Themost abundant fatty acids in the

Themost abundant fatty acids in the total lipid of the SBT-E1 cell line
were 16:0, 18:0, 18:1n−9, 20:4n−6, 22:5n−3 and 22:6n−3. This
was similar to cell lines from other marine fish species, namely turbot
(Scophthalmus maximus) and gilthead seabream (Sparus aurata)
(Ghioni et al., 1999; Tocher and Ghioni, 1999) and also to cell lines
from freshwater and anadromous fish species (Tocher et al., 1989;
Tocher and Dick, 1999; Tocher et al., 1988). However, there was one
major difference and this was the appreciably greater abundance of
22:6n−3 in the tuna cell line (9.2% of total fatty acids) compared
with freshwater or anadromous fish cell lines (1.1–3.8% of total fatty
acids) and also with marine fish cell lines (3.9–5.5% of total fatty
acids). This suggested selective retention of 22:6n−3 by the tuna cell
line because the amount of 22:6n−3 supplied in the culture medium
was very low (only 2% of total fatty acids). It has been observed that
tunas caught from the wild have unusually high proportions of
22:6n−3 in their lipids and higher ratios of 22:6n−3 to 20:5n−3
than in their prey (Murase and Saito, 1996; Saito et al., 1996). For example,
muscle tissues from yellowfin tuna (Thunnus albacares) caught off
the Pacific coast of Japan contained 3.3–5.0% and 22.0–36.0% of their
total fatty acids as 20:5n−3 and 22:6n−3, respectively, giving
22:6n−3 to 20:5n−3 ratios of 6.7–8.6 (Saito et al., 1996). This is
compared with 8.4% and 22.7% of their total fatty acids as 20:5n−3
and 22:6n−3, respectively, and a 22:6n−3 to 20:5n−3 ratios of only
2.7 for their stomach contents. Similar results have been found for Albacore
(Thunnus alalunga) and longtail tuna (T. tonggol) (Murase and
Saito, 1996; Saito et al., 2005). This led to the proposition that tunas
selectively retain 22:6n−3 in their tissues. Selective retention could
be due to selective esterification into cellular lipids or to sparing from
β-oxidation (Tocher, 2003). Similarly, high 22:6n−3 to20:5n−3 ratios
could be due to selective metabolismof 20:5n−3 either via elongation
to 22:5n−3 or via β-oxidation (Tocher, 2003). The initial reactions in
the β-oxidation of 22:6n−3 in mammals involve the peroxisomes
and this, presumably, is also true for fish (Madsen et al., 1999; Tocher,
2003). Thus, selective retention of 22:6n−3 could be due to inefficient
oxidation as it involves partial oxidation in the peroxisomes followed by
transfer to the mitochondria for completion. In the present study we
found 22:6n−3 to 20:5n−3 ratios ranging from 2.1 to 2.9 in the total
lipid and 3.0 to 5.1 in the phospholipids of various tissues from farmed
SBT. These values are somewhat lower than those observed for
yellowfin tuna (see above). This is due to the higher proportions of
20:5 in the SBT total lipid (7.0 to 9.1% of total fatty acids) as compared
with the yellowfin tuna total lipid (3.3 to 5.0% of total fatty acids). This
may reflect the differences between the diets of wild tunas and farmed
tunas (Saito et al., 2005). Overall though, the SBT-E1 cell line appears to
have retained the traits of selective retention of 22:6n−3 and high
ratios of 22:6n−3 to 20:5n−3 characteristics of tuna tissues.
Themain fatty acids in the total lipid of the SBT-E1 cells showed different
distributions between the different lipid classes. For example,
neutral lipids contained a high proportion of 16:0, almost 40% of the

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Themost มากกรดไขมันในไขมันรวมบรรทัดเซลล์ E1 คณะถูก 16:0, 18:0, 18:1n−9, 20:4n−6, 22:5n−3 และ 22:6n−3 นี้บรรทัดเซลล์จากที่อื่น ๆ ปลาทะเลสายพันธุ์ turbot ได้แก่(Scophthalmus maximus) และ gilthead seabream (Sparus aurata)(Ghioni et al., 1999 Tocher และ Ghioni, 1999) และนอกจากนี้เซลล์รายการจากพันธุ์ปลาน้ำจืด และ anadromous (Tocher et al., 1989Tocher และดิ๊ก 1999 Tocher et al., 1988) อย่างไรก็ตาม มีหนึ่งความแตกต่างที่สำคัญและนี้มี appreciably มากมาย22:6n−3 ในปลาทูน่าเซลล์บรรทัด (9.2% ของกรดไขมันทั้งหมด) เปรียบเทียบปลาน้ำจืด หรือ anadromous เซลล์ข้อ (1.1 – 3.8% ของไขมันทั้งหมดกรด) และยัง มีปลาทะเลเซลล์บรรทัด (3.9 – 5.5% ของไขมันทั้งหมดกรด) นี้แนะนำใช้รักษา 22:6n−3 โดยเซลล์ปลาทูน่าบรรทัด เพราะจำนวน 22:6n−3 ให้ในสื่อวัฒนธรรมอยู่ในระดับต่ำมาก (เพียง 2% ของกรดไขมันทั้งหมด) จะมีการสังเกตซึ่งtunas จับจากป่ามีสัดส่วนที่สูงผิดปกติของ22:6n−3 ในโครงการและอัตราส่วนที่สูงของ 22:6n−3 กับ 20:5n−3กว่าในเหยื่อของพวกเขา (Murase และ Saito, 1996 Saito et al., 1996) ตัวอย่างเนื้อเยื่อกล้ามเนื้อจากปลาทูน่าครีบเหลือง (ปลา albacares) จับปิดชายฝั่งแปซิฟิกของญี่ปุ่นอยู่ 3.3 – 5.0% และ 22.0-36.0% ของพวกเขารวมกรดไขมันเป็น 20:5n−3 และ 22:6n−3 ตามลำดับ ให้22:6n−3 กับ 20:5n−3 อัตรา 6.7-8.6 (Saito et al., 1996) นี่คือเมื่อเทียบกับ 8.4% และ 22.7% ของกรดไขมันของพวกเขารวมเป็น 20:5n−3และ 22:6n−3 ตามลำดับ และ 22:6n−3 กับ 20:5n−3 อัตราเท่านั้น2.7 สำหรับเนื้อหาของกระเพาะอาหาร พบผลลัพธ์ที่คล้ายกันสำหรับ Albacore(ปลา alalunga) และปลาทูน่าหางยาว (ต.โอดำ) (Murase และSaito, 1996 Saito et al., 2005) นี้นำไปสู่ข้อเสนอที่ว่า tunasเลือกที่จะรักษา 22:6n−3 ในเนื้อเยื่อ สามารถเลือกเก็บข้อมูลเป็น เพราะเลือก esterification เป็นโครงการโทรศัพท์มือถือ หรือ sparing จากΒออกซิเดชัน (Tocher, 2003) อัตราส่วน to20:5n−3 22:6n−3 สูงคล้ายอาจเป็น เพราะใช้ metabolismof 20:5n−3 ผ่านทาง elongation22:5n−3 หรือ ผ่านβ-ออกซิเดชัน (Tocher, 2003) ปฏิกิริยาเริ่มต้นในβ-ออกซิเดชันของ 22:6n−3 ในการเลี้ยงลูกด้วยนมใน peroxisomes ที่เกี่ยวข้องกับและ สันนิษฐาน ก็เป็นจริงสำหรับปลา (แมดเซน et al., 1999 Tocher2003) . ดังนั้น ใช้รักษา 22:6n−3 อาจเป็น เพราะไม่ออกซิเดชันที่เกี่ยวข้องกับการเกิดออกซิเดชันบางส่วนใน peroxisomes ตามด้วยโอนย้ายไป mitochondria เสร็จ ในปัจจุบันศึกษาเราพบ 22:6n−3 กับ 20:5n−3 อัตราตั้งแต่ 2.1 2.9 ในผลรวมไขมันและ 3.0 การ 5.1 ใน phospholipids ของเนื้อเยื่อต่าง ๆ จาก farmedคณะ ค่าเหล่านี้จะค่อนข้างต่ำกว่าที่พบในปลาทูน่าครีบเหลือง (ดูข้างต้น) นี่คือเนื่องจากสัดส่วนที่สูงของ20:5 ในคณะรวมไขมัน (7.0-9.1% ของกรดไขมันทั้งหมด) เป็นการเปรียบเทียบมีการครีบเหลืองทูน่ารวมไขมัน (3.3-5.0% ของกรดไขมันทั้งหมด) นี้อาจสะท้อนให้เห็นถึงความแตกต่างระหว่างอาหารของป่า tunas และ farmedtunas (Saito et al., 2005) คำ ว่า รายการเซลล์ E1 คณะแสดงยังมีลักษณะของการใช้ 22:6n−3 และสูงอัตราส่วนของ 22:6n−3 กับ 20:5n−3 ลักษณะของเนื้อเยื่อของปลาทูน่าThemain กรดไขมันในไขมันรวมเซลล์ E1 คณะที่แสดงให้เห็นว่าแตกต่างกันการกระจายระหว่างชั้นไขมันแตกต่างกัน ตัวอย่างโครงการกลางประกอบด้วยสัดส่วนสูง 16:0, 40% ของการ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

กรดไขมัน Themost มากในไขมันรวมของเส้นเซลล์ SBT-E1
16: 0, 18: 0, 18: 1N-9, 20: 4n-6, 22: 5n-3 และ 22: 6n-3 นี้ก็คล้ายคลึงกับเซลล์สายจากคนอื่น ๆ สายพันธุ์ปลาทะเลคือบ็ (Scophthalmus สังฆ) และ gilthead Seabream (Sparus aurata) (Ghioni et al, 1999;. Tocher และ Ghioni, 1999) และยังเซลล์เส้นจากน้ำจืดและปลาanadromous (Tocher et al, 1989;. Tocher และดิ๊ก 1999. Tocher, et al, 1988) แต่มีหนึ่งความแตกต่างที่สำคัญและนี่คือความอุดมสมบูรณ์มากขึ้นของการประเมิน22: 6n-3 ในเซลล์ปลาทูน่าสาย (9.2% ของกรดไขมันทั้งหมด) เมื่อเทียบกับน้ำจืดหรือเซลล์anadromous ปลา (1.1-3.8% ของไขมันทั้งหมดกรด ) และยังมีเซลล์ปลาทะเล (3.9-5.5% ของไขมันทั้งหมดกรด) นี้แสดงให้เห็นการเก็บรักษาการคัดเลือก 22: 6n-3 โดยมือถือปลาทูน่าสายเพราะปริมาณของ22: 6n-3 จำหน่ายในอาหารเลี้ยงอยู่ในระดับต่ำมาก(เพียง 2% ของกรดไขมันทั้งหมด) มันได้รับการตั้งข้อสังเกตว่าปลาทูน่าที่จับมาจากป่ามีสัดส่วนที่สูงกว่าปกติ22: 6n-3 ในไขมันของพวกเขาและอัตราส่วนที่สูงขึ้นของ 22: 6n-3-20: 5n-3 กว่าในเหยื่อของพวกเขา (Murase และ Saito 1996; Saito et al., 1996) ยกตัวอย่างเช่นเนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อจากทูน่า (Thunnus albacares) ติด off ชายฝั่งแปซิฟิกของญี่ปุ่นที่มีอยู่ 3.3-5.0% และ 22.0-36.0% ของกรดไขมันรวม20: 5n-3 และ 22: 6n-3 ตามลำดับให้22: 6n-3-20: 5n-3 อัตราส่วน 6.7-8.6 (. ไซโตะ, et al, 1996) นี้เมื่อเทียบกับ 8.4% และ 22.7% ของกรดไขมันทั้งหมดของพวกเขาเป็น 20: 5n-3 และ 22: 6n-3 ตามลำดับและ 22: 6n-3-20: 5n-3 อัตราส่วนเพียง2.7 สำหรับกระเพาะอาหารของพวกเขา . ผลที่คล้ายกันได้รับการพบอัลบาคอ(Thunnus alalunga) และปลาทูน่าหางยาว (ที tonggol) (Murase และไซโตะ, 1996. Saito et al, 2005) นี้นำไปสู่ข้อเสนอที่ปลาทูน่าเลือกรักษา 22: 6n-3 ในเนื้อเยื่อของพวกเขา การเก็บรักษาที่เลือกอาจจะเป็นเพราะ esterification เลือกไขมันเข้าไปในมือถือหรือการประหยัดจากออกซิเดชันβ (Tocher, 2003) ในทำนองเดียวกันสูง 22: 6n-3 to20: 5n-3 อัตราส่วนอาจเป็นเพราะmetabolismof เลือก 20: 5n-3 ทั้งผ่านการยืดตัว22: 5n-3 หรือผ่านทางβออกซิเดชัน (Tocher, 2003) ปฏิกิริยาเริ่มต้นในการβ-ออกซิเดชันของ 22: 6n-3 ในสัตว์เกี่ยวข้องกับ peroxisomes และนี่น่าจะเป็นจริงสำหรับปลา (. เซน et al, 1999; Tocher, 2003) ดังนั้นการเก็บรักษาการคัดเลือก 22: 6n-3 อาจเป็นเพราะไม่มีประสิทธิภาพออกซิเดชั่ตามที่เกี่ยวข้องกับการเกิดออกซิเดชันบางส่วนในperoxisomes ตามด้วยการถ่ายโอนไปmitochondria ให้เสร็จ ในการศึกษาปัจจุบันเราพบว่า 22: 6n-3-20: 5n-3 อัตราส่วนตั้งแต่ 2.1-2.9 ในรวมไขมันและ3.0-5.1 ใน phospholipids ของเนื้อเยื่อต่างๆจากฟาร์มSBT ค่าเหล่านี้ค่อนข้างต่ำกว่าที่พบสำหรับทูน่า (ดูด้านบน) นี่คือสาเหตุที่สัดส่วนที่สูงขึ้นของ20: 5 ใน SBT ไขมันทั้งหมด (7.0-9.1% ของกรดไขมันทั้งหมด) เมื่อเทียบกับทูน่าไขมันทั้งหมด(3.3-5.0% ของกรดไขมันทั้งหมด) นี้อาจสะท้อนให้เห็นถึงความแตกต่างระหว่างอาหารของปลาทูน่าป่าและทำไร่ไถนาปลาทูน่า(Saito et al., 2005) โดยรวมแม้ว่าเซลล์ SBT-E1 ดูเหมือนจะยังคงรักษาลักษณะของการเก็บคัดเลือก22: 6n-3 สูงและอัตราส่วน22: 6n-3-20:. 5n-3 ลักษณะของเนื้อเยื่อปลาทูน่ากรดไขมันthemain ในทั้งหมด ไขมันของเซลล์ SBT-E1 แสดงให้เห็นที่แตกต่างกันการกระจายระหว่างเรียนไขมันที่แตกต่างกัน ยกตัวอย่างเช่นไขมันที่เป็นกลางที่มีสัดส่วนที่สูงของ 16: 0, เกือบ 40% ของ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

โดยชุกชุม กรดไขมันในเซลล์ไขมันรวมของ sbt-e1 บรรทัดเป็น 16:0 18:0
, , 18:1n − 9 , 20:4n − 6 , 22:5n − 3 และ 22:6n − 3 นี้จะคล้ายกับเซลล์
จากสัตว์ทะเลชนิดอื่น ๆได้แก่ ปลา , ปลาชนิดหนึ่ง
( scophthalmus Maximus ) และ gilthead seabream ( sparus aurata )
( ghioni et al . , 1999 ; tocher และ ghioni , 1999 ) และยังเซลล์
จากน้ำจืดและปลา anadromous ( tocher et al . ,1989 ;
tocher และกระเจี๊ยว , 1999 ; tocher et al . , 1988 ) อย่างไรก็ตามมีหนึ่ง
ความแตกต่างหลักและนี้คือได้มากกว่ามากมาย
22:6n − 3 ในปลาทูน่าสายพันธุ์ของเซลล์ ( 9.2 % ของกรดไขมันทั้งหมด ) เมื่อเทียบกับปลา หรือปลา
anadromous เซลล์ ( 1.1 ) 3.8 % ของกรดไขมันทั้งหมด
กรด ) และยังมีปลาทะเลเซลล์ ( 3.9 ) . % ของกรดไขมันทั้งหมด
กรด )นี้แนะนำการเลือกของ 22:6n − 3 โดยปลาทูน่าเซลล์
บรรทัดเนื่องจากปริมาณของ 22:6n − 3 จัดอยู่ในสื่อวัฒนธรรม
ต่ำมาก ( เพียง 2 % ของกรดไขมันทั้งหมด ) มันได้รับการตรวจสอบว่าปลาทูน่าที่จับได้จากป่า

มีสัดส่วนสูงผิดปกติของ 22:6n − 3 ในไขมันและอัตราส่วนที่สูงขึ้นของ 22:6n − 3 20:5n − 3
กว่าเหยื่อ ( มุราและไซโตะ , 1996 ; ไซโต et al . , 1996 )ตัวอย่างเช่น
เนื้อเยื่อของกล้ามเนื้อจากปลาทูน่าครีบเหลือง ( thunnus albacares ) จับปิด
ชายฝั่งมหาสมุทรแปซิฟิกของญี่ปุ่นที่มีอยู่ 3.3 – 5.0% และ 22.0 และ 36.0 % กรดของไขมันเป็น 20:5n
รวม 3 และ 22:6n −− 3 ตามลำดับ ให้
22:6n − 3 20:5n − 3 อัตราส่วนของ 6.7 – 8.6 ( ไซโตะ et al . , 1996 ) นี่คือ
เมื่อเทียบกับร้อยละ 22.7 และ 8.4 % เป็นกรดไขมันรวมเป็น 20:5n − 3
22:6n และ− 3 ตามลำดับ และ 22 :ทัวร์− 3 20:5n − 3 อัตราส่วนเท่านั้น
2.7 สำหรับกระเพาะอาหารของเขา ผลที่คล้ายกันได้รับพบ Albacore
( ปลาอัลบาคอร์ ) และปลาโอดำ ( T . tonggol ) ( มุราและ
ไซโตะ , 1996 ; ไซโต et al . , 2005 ) นี้นำไปสู่ข้อเสนอที่ปลาทูน่า
เลือกรักษา 22:6n − 3 ในเนื้อเยื่อ การรักษาอาจจะเกิดจากปฏิกิริยาเอสเทอริฟิเคชันในการเลือก

หรือเมตตาจากเซลล์ไขมันบีตา - ออกซิเดชัน ( tocher , 2003 ) ในทํานองเดียวกัน สูง 22:6n − 3 to20:5n − 3 อัตราส่วน
อาจเกิดจากการ metabolismof 20:5n − 3 ทั้งผ่านการยืดตัว
เพื่อ 22:5n − 3 หรือผ่านทางบีตา - ออกซิเดชัน ( tocher , 2003 ) ปฏิกิริยาเริ่มต้นใน
บีตา - ออกซิเดชันของ 22:6n − 3 ในสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนมที่เกี่ยวข้องกับเพอรอกซิโซม
และนี้ สันนิษฐานว่า จะเป็นจริงสำหรับปลา ( แมดเซ่น et al . , 1999 ; tocher
, 2003 ) ดังนั้น การเลือกของ 22 :ทัวร์− 3 อาจเกิดจากการขาด
ตามที่เกี่ยวข้องกับปฏิกิริยาออกซิเดชันบางส่วนในเพอรอกซิโซมตาม
โอนให้ไมโตคอนเดรีย ( mitochondria ) แล้วเสร็จ ในการศึกษาครั้งนี้เราพบ 22:6n
3 20:5n −− 3 อัตราส่วนตั้งแต่ 2.1 จำกัดในไขมันรวม
และ 3.0 5.1 ในดเนื้อเยื่อต่างๆ จากฟาร์ม
สบท . ค่าเหล่านี้จะค่อนข้างต่ำกว่า 7
ปลาทูน่าครีบเหลือง ( ดูด้านบน ) เนื่องจากมีสัดส่วนที่สูงขึ้นของ
20 : 5 ใน SBT ไขมันรวม ( 7.0 9.1 % ของกรดไขมันทั้งหมด ) โดยเมื่อ
กับปลาทูน่าครีบเหลืองไขมันรวม ( 3.3 5.0 % ของกรดไขมันทั้งหมด ) นี้
อาจสะท้อนให้เห็นถึงความแตกต่างระหว่างอาหารของป่าและปลาทูน่าปลาทูน่า farmed
( ไซโตะ et al . , 2005 ) โดยรวมแม้ว่า sbt-e1 ไพรทีปรากฏ
มีลักษณะของการสะสมใน 22:6n − 3 และสูง
อัตราส่วนของ 22:6n − 3 20:5n − 3 ลักษณะเนื้อเยื่อปลาทูน่า .
ส่วนกรดไขมันในเซลล์ไขมันรวมของ sbt-e1 มีการแจกแจงที่แตกต่างกัน
ระหว่างเรียนในที่แตกต่าง ตัวอย่างเช่น
นิวทรัลลิปิดที่มีสัดส่วนที่สูงของ 16:0 เกือบ 40% ของ