Algal cells of B. braunii 765 cultivated in the two tested media showed different color behaviors. In BG11 medium, consistent with the algal chlorophyll concentration decline (Fig. 2), the algal cells turned to yellow green from the initial green at the first 2–4 days. Afterward, the alga was adapted to the new culture and became green to dark-green again. However, for the alga cultivated in the wastewater, no obvious such variation was observed.
At the first 2–6 days, the colonies of B. braunii 765 cultivated in the BG11 medium appeared looser structure than those of the inoculums, with a diameter of 15–20 lm vs. 10 lm. Then, the col- ony size gradually recovered and remained stable thereafter. By comparison, the compact degree of algal colonies in the aerated swine lagoon wastewater changed little at first. But after 6 days from inoculation, some clusters (30–50 lm in diameter) formed by 3–5 single colonies appeared in the wastewater and became more and more. The formation of such clusters might be related to an increase of the algal extracellular polysaccharides, whose production would be favored by the high C/N ration of the swine wastewater (Miqueleto et al., 2010). In addition, these bigger colo- nies of B. braunii 765 in the wastewater would make it easier to harvest the alga biomass by auto-flocculation.
Unlike most other reports in which sterilized wastewater was used to cultivate B. braunii (Chinnasamy et al., 2010; Sawayama et al., 1992; Shen et al., 2008; Yonezawa et al., 2012), the present study used unsterilized wastewater. The results showed that B. braunii 765 maintained a dominant position for 24 days. Although trace Chlorella sp. cells appeared in one flask at day 26, they did not affect the past long-range stable state of the culture system. Simi- lar results have been reported by Shen et al. (2008), when they used 50% raw and 50% autoclaved livestock wastewater to cultivate B. braunii. Differently, their system was contaminated by Chlorella sp. just 12 days after inoculation. Shen et al. (2008) believed that Chlorella sp. would be favored over B. braunii in media with high TN and TP, and vice versa. However, despite that TN of the waste- water we used (177.9 mg L
เกิด braunii 765 ปลูกในสื่อทดสอบสองเซลล์ algal พบลักษณะสีแตกต่างกัน ใน BG11 สอดคล้องกับการลดลงความเข้มข้นคลอโรฟิลล์ algal (Fig. 2), เซลล์ algal กลายเป็นสีเขียวสีเหลืองจากต้นสีเขียวที่ 2 – 4 วันแรก หลังจากนั้น นี้ alga ถูกดัดแปลงวัฒนธรรมใหม่ และกลายเป็นสีเขียวถึงสีเขียวเข้มอีกครั้ง อย่างไรก็ตาม สำหรับ alga ที่ปลูกในน้ำเสีย ไม่ชัดเจนมีสังเกตการเปลี่ยนแปลงดังกล่าวที่ 2-6 วันแรก อาณานิคมของเกิด braunii 765 ปลูกในกลาง BG11 ปรากฏ โครงสร้าง looser กว่าของ inoculums มีเส้นผ่าศูนย์กลางของ lm 15 – 20 เทียบกับ 10 lm แล้ว คอลัมน์ - ony ขนาดค่อย ๆ กู้ และยังคงมั่นคงหลังจากนั้น โดยการเปรียบเทียบ ปริญญาขนาดกะทัดรัดของอาณานิคม algal ในน้ำลากูนสุกรอากาศเปลี่ยนแปลงเล็กน้อยในตอนแรก แต่หลังจาก 6 วันจาก inoculation บางคลัสเตอร์ (30 – 50 lm เส้นผ่านศูนย์กลาง) ก่อตั้งขึ้น โดยอาณานิคมเดียว 3-5 ในการบำบัดน้ำเสีย และเป็นมากขึ้น การก่อตัวของคลัสเตอร์ดังกล่าวอาจเกี่ยวข้องกับการเพิ่มขึ้นของการ algal extracellular polysaccharides จะปลอดซึ่งผลิต โดยอาหาร C/N สูงของสุกรเสีย (Miqueleto et al., 2010) เหล่าใหญ่โคโล nies ของเกิด braunii 765 ในน้ำเสียจะทำให้ชีวมวล alga โดยอัตโนมัติ-flocculationซึ่งแตกต่างจากรายงานอื่น ๆ ส่วนใหญ่ที่ ใช้บำบัด sterilized ปลูกเกิด braunii (Chinnasamy et al., 2010 Sawayama et al., 1992 เชิน et al., 2008 โยเนซาว่า et al., 2012), การศึกษาปัจจุบันใช้ unsterilized เสีย ผลลัพธ์แสดงให้เห็นว่า ที่เกิด braunii 765 รักษาตำแหน่งหลัก 24 วัน แม้ว่าเซลล์ติดตาม Chlorella sp.ปรากฏในหนึ่งหนาววัน 26 พวกเขาได้ผลผ่านมารัฐมีเสถียรภาพระยะยาวของระบบวัฒนธรรม Simi lar ผลลัพธ์มีการรายงานโดย Shen et al. (2008), พวกเขาใช้เมื่อดิบ 50% และ 50% autoclaved ปศุสัตว์น้ำเสียปลูก braunii เกิด แตกต่าง ระบบของพวกเขาถูกปนเปื้อน โดย Chlorella sp.เพียง 12 วันหลังจาก inoculation เชิน et al. (2008) เชื่อว่า Chlorella sp.จะปลอดผ่าน braunii เกิดสื่อ TN และ TP สูง และในทางกลับกัน อย่างไรก็ตาม แม้ที่ TN ของน้ำเสียที่เราใช้ (177.9 มิลลิกรัม L
การแปล กรุณารอสักครู่..