซึมเม็ดเลือดขาวเพื่อ proventriculus นี้ (forestomach) ventriculus (กึ๋น) และพื้นที่ของลำไส้เล็ก อันเป็นผลมาจากความเสียหายที่นกไม่สามารถที่จะย่อยอาหารของพวกเขาอย่างถูกต้อง ในนกบางคนที่มี PDD ที่ผนังบางพองรุนแรงของ proventriculus อาจแตกส่งผลให้การเคลื่อนไหวของอาหารไม่ได้แยกแยะเข้าไปในช่องท้องทำให้เกิดการติดเชื้อรุนแรงซึ่งหลายครั้งนำไปสู่ความตายอย่างรวดเร็ว. การวิจัยแสดงให้เห็นว่า ABV มีบทบาทสำคัญในการโจมตี ของ PDD ในนก ABI ได้ทดสอบมากกว่า 5,000 ตัวอย่างจากทั้งผู้ต้องสงสัยและนกที่ไม่ต้องสงสัย ตัวอย่างจากกว่า 500 กรณีการวินิจฉัยของนก PDD ได้รับการยืนยันที่จะมีแอนติบอดี้ ABV เช่นเดียวกับอาร์เอ็นเอไวรัส Borna แต่ยังมีประชากรขนาดใหญ่ของนกที่มีการทดสอบในเชิงบวกสำหรับ ABV แต่ยังไม่ได้รับการพัฒนาอาการใด ๆ ของ PDD. งานวิจัยใหม่ยืนยันว่า swabs cloacal และอุจจาระไม่ได้เป็นแหล่งที่เชื่อถือได้ของ ABV RNA เนื่องจากการไหลที่ไม่สอดคล้องกันของ กองกำลังของไวรัสและการทำลายล้างเช่นแบคทีเรียเอนไซม์และสารปนเปื้อนอื่น ๆ ที่พบในอุจจาระ ซึ่งส่งผลให้ในอัตราร้อยละที่ยอมรับไม่ได้เชิงลบเท็จโดยวิธี PCR. ABV ถูกพบในตัวอย่างจากประเทศในยุโรป, เอเชีย, แอฟริกาและอเมริกาใต้. ABV ยังมีการศึกษาเป็นตัวแทน causitive เป็นไปได้ของเงื่อนไขเช่นผิวหนังอักเสบ, ถอนขนขนนก ฉีกตัวเองปัญหาทางระบบประสาทที่สำคัญและการติดเชื้อแบคทีเรียและเชื้อราเรื้อรัง. ในเดือนพฤษภาคมปี 2010 เราได้รับตัวอย่างจากขนนกที่ 6 ที่มี pluckers ขนเรื้อรัง 5 ของ 6 นกการทดสอบในเชิงบวกสำหรับ ABV rtPCR โดยใช้ตัวอย่างขนนก ไม่มีของนกเหล่านี้ได้รับความทุกข์ทรมานจากปัญหาน้ำหนักใด ๆ ที่เป็นข้อสังเกตโดย Vetrinarian รักษาพวกเขา. ________________________________________ ส่ง: ส่ง Bornavirus ไม่เข้าใจ Bornavirus เป็นความคิดที่จะโอนส่วนใหญ่มาจากบุคคลหนึ่งไปยังอีกผ่านการสัมผัสโดยตรงหรือใกล้ชิดหรือจากการสัมผัสกับวัสดุที่ติดเชื้ออุจจาระ นกไบโอเทคกำลังศึกษาการส่ง ABV จากหญิงที่ติดเชื้อไปยังไข่และดำเนินการทดสอบเพื่อตรวจสอบการติดเชื้อจากตัวอ่อนของ ABV การทำงานเพิ่มเติมจะถูกดำเนินการในการศึกษาระดับแอนติบอดี ABV เฉพาะในไข่แดงของไข่วางโดยนกที่ติดเชื้อ ABI นอกจากนี้ยังมีการศึกษาการส่งผ่านโทรศัพท์มือถือและรูปแบบในการแสดงออกของโปรตีน ABV เฉพาะจากบุคคลหนึ่งไปยังอีก. ________________________________________ อาการ: สัญญาณชี้นำของ PDD รวมถึงการสูญเสียน้ำหนักในช่วงสัปดาห์ที่ผ่านมาเป็นเดือนแม้จะมีความอยากอาหารที่ดีทางเดินอาหารไม่ได้แยกแยะอาเจียนอาการท้องอืด และ impaction ของพืชและ proventriculus ได้. อาการทางระบบประสาทรวมถึงการสั่นสะเทือนต่อเนื่องของหัวของนกขนถอนขนและตัดปัญหาเกี่ยวกับความสมดุลเสียงสวดหรือร้องไห้เนื่องจากปัญหาการย่อยอาหาร, การเปลี่ยนแปลงในการรุกรานและชัก บางส่วนหรือทั้งหมดของอาการเหล่านี้อาจหรือไม่อาจจะนำเสนอ. นอกจากนี้ยังเป็นสิ่งสำคัญที่จะทราบว่าในหลายกรณีนกที่ติดเชื้อ ABV ไม่อาจมีอาการใด ๆ ของ ABD หรือ PDD ปีหรือแม้กระทั่งทศวรรษที่ผ่านมาก่อนที่จะเริ่มมีอาการของโรค มันยังคงเป็นที่รู้จักว่าร้อยละของนกอาจจะไม่เคยมีอาการของโรคใด ๆ แต่อาจจะยังคงทำงานเป็นอ่างเก็บน้ำสำหรับ ABV และช่วยให้ไวรัสที่จะติดเชื้อนกอื่น ๆ . ________________________________________ ป้องกัน: ในปี 2010 ABI เริ่มทดสอบวัคซีนยูนิตย่อยเพื่อป้องกันไม่ให้ การแพร่กระจายของโรคและผลที่กำลังมองหาที่มีแนวโน้มมาก. เพื่อฆ่าเชื้อพื้นที่ที่อาจมีการปนเปื้อนจาก bornavirus ใช้วิธีการแก้ปัญหาสันดาปเช่นสารฟอกขาวเจือจาง: 50 ส่วนน้ำ 1 สารฟอกขาวเป็นส่วนหนึ่งรวมเป็นจำนวนเงินที่เล็ก ๆ ของสบู่เป็น ตัวแทนเปียก. ________________________________________ การรักษา: ไม่มีการรักษาที่รู้จักกันสำหรับการติดเชื้อ ABV เป็น ABI รอคอยที่จะดำเนินการทดลองการรักษาโดยใช้นกแก้วเฉพาะของตัวเองของ ABI แกมมาและอัลฟา interferon เช่นเดียวกับการรวม cytokins เหล่านี้ด้วยยาต้านไวรัสที่เฉพาะเจาะจง Proventricular การขยายโรค (PDD ________________________________________ วินิจฉัยสมบูรณ์ ABV / PDD แผง !! สองวิธีในการระบุการติดเชื้อ ABV มีที่ ABI: เซรุ่มวิทยา (rELISA) ซึ่งการทดสอบสำหรับการเปิดรับภูมิคุ้มกันเพื่อ ABV แอนติเจนที่เฉพาะเจาะจงและ rtPCR โดยตรงซึ่งตรวจพบการปรากฏตัวของ ABV- อาร์เอ็นเอที่เฉพาะเจาะจง. แผง ABV ของเราสมบูรณ์รวมถึงทั้ง rtPCR และแผง ELISA. ABV แผง ELISA ประกอบด้วย 4 โปรตีน AVB เฉพาะ (P40, P24, P29 และเมทริกซ์). ตัวอย่างซีรั่มที่มีขนาดเล็กเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับแผง rELISA. ABV rtPCR แผงคือการทดสอบหลายที่ขยายทั้งป่าสงวน ABV M & N ยีนส่วนเช่นเดียวกับสองควบคุม RNA ภายใน (ยีนดูแลทำความสะอาด). การควบคุมภายในที่มีความสำคัญมากที่จะยืนยันการแยกอาร์เอ็นเอที่เหมาะสม. สำหรับประจำ ABV คัดกรองโดยใช้ rtPCR, ตัวอย่างที่น่าเชื่อถือที่สุดที่มีหน้าอกหรือ ขนรูปร่างเต้านม. cloacal หรือระบาย swabs เช่นเดียวกับตัวอย่างอุจจาระไม่แนะนำให้คัดกรองเป็นประจำเนื่องจากการไหลสม่ำเสมอของไวรัสเช่นเดียวกับการย่อยสลายแบคทีเรียและเอนไซม์ที่ช่วยลดความน่าเชื่อถือของประเภทตัวอย่างนี้ เพราะธรรมชาติของประสาทของไวรัสในเลือดนอกจากนี้ยังไม่แนะนำสำหรับ rtPCR. สำหรับการตรวจหาการชันสูตรศพของ ABV RNA ตัวอย่างจากสมองเนื้อเยื่อ proventricular หรือขริบพืชที่เก็บไว้ในเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ที่เป็นที่ต้องการ. พันธุศาสตร์สัตว์ 'ตีพิมพ์ล่าสุดใน ABV ถูกส่ง สำหรับการตีพิมพ์วารสารสัตวแพทย์สอบสวนวินิจฉัย งานวิจัยของเราอธิบายวิธีการที่ใช้ในปัจจุบันโดยพันธุศาสตร์สัตว์สำหรับการตรวจสอบของ ABV บทความนี้ยังแสดงให้เห็นประสิทธิภาพของการทดสอบสำหรับ ABV จากขนและเปรียบเทียบความน่าเชื่อถือของกลุ่มตัวอย่างที่มีขนไม้กวาด cloacal และตัวอย่างซีรั่ม. ________________________________________ ตัวอย่าง: ตัวอย่างเซรั่มได้รับการยอมรับในขณะนี้สำหรับวิธี ELISA อย่างไรก็ตามตัวอย่างอุจจาระและบัตรเลือดมีการประเมินและอาจจะกลายเป็นตัวอย่างทางเลือกสำหรับวิธี ELISA swabs cloacal จะไม่ถือว่าเป็นแหล่งที่เชื่อถือได้สำหรับ ABV อาร์เอ็นเอและไม่ควรส่งมาโดยพวกเขา selfs สำหรับ rtPCR เนื่องจากลักษณะประสาทของไวรัส, calamus 4-8 ดึงขนหน้าอกหรือเต้านมให้แหล่งที่ดีที่สุดของอาร์เอ็นเอไวรัสสำหรับการคัดกรองของนกที่ติดเชื้อ ABV. ทดสอบการชันสูตรศพต้องใช้ตัวอย่างเนื้อเยื่อสมองเล็ก ๆ วางไว้ในเครื่องดื่มแอลกอฮอล์ รายละเอียดข้อมูลถูกส่งมาให้ตีพิมพ์ใน "วารสารสัตวแพทย์วินิจฉัยสืบสวน" Proventricular การขยายโรค (PDD) ________________________________________ การจัดการ:. ตัวอย่างควรจะส่งมาโดยในชั่วข้ามคืนหรืออากาศวันที่สอง________________________________________ ข้อ จำกัด : เพราะของการกลายพันธุ์ที่เกิดขึ้นในจีโนม ABV มันอาจจะเป็นเรื่องยากที่จะตรวจพบเชื้อทั้งหมด Proventricular การขยายโรค (PDD ________________________________________ อ้างอิง: หน้าแรก -DNA SEXING - โรคทดสอบ - ผล - การกำหนดราคา - คำถามที่พบบ่อย - ลิงค์ฟรีชุดCOLLECTION - ดาวน์โหลดแบบฟอร์ม - การเชื่อมต่อนก - สมาชิกhttp://www.avianbiotech.com/diseases/bornavirus.htm โรค Borna เป็นโรคทางระบบประสาทที่ติดเชื้อ [1] ของสัตว์เลือดอุ่นเกิดจากเชื้อไวรัสโรค Borna (BDV) ซึ่งเป็นสาเหตุของพฤติกรรมที่ผิดปกติและเสียชีวิต. ไวรัสโรค Borna เป็นไวรัสประสาทและเป็นสมาชิกของครอบครัว Bornaviridae ภายในที่ เพื่อ Mononegavirales. แม้ว่าไวรัสโรค Borna จะเห็นส่วนใหญ่เป็นสาเหตุของการเกิดโรค Borna ในม้าและสัตว์อื่น ๆ ก็ยังติดเชื้อในมนุษย์และมีการพิจารณาจึงเป็นตัวแทน azoonotic. บทบาทของ BDV ในความเจ็บป่วยของมนุษย์คือการโต้เถียงและมันก็ยัง ที่จะจัดตั้งขึ้นไม่ว่าจะเป็น BDV ทำให้เกิดโรคใด ๆ ที่ชัดเจนในมนุษย์. อย่างไรก็ตามหลักฐานที่สัมพันธ์กันอยู่การเชื่อมโยงการติดเชื้อ BDV มีความผิดปกติ neuropsychiatric เช่นโรคสองขั้ว. [2] เนื้อหา[ซ่อน] • 1 ระบาดวิทยาo 1.1 เวกเตอร์o 1.2 สัตว์• 2 ประวัติศาสตร์o 2.1 จิตเวช โรค• 3 อ้างอิงระบาดวิทยา[แก้ไข] เวกเตอร์ [แก้ไข] โหมดของการส่ง BDV ก็ไม่มีความชัดเจน แต่อาจเกิดขึ้นผ่านการสัมผัส intranasal การปนเปื้อนน้ำลายหรือน้ำมูก ต่อไปนี้การติดเชื้อบุคคลที่อาจก่อให้เกิดโรค Borna หรืออาจจะยังคงไม่แสดงอาการอาจจะทำหน้าที่เป็นพาหะของไวรัส. สัตว์ [แก้ไข] ไวรัส Borna ดูเหมือนจะมีช่วงโฮสต์กว้างได้รับการตรวจพบในม้าวัวแกะสุนัขและสุนัขจิ้งจอก . ในปี 1995 ไวรัสที่แยกได้จากแมวทุกข์ทรมานจากโรค "ส่าย" ในสวีเดน ตั้งแต่เวลานั้นไวรัสยังได้รับการตรวจพบในแมวในญี่ปุ่นและสหราชอาณาจักร. ไวรัส Borna ได้รับการตรวจพบในมนุษย์และนักวิจัยได้นำเสนอหลักฐานที่เชื่อมต่อเหล่านี้ฉัน