MethodsTreatment:1. control (vegeta

Methods
Treatment:
1. control (vegetable oil)
2. vegetable oil 5 mL + 0.50 mL Ferric chloride (15 μM FeCl3)
3. Vegetable oil 5 mL + 0.50 ml ascorbic acid (100 μM)
8
FSN 361 Food chemistry Laboratory 1-2558
4. Vegetable oil 5 mL + 0.50 ml Ferric chloride and 0.50 ml ascorbic acid (15 μM and
100 μM)
5. Vegetable oil 5 mL + 0.50 ml Ferric chloride, 0.50 ml ascorbic acid, EDTA (100 μM)
6. Vegetable oil 5 mL + 0.50 ml Ferric chloride, 0.50 ml ascorbic acid, BHA (100 μM) **
add BHA before prooxidant **
Allow the samples to incubate for 30 min at room temperature. Shake occasionally to
incorporate oxygen.
Apparatus:
1.250 mL conical flasks
2. Balance capable of weighing to the nearest 0.01 g
3. Burette 25 mL
4. Cylinders capable of containing 50 mL
5. Pipette
6. Water bath
7. Spectrophotometer
1. Determination of Acid Value
Reagents:
1. Ethanol-toluene mixture – equal volumes of 95% ethanol and toluene are mixed.
2. Phenolphthalein indicator solution (1%) – Dissolve 1 g of phenolphthalein in 100 mL of
ethanol.
3. Standard aqueous KOH 0.1 N in methanol. The solution should be colorless and stored in
a dark bottle.
Procedure:
1. Weigh to the nearest 0.01 g into a conical flask, 1-2g of the sample.
2. Add 50 mL of ethanol-toluene mixture to the sample and shake until solution is
complete or boil the mixture for about 5 mins. Add phenolphthalein 1mL as indicator.
3. Titrate while hot against standard KOH.
Calculation : Acid valule = 56.1VN / W
Where, V = volume in mL of standard KOH used
N = normality of the KOH solution
W = weight in g of the sample
9
FSN 361 Food chemistry Laboratory 1-2558
The acidity is frequently expressed as free fatty acid for which calculation shall be;
Free fatty acids as oleic acid (%) = 28.2 VN /W
Acid value = percent fatty acid (as oleic) x 1.99
2. Determination of Peroxide Value
Reagents:
1. Acetic Acid - chloroform solution (300ml Acetic Acid and 200ml Chloroform).
2. Saturated Potassium Iodide solution. Store in the dark.
3. Sodium thiosulfate solution, 0.1N. Commercially available.
4. 1% Starch solution.
5. Distilled or deionized water.
Procedure:
1. Weigh 5.00 (±0.05) g of sample into a 250 ml glass stoppered Erlenmeyer flask. Record
weight to the nearest 0.01g.
2. By graduated cylinder, add 30 ml of the acetic acid-chloroform solution.
3. Swirl the flask until the sample is completely dissolved.
4. Using 1 ml pipette, add 0.5 ml of saturated potassium iodide solution. Stopper the
flask and swirl the contents of the flask for exactly one minute. Keep in dark place
for exactly 2mins.
5. Immediately add by graduated cylinder, 30 ml of either distilled, stopper and shake
vigorously to liberate the iodine from the chloroform layer.
6. Fill the burette with 0.1N sodium thiosulfate.
7. If the starting color of the solution is deep red orange, titrate slowly with mixing until
the color lightens. If the solution is initially a light amber color, go to step 9.
8. Using a dispensing device, add 1 ml of starch solution as indicator.
9. Titrate until the blue gray color disappears in the aqueous (upper layer). Note, for
some sample, titrate until the lower layer has a "milky" appearance.
10. Accurately record the volume of titrant used to two decimal places.
Calculation: Peroxide value (mg PV/kg fat) = (S-B) x N x 1000
W
Where, S = titration of sample
B = titration of blank
N = normality of thiosulfate
W = weight in g of the sample
10
FSN 361 Food chemistry Laboratory 1-2558
3. Determination of Thiobarbituric acid value
Reagents:
1. 1-butanol
2. TBA reagent – dissolving 200 mg 2-thiobarbituric in 100 ml 1-butanol. Use an ultrasonic or
filter the suspension to remove the undissolved residue, make up the filtrate to 100ml with
1-butanol. Reagent should not be stored for more than a week in the refrigerator.
Procedure:
1. Weigh accurately 200 mg of the sample into a 25mL volumetric flask. Dissolve it in a
small volume of 1-butanol and make up to volume with same solvent.
2. Transfer, using a pipette 5.0 ml of sample solution to a dry test tube; add by pipette
5.0 ml of the TBA reagent solution. Close the test tube and mix thoroughly.
3. Place the prepared test tube into a water bath at 95°C for 30 min. Remove the test
tube and cool it under running tap water until it reaches room temperature.
4. Measure the absorbance of the reaction solution at 530 nm using distilled water as a
blank to set zero. Run a reagent blank and sample.
5. Calculation TBA value = 50 x (A-B) / m
A = absorbance of the test solution
B = absorbance of the reagent blank
m = mass in mg, of the test portion
50 = factor valid if volume of the
volumetric
flask is 25 mL
Report of results
Organize your results in table. Report the final results the mean of values obtained from
three determinations.
Discussion
 Explain briefly the principle of each method.
 What were the various additives (iron, ascorbic acid, EDTA, BHA) doing to favor or
inhibit oxidation of the vegetable oil? Combine your experimental observations with
literature discussion of the known functionality of those components.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วิธีการการรักษา:1. ควบคุม (น้ำมันพืช)2. น้ำมันพืช 5 mL + 0.50 mL คคลอไรด์ (15 μM FeCl3)3. กรดแอสคอร์บิค 5 mL + 0.50 ml น้ำมันพืช (100 μM)8ผล FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-25584. น้ำมันพืช 5 mL + 0.50 ml คคลอไรด์และ 0.50 ml แอสคอร์บิคกรด (15 μM และ100 ΜM)5. น้ำมันพืช 5 mL + 0.50 ml คคลอไรด์ กรดแอสคอร์บิค 0.50 ml, EDTA (100 μM)6. น้ำมันพืช 5 mL + 0.50 ml คคลอไรด์ กรดแอสคอร์บิค 0.50 ml, BHA (100 μM) **เพิ่ม BHA ก่อน prooxidant **ให้ตัวอย่างฟักใน 30 นาทีที่อุณหภูมิห้อง เขย่าเป็นครั้งคราวไปรวมออกซิเจนเครื่องมือ:1.250 mL ทรงกรวยน้ำ2. สามารถชั่งไป 0.01 g สุดยอด3. ขวดนม 25 mL4. ถังสามารถบรรจุ 50 mL5. เปตต์6. น้ำอ่างอาบน้ำ7. เครื่องทดสอบกรดด่าง1. กำหนดค่ากรดReagents:1. ผสมส่วนผสมเอทานอลโทลูอีนวอลุ่มเท่า 95% เอทานอลและโทลูอีน2. ตัวบ่งชี้ phenolphthalein โซลูชัน (1%) ละลาย 1 กรัมของ phenolphthalein ใน 100 mL ของเอทานอล3. มาตรฐานอควีเกาะ 0.1 N ในเมทานอล การแก้ปัญหาควรจะสีซีด และเก็บไว้ในขวดที่มีสีเข้มขั้นตอน:1. น้ำหนักไปที่ใกล้ที่สุด 0.01 g เข้าหนาวทรงกรวย 1-2 กรัมของตัวอย่าง2. เพิ่ม 50 mL ของโทลูอีนเอทานอลผสมลงตัวอย่าง และเขย่าจนกว่าการแก้ไขปัญหาสมบูรณ์ หรือต้มประมาณ 5 นาทีส่วนผสม เพิ่ม phenolphthalein 1mL เป็นตัวบ่งชี้3. titrate ขณะร้อนกับมาตรฐานเกาะคำนวณ: กรด valule = 56.1VN / W, V =ปริมาตรในมลเกาะมาตรฐานที่ใช้N = normality โซลูชันเกาะW =น้ำหนักกรัมของตัวอย่าง9ผล FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-2558บ่อย ๆ แสดงว่าที่เป็นกรดไขมันอิสระที่คำนวณจะฟรีกรดไขมันเป็นกรด oleic (%) = 28.2 วีเอ็น /Wค่ากรด =เปอร์เซ็นต์กรดไขมัน (เป็นโอเลอิค) x 1.992. กำหนดค่าเปอร์ออกไซด์Reagents:1. กรดอะซิติก - โซลูชันคลอโรฟอร์ม (กรดอะซิติก 300ml และ 200ml คลอโรฟอร์ม)2. อิ่มตัวโพแทสเซียมไอโอไดด์โซลูชัน เก็บในมืด3. โซเดียม thiosulfate โซลูชัน 0.1N ใช้ได้ในเชิงพาณิชย์4. แก้ปัญหา 1% แป้ง5. กลั่น หรือ deionized น้ำขั้นตอน:1. ชั่งน้ำหนัก 5.00 g (± 0.05) ของตัวอย่างในหนาว Erlenmeyer stoppered แก้ว 250 ml เรกคอร์ดน้ำหนักสุด 0.01 g2. โดยถังจบ เพิ่ม 30 ml ของโซลูชันคลอโรฟอร์มกรดอะซิติก3. swirl หนาวจนกว่าตัวอย่างจะสังเกต4. ใช้ 1 ml เปตต์ เพิ่ม 0.5 ml ของโพแทสเซียมไอโอไดด์อิ่มตัว จุกหนาว และ swirl เนื้อหาของหนาวว่าหนึ่งนาที เก็บในมืดสำหรับ 2mins เหมือนกัน5. ทันทีเพิ่ม โดยจบถัง 30 ml ของจุกทั้งกลั่น และเขย่าโยคะเพื่อการปลดปล่อยไอโอดีนจากชั้นคลอโรฟอร์ม6. กรอกขวดนมที่ มี 0.1N โซเดียม thiosulfate7. ถ้าสีเริ่มต้นของการแก้ปัญหาคือ สีส้มสีแดงลึก titrate ช้ากับผสมจนสีเพิ่มความกระจ่าง ถ้าเป็นครั้งแรกไฟสีเหลืองอำพันสี ไปที่ขั้นตอนที่ 98. ใช้อุปกรณ์ dispensing เพิ่ม 1 ml ของแป้งเป็นตัวบ่งชี้9. titrate จนสีสีเทาสีน้ำเงินหายไปในอควี (บนชั้น) หมายเหตุ การบางตัวอย่าง titrate จนชั้นล่างมีลักษณะเป็น "น้ำนม"10. บันทึกปริมาตรของ titrant ใช้ทศนิยมสองตำแหน่งคำนวณ: เพอร์ออกไซด์ค่า (มิลลิกรัมไขมัน PV/kg) = (S-B) x N x 1000W, S =การไทเทรตของตัวอย่างB =การไทเทรตของว่างN = normality thiosulfateW =น้ำหนักกรัมของตัวอย่าง10ผล FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-25583. กำหนดค่ากรด ThiobarbituricReagents:1. 1-บิวทานอ2. TBA รีเอเจนต์ – ยุบ thiobarbituric 2 200 มิลลิกรัมใน 100 มล 1-บิวทานอ ใช้การอัลตราโซนิก หรือกรองแขวนเพื่อเอาสารตกค้าง undissolved ให้ค่าสารกรองใน 100ml มี1-บิวทานอ รีเอเจนต์ไม่ควรถูกเก็บไว้สำหรับสัปดาห์กว่าในตู้เย็นขั้นตอน:1. น้ำหนักแม่นยำ 200 มิลลิกรัมของตัวอย่างในหนาว volumetric 25mL ละลายในตัวปริมาตรขนาดเล็ก 1-บิวทานอและทำได้ปริมาณด้วยตัวทำละลายเดียวกัน2. ถ่ายโอน ใช้เปตต์ 5.0 มล.ของตัวอย่างไปทดสอบที่แห้งหลอด เพิ่ม โดยเปตต์ml 5.0 ของโซลูชั่นรีเอเจนต์ TBA ปิดหลอดทดสอบ และผสมอย่างทั่วถึง3. สถานที่เตรียมทดสอบหลอดลงในอ่างน้ำที่ 95° C สำหรับ 30 นาทีเอาการทดสอบหลอด และเย็นภายใต้การใช้น้ำประปาจนกว่าจะถึงอุณหภูมิห้อง4. วัด absorbance ที่โซลูชันปฏิกิริยาที่ 530 nm ใช้กลั่นน้ำเป็นการว่างตั้งศูนย์ เรียกใช้รีเอเจนต์ว่างและตัวอย่าง5. คำนวณ TBA ค่า = 50 x (A-B) / เอ็มA = absorbance ของโซลูชันการทดสอบB = absorbance ของรีเอเจนต์ว่างm =มวลใน mg ของส่วนที่ทดสอบ50 =ตัวคูณที่ถูกต้องถ้าปริมาณการvolumetricหนาวเป็น 25 mLรายงานผลการจัดระเบียบผลลัพธ์ของคุณในตาราง รายงานค่าเฉลี่ยของค่าที่รับจากผลลัพธ์สุดท้ายdeterminations สามสนทนาสั้น ๆ คล้ายอธิบายหลักการของแต่ละวิธีคล้ายมีสารต่าง ๆ (เหล็ก กรดแอสคอร์บิค EDTA, BHA) ทำให้ชอบ หรือยับยั้งการเกิดออกซิเดชันของน้ำมันพืชหรือไม่ รวมการสังเกตทดลองด้วยเอกสารประกอบการอภิปรายรู้จักฟังก์ชันของส่วนประกอบเหล่านั้น

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิธีการรักษา: 1 การควบคุม (น้ำมันพืช) 2 น้ำมันพืช 5 มิลลิลิตร + 0.50 มิลลิลิตรเฟอร์ริกคลอไรด์ (15 ไมครอน FeCl3) 3 น้ำมันพืช 5 มิลลิลิตร + 0.50 มล. วิตามินซี (100 ไมครอน) 8 FSN 361 ห้องปฏิบัติการเคมีอาหาร 1-2558 4 น้ำมันพืช 5 มิลลิลิตร + 0.50 มล. เฟอร์ริกคลอไรด์และ 0.50 มล. วิตามินซี (15 ไมครอนและ100 ไมครอน) 5 น้ำมันพืช 5 มิลลิลิตร + 0.50 มล. เฟอร์ริกคลอไรด์, 0.50 มล. วิตามินซี EDTA (100 ไมครอน) 6 น้ำมันพืช 5 มิลลิลิตร + 0.50 มล. เฟอร์ริกคลอไรด์, 0.50 มล. วิตามินซี BHA (100 ไมครอน) ** เพิ่ม BHA ก่อน prooxidant ** อนุญาตให้กลุ่มตัวอย่างในการฟักไข่เป็นเวลา 30 นาทีที่อุณหภูมิห้อง เขย่าเป็นครั้งคราวเพื่อรวมออกซิเจน. เครื่อง: 1.250 มิลลิลิตรขวดรูปกรวย2 ความสมดุลของความสามารถในการชั่งน้ำหนักที่ใกล้ที่สุด 0.01 กรัม3 บิวเรต 25 มิลลิลิตร4 ถังที่มีความสามารถในการ 50 มล5 เปต6 อาบน้ำ7 Spectrophotometer 1 การกำหนดมูลค่ากรดรีเอเจนต์: 1 ผสมเอทานอลโทลูอีน -. เท่ากับปริมาณเอทานอล 95% และโทลูอีนที่ผสม2 phenolphthalein แก้ปัญหาตัวบ่งชี้ (1%) - ละลาย 1 กรัม phenolphthalein ใน 100 มิลลิลิตรของเอทานอล. 3 มาตรฐานน้ำ KOH 0.1 ไม่มีในเมทานอล วิธีการแก้ปัญหาควรจะไม่มีสีและเก็บไว้ใน. ขวดเข้มขั้นตอน: 1 ชั่งน้ำหนักที่ใกล้ที่สุด 0.01 กรัมลงในขวดรูปกรวย 1-2g ของกลุ่มตัวอย่าง. 2 เพิ่ม 50 มลผสมเอทานอลโทลูอีนตัวอย่างและเขย่าจนการแก้ปัญหาคือสมบูรณ์หรือต้มผสมประมาณ5 นาที เพิ่ม phenolphthalein เป็นตัวบ่งชี้ 1 mL. 3 ไทเทรตในขณะที่ร้อนกับมาตรฐาน KOH. คำนวณ: กรด valule = 56.1VN / W ที่ไหน, V = ปริมาณมลเกาะมาตรฐานที่ใช้ยังไม่มี= ปกติของการแก้ปัญหาเกาะW = น้ำหนักกรัมของกลุ่มตัวอย่าง9 FSN 361 เคมีอาหารห้องปฏิบัติการ 1 2558 ความเป็นกรดจะแสดงบ่อยเป็นกรดไขมันอิสระที่คำนวณจะเป็นขึ้นกรดไขมันอิสระเป็นกรดโอเลอิก (%) = 28.2 VN / W ค่ากรดกรดไขมันร้อยละ = (ตามที่โอเลอิก) x 1.99 2 การกำหนดมูลค่าเปอร์ออกไซด์รีเอเจนต์: 1 กรดอะซิติก - โซลูชั่นคลอโรฟอร์ม (300ml กรดอะซิติกและคลอโรฟอร์ม 200ml). 2 อิ่มตัวโพแทสเซียมไอโอไดด์วิธีการแก้ปัญหา เก็บในที่มืด. 3 สารละลายโซเดียมไธโอซัลเฟต, 0.1N ใช้ได้ในเชิงพาณิชย์. 4 1% วิธีการแก้ปัญหาสตาร์ช. 5 กลั่นหรือน้ำปราศจากไอออน. ขั้นตอน: 1 น้ำหนัก 5.00 (± 0.05) กรัมของตัวอย่างลงในแก้ว 250 มล. ขวดจุก Erlenmeyer บันทึกน้ำหนัก 0.01g ที่ใกล้ที่สุด. 2 โดยกระบอกจบการศึกษาเพิ่ม 30 มล. ของสารละลายกรดอะซิติก-คลอโรฟอร์ม. 3 หมุนขวดจนตัวอย่างจะละลายอย่างสมบูรณ์. 4 การใช้ปิเปต 1 มล. เพิ่ม 0.5 มล. ของการแก้ปัญหาโพแทสเซียมไอโอไดด์อิ่มตัว จุกขวดและหมุนเนื้อหาของขวดสำหรับว่าหนึ่งนาที เก็บไว้ในที่มืดสำหรับตรง 2mins. 5 เพิ่มทันทีโดยกระบอกจบการศึกษา 30 มล. ทั้งกลั่นจุกและเขย่าอย่างจริงจังเพื่อปลดปล่อยสารไอโอดีนจากชั้นคลอโรฟอร์มที่. 6 เติมบิวเรตที่มีโซเดียมไทโอซัลเฟต 0.1N ได้. 7 ถ้าสีเริ่มต้นของการแก้ปัญหาเป็นสีส้มสีแดงเข้ม, ไทเทรตช้าด้วยการผสมจนสว่างสี หากการแก้ปัญหาคือตอนแรกมีสีเหลืองอำพันแสงไปที่ขั้นตอนที่ 9 8 ใช้อุปกรณ์จ่ายเพิ่ม 1 มิลลิลิตรของสารละลายแป้งเป็นตัวบ่งชี้. 9 ไทเทรตจนถึงสีเทาสีฟ้าหายไปในน้ำ (ชั้นบน) หมายเหตุสำหรับตัวอย่างบางไทเทรตจนถึงชั้นล่างมี "นม" ลักษณะ. 10 ถูกต้องบันทึกปริมาณของ titrant ที่ใช้ในการทศนิยมสองตำแหน่ง. คำนวณค่าเปอร์ออกไซด์ (มก. PV / กกไขมัน) = (SB) x N x 1000 W ที่ไหน, S = ไตเตรทของกลุ่มตัวอย่างB = ไตเตรทของว่างเปล่าไม่มี= ปกติของ thiosulfate W = น้ำหนักกรัมของกลุ่มตัวอย่าง10 FSN 361 ห้องปฏิบัติการเคมีอาหาร 1-2558 3 การกำหนดค่าของกรด Thiobarbituric รีเอเจนต์: 1 1 บิวทานอ2 สารส ธ - ละลาย 200 มก 2 thiobarbituric ใน 100 มล. 1 บิวทานอ ใช้อัลตราโซนิกหรือกรองระงับการลบตกค้าง undissolved ทำขึ้นเพื่อกรอง 100ml กับ 1 บิวทานอ . สารเคมีไม่ควรเก็บไว้นานกว่าหนึ่งสัปดาห์ในตู้เย็นขั้นตอน: 1 ชั่งน้ำหนักได้อย่างถูกต้อง 200 มก. ของกลุ่มตัวอย่างลงในขวดปริมาตร 25ml ละลายในปริมาณเล็ก ๆ ของบิวทานอ 1 และทำให้ได้ถึงปริมาณที่มีตัวทำละลายเดียวกัน. 2 โอนโดยใช้ปิเปต 5.0 มล. ของการแก้ปัญหาตัวอย่างหลอดทดลองแห้ง; เพิ่มโดยปิเปต5.0 มล. ของการแก้ปัญหาสาร TBA ปิดหลอดทดลองและผสมอย่างทั่วถึง. 3 วางหลอดทดลองเตรียมลงในอ่างน้ำที่ 95 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ลบทดสอบหลอดและเย็นภายใต้การใช้น้ำประปาจนกว่าจะถึงอุณหภูมิห้อง. 4 การวัดการดูดกลืนแสงของการแก้ปัญหาการเกิดปฏิกิริยาที่ 530 นาโนเมตรโดยใช้น้ำกลั่นเป็นว่างเปล่าในการตั้งศูนย์ เรียกใช้น้ำยาที่ว่างเปล่าและตัวอย่าง. 5 การคำนวณค่า TBA = 50 x (AB) / m A = การดูดกลืนแสงของการแก้ปัญหาการทดสอบB = การดูดกลืนแสงของว่างเปล่าน้ำยาm = มวลมิลลิกรัมของส่วนการทดสอบ50 ปัจจัย = ถูกต้องถ้าระดับเสียงของปริมาตรขวด25 มลรายงานผลการจัดระเบียบผลลัพธ์ของคุณในตาราง รายงานผลสุดท้ายเฉลี่ยของค่าที่ได้รับจากสามหาความ. อภิปรายอธิบายสั้น ๆ หลักการของแต่ละวิธี. อะไรคือสารเติมแต่งต่างๆ (เหล็ก, วิตามินซี, EDTA, BHA) ทำเพื่อให้ประโยชน์แก่หรือยับยั้งการเกิดออกซิเดชันของน้ำมันพืชหรือไม่ รวมการสังเกตการทดลองของคุณด้วยการอภิปรายวรรณกรรมของการทำงานเป็นที่รู้จักกันขององค์ประกอบเหล่านั้น

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิธีรักษา
:
1 การควบคุม ( น้ำมันพืช )
2 ผัก เฟอร์ริค คลอไรด์ 0.50 ml น้ำมัน 5 ml ( 15 μ M FeCl3 )
3 ผักกรดแอสคอร์บิค 0.50 ml น้ำมัน 5 ml ( 100 μ m )
8
FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-2558
4 น้ำมันพืช 5 ml 0.50 กรัม เฟอร์ริค คลอไรด์และกรดแอสคอร์บิก 0.50 กรัม ( 15 μ m
100 μ m )
5 น้ำมันพืช 5 ml 0.50 กรัม เฟอร์ริค คลอไรด์ , 0.50 กรัม วิตามินซี , EDTA ( 100 μ m )
6น้ำมันพืช 5 ml 0.50 กรัม เฟอร์ริค คลอไรด์ , 0.50 กรัม วิตามินซี , bha ( 100 μ M ) * *

* * เพิ่ม bha ก่อน prooxidant ให้ตัวอย่างที่บ่มเป็นเวลา 30 นาทีที่อุณหภูมิห้อง . เขย่าเป็นครั้งคราว



รวมออกซิเจน อุปกรณ์ : 1.250 ml ขวดกรวย
2 ความสามารถของเครื่องชั่งสมดุลกับที่ 0.01 กรัม
3 บิวเรตต์ 25 ml
4 ถังสามารถบรรจุ 50 ml
5 เปต
6 น้ำที่อาบ
7วัสดุ
1 การหาค่าของสารเคมีกรด :

1 เอทานอล โทลูอีน และปริมาณของส่วนผสมเท่ากับ 95% เอทานอล และโทลูอีน ปน .
2 สารละลายฟีนอล์ฟทาลีน ตัวบ่งชี้ ( 1% ) –ละลาย 1 กรัมของฟีนอล์ฟทาลีน ใน 100 มิลลิลิตรเอทานอล
.
3 มาตรฐานน้ำเกาะ 0.1 N เมทานอล โซลูชั่นจะไม่มีสี และเก็บในขวดสีเข้ม
.
ขั้นตอน :
1 หนักไปที่ใกล้ที่สุด 001 กรัม ลงในขวดรูปกรวย , 1-2g ของตัวอย่าง .
2 เพิ่ม 50 มิลลิลิตร ผสมโทลูอีนเอทานอลกับตัวอย่างและเขย่าจนสารละลาย
สมบูรณ์หรือต้มส่วนผสมต่อประมาณ 5 นาที เพิ่ม 1ml ลีนเป็นตัวบ่งชี้ .
3 ไทเทรตในขณะที่ร้อนกับเกาะมาตรฐาน การคำนวณ : กรด valule =
W
ที่ 56.1vn / V = ปริมาตรน้ำของเกาะมาตรฐานใช้
n = ปกติโซลูชั่น
เกาะW = น้ำหนักเป็นกรัมของตัวอย่าง
9
FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-2558
ความเป็นกรดมักแสดงเป็นกรดไขมันอิสระ ซึ่งการคำนวณจะถูก ;
กรดไขมันเช่นกรดโอเลอิก ( % ) = 28.2 VN / w
acid value = เปอร์เซ็นต์กรดไขมัน ( oleic ) x 1.99
2 การหาค่า

สามารถเปอร์ออกไซด์ : 1 กรดน้ำส้ม - คลอโรฟอร์ม โซลูชั่น ( 300ml และคลอโรฟอร์มกรดน้ำส้ม 200ml )
2สารละลายอิ่มตัวของไอโอไดด์โพแทสเซียม เก็บในที่มืด .
3 สารละลายโซเดียมไธโอซัลเฟต 0.1n . ในเชิงพาณิชย์ .
4 สารละลายแป้ง 1 %
5 กระบวนการกลั่น หรือคล้ายเนื้อเยื่อประสานน้ำ .
:
1 น้ำหนัก 5.00 ( ± 0.05 กรัม ของตัวอย่างเป็น 250 ml . ขวดแก้ว stoppered เออร์เลนเมเยอร์ . บันทึกน้ำหนักไปที่ 0.01g
.
2 โดยกระบอกตวงเพิ่ม 30 มิลลิลิตรของสารละลายกรดอะซิติก ( .
3หมุนขวดจนตัวอย่างละลายอย่างสมบูรณ์ .
4 การใช้ปิเปตต์ 1 ml เพิ่ม 0.5 ml และโพแทสเซียมไอโอไดด์สารละลาย จุก
ขวดหมุนเนื้อหาของขวด แค่ 1 นาที เก็บไว้ในที่มืดกัน 2mins
.
5 ทันทีเพิ่มด้วยกระบอกตวง 30 ml ทั้งกลั่น กันชน และเขย่า
อย่างแข็งขันเพื่อปลดปล่อยไอโอดีนจากคลอโรฟอร์มชั้น .
6เติม 0.1n บิวเรตต์ด้วยโซเดียมไธโอซัลเฟต .
7 ถ้าเริ่มต้นของสารละลาย คือ สี ส้ม แดงลึก ไทเทรตค่อยๆผสมกับจนกว่า
สี lightens . ถ้าสารละลายมีตอนแรกสีอำพันแสง ไปที่ขั้นตอนที่ 9
8 ใช้งานอุปกรณ์ เพิ่ม 1 มิลลิลิตรของสารละลายแป้งเป็นตัวบ่งชี้ .
9 ไตเตรทจนกระทั่งสีสีเทาสีฟ้าหายไปในน้ำ ( ชั้นบน ) หมายเหตุ สำหรับ
บางตัวอย่างไตเตรตจนถึงชั้นล่างมีลักษณะ " มิลค์กี้ " .
10 ได้อย่างถูกต้องบันทึกปริมาตรของไทแทรนต์ใช้สองตำแหน่งทศนิยม .
การคำนวณ : ค่าเปอร์ออกไซด์ ( มิลลิกรัมต่อกิโลกรัมไขมัน ) = ( s-b ) x n x 1000
w
ที่ , S = ไทเทรตตัวอย่าง
b = ที่มีว่าง
n = ปกติวิสัยของไธโอซัลเฟต
W = น้ำหนักของตัวอย่าง
กรัม 10
FSN 361 อาหารเคมีห้องปฏิบัติการ 1-2558
3 การหาค่า
เท่ากับกรดสารเคมี :
1 บิวทานอล
2 TBA รีเอเจนต์–ละลาย 200 มก. 2-thiobarbituric บิวทานอลใน 100 ml . ใช้เครื่องหรือช่วงล่าง
กรองเอากาก undissolved ให้หนักเพื่อ 100ml ด้วย
บิวทานอล . สารเคมีที่ไม่ควรเก็บไว้เกิน 1 สัปดาห์ในตู้เย็น . .

ขั้นตอน : 1 . ชั่งได้ 200 มิลลิกรัมของตัวอย่างในรอบปริมาตรขวด ละลายใน
ปริมาณขนาดเล็กของบิวทานอล และสร้างปริมาณที่มีตัวทำละลายเดียวกัน .
2 การโอน , การใช้ปิเปตต์ 5.0 มิลลิลิตรของสารละลายในหลอดทดสอบตัวอย่างแห้ง เพิ่มจากเปต
5.0 มิลลิลิตรของ TBA 3 โซลูชั่น ปิดหลอดทดสอบและผสมอย่างทั่วถึง .
3 สถานที่เตรียมหลอดทดลองลงในอ่างน้ำที่ 95 องศา C เป็นเวลา 30 นาที เอาหลอดทดสอบ
และเย็นภายใต้คลื่นน้ำจนกว่าจะถึงอุณหภูมิห้อง .
4วัดค่าการดูดกลืนแสงของปฏิกิริยาในสารละลาย 530 nm ใช้น้ำกลั่นเป็น
ว่างตั้งศูนย์ วิ่งว่างรีเอเจนต์และตัวอย่าง .
5 การคำนวณค่า TBA = 50 x ( A-B ) / m
=
b การทดสอบการดูดกลืนแสงของสารละลาย = การดูดกลืนแสงของสารละลายว่าง
m = มวลในมิลลิกรัมของการทดสอบส่วน
50 = ปัจจัยที่มีผลถ้าปริมาตรของขวดปริมาตร 25 ml


รายงานผล
จัดระเบียบผลลัพธ์ของคุณในโต๊ะ .รายงานผลลัพธ์สุดท้ายคือค่าที่ได้จากการสนทนาข้างต้น
3
.
อธิบายสั้น ๆ หลักการของแต่ละวิธี .
เกิดสารต่างๆ ( เหล็ก , วิตามินซี , EDTA , bha ) ทำเพื่อสนับสนุนหรือ
ยับยั้งออกซิเดชันของน้ำมันพืช ? รวมการสังเกตทดลองกับ
อภิปรายวรรณกรรมรู้จักการทำงานของส่วนประกอบเหล่านั้น