Samples were subjected to simulated

Samples were subjected to simulated human gastric and pan-
creatic digestion based on the method described by Miller,
Schricker, Rasmussen, and Van Campen (1981), with modifica-
tions to optimise carotenoid availability as described by Garrett,
Failla and Sarama (1999). Briefly, to 1 g of finely chopped
vegetable sample was added 200 ul ascorbic acid (150 mM) and
9.8 ml saline (0.9%) and the pH adjusted to 2.0 with 5 M HCl.
One ml of pepsin solution (20 mg/ml in 0.1 M HCl) was then
added and the sample tubes filled with nitrogen and incubated at
37 °C for 60 min with gentle shaking. The pH was then adjusted
to about 5 with 1 M NaHCO3 followed by the addition of bile/
pancreatin solution (3 ml, containing 50 mg pancreatin and
300 mg bile in 35 ml 0.1 M NaHCO3). The pH was adjusted to
7.0 and the sample tubes were filled with nitrogen and incubated
as before for 2 h.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างถูกต้องในกระเพาะมนุษย์จำลองและแพน-creatic ย่อยตามวิธีที่อธิบายไว้ โดยมิลเลอร์Schricker รัสมุส และ Van Campen (1981), กับ modifica-ทุกระดับเพื่อเพิ่มประสิทธิภาพงานแคตามที่อธิบายไว้ โดยการ์เร็ตFailla และ Sarama (1999) สั้น ๆ การ 1 g เตรียมตัวอย่างผักเพิ่ม 200 ul วิตามิน (150 มม.) และ9.8 ml น้ำเกลือ (0.9%) และค่า pH ปรับ 2.0 กับ 5 M HClหนึ่งมิลลิลิตรของน้ำย่อย (20 มิลลิกรัม/มิลลิลิตรใน 0.1 M HCl) ได้แล้วเพิ่ม และหลอดเก็บตัวอย่างไป ด้วยไนโตรเจน และได้รับการกกที่37 ° C สำหรับ 60 นาทีเขย่าเบา ๆ ถูกปรับค่า pH5 ประมาณ 1 M NaHCO3 ตาม ด้วยการเพิ่มน้ำดี /pancreatin โซลูชัน (3 ml ประกอบด้วย pancreatin 50 มิลลิกรัม และน้ำดี 300 มก.ใน 35 มิลลิลิตร 0.1 M NaHCO3) ปรับค่า pH7.0 และหลอดเก็บตัวอย่างไป ด้วยไนโตรเจน และได้รับการกกสำหรับ 2 ชั่วโมงก่อน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างที่ถูกยัดเยียดให้กระเพาะอาหารของมนุษย์จำลองและทะ
ย่อยอาหาร creatic ขึ้นอยู่กับวิธีการอธิบายโดยมิลเลอร์
Schricker กรัสมุสและแวน Campen (1981) กับ modifica-
ทั้งนี้เพื่อเพิ่มประสิทธิภาพความพร้อม carotenoid ตามที่อธิบายไว้โดยการ์เร็ต
Failla และ Sarama (1999) . สั้น ๆ ถึง 1 กรัมสับ
ตัวอย่างผักถูกเพิ่มกรด 200 UL ซี (150 มิลลิเมตร) และ
9.8 มล. น้ำเกลือ (0.9%) และค่า pH ปรับ 2.0 5 M HCl.
หนึ่งมล. ของการแก้ปัญหาน้ำย่อย (20 mg / ml ใน 0.1 M HCl) จากนั้นก็
เพิ่มและหลอดตัวอย่างที่เต็มไปด้วยไนโตรเจนและบ่มที่
อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 60 นาทีด้วยการเขย่าอ่อนโยน ค่า pH ที่มีการปรับแล้ว
ประมาณ 5 จาก 1 M NaHCO3 ตามด้วยนอกเหนือจากน้ำดีที่ /
วิธีการแก้ปัญหา Pancreatin (3 มล. บรรจุ 50 Pancreatin มิลลิกรัมและ
300 มิลลิกรัมต่อน้ำดีใน 35 มล. 0.1 M NaHCO3) ค่าพีเอชได้รับการปรับให้
7.0 และหลอดตัวอย่างเต็มไปด้วยไนโตรเจนและบ่ม
เป็นมาก่อนเป็นเวลา 2 ชั่วโมง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตัวอย่างจะถูกมนุษย์ในกระเพาะอาหารและแพน - จำลองการย่อยอาหาร creatic ตามวิธีที่อธิบายไว้โดยมิลเลอร์schricker ราสมัสเซน และ แวน แคมเปิ้น ( 1981 ) modifica - กับใช้งานได้อย่างรวดเร็วในความพร้อมตามที่อธิบายไว้โดยการ์เร็ตและ failla sarama ( 1999 ) สั้น ๆ , สับละเอียด 1 กรัมตัวอย่างผักเพิ่ม 200 UL กรดแอสคอร์บิค ( 150 มม. ) และ9.8 กรัม น้ำเกลือ ( 0.9% ) และปรับ pH 2.0 5 M HCl .หนึ่งมิลลิลิตรเอนไซม์เปปซิน ( 20 mg / ml ในสารละลาย 0.1 M HCl ) แล้วเพิ่มและจำนวนท่อที่เต็มไปด้วยไนโตรเจนและบ่มที่37 ° C เป็นเวลา 60 นาที เบาสั่น ปรับ pH แล้วโซเดี่ยมประมาณ 5 กับ 1 m ตามด้วยนอกเหนือจากน้ำดี /โซลูชั่น Pancreatin ( 3 ml บรรจุ 50 Pancreatin มิลลิกรัมและ300 mg น้ำดีใน 0.1 โมลาร์โซเดียมไบคาร์บอเนต 35 ml ) pH ให้อยู่ในระดับที่เหมาะสม7.0 และจำนวนท่อที่เต็มไปด้วยไนโตรเจนและบ่มเป็นก่อนเป็นเวลา 2 ชั่วโมง