2.4. Induction of BPH and treatment

2.4. Induction of BPH and treatments
Firstly, the testis organ of the rats was removed to exclude the influence of intrinsic testosterone except for the rats in the con- trol group. The spermatic cord and blood vessels were ligated with Silkam sutures 3/8–16 mm (B. Braun Surgical SA, Rubi, Spain) and the testis organ was resected. In order to induce BPH in rats, a subcutaneous injection of testosterone (20 mg/kg; Wako chemicals, Tokyo, Japan) for 4 weeks after castration was carried out. And, next day, rats were divided into 4 groups (each group, n = 10): (1) control group, (2) testosterone-induced (subcutaneous) BPH group, and (3) KH053 treated group (200 mg/kg oral administration). (4) Finasteride (Sigma–Aldrich, St. Louis, MO, USA) treat group as positive group. Based on a previous study, we treated rats with 200 mg/kg of KH053 (Hong et al., 2013; Kim et al., 2014). All materials were administered to the animals in the morning for 30 days.
2.5. Blood collection and biochemical analysis
After 4weeks, all rats were fasted overnight. Blood was obtained from the heart of the rat. Blood was collected in a serum separating tube (SST tube). Blood samples were cen- trifuged at 3000g for 15 min. The serum was separated from blood and stored at 20 C. The total protein, glutamic oxa- loacetic transaminase (GOT, AST), glutamic pyruvic transam- inase (GPT, ALT), and DHT levels were analyzed by Green lab (Seoul, Korea). After the animals were sacrificed, the tissue of prostate was stored in formaldehyde solution in order to evaluate pathological change and expression of growth factors.
2.6. Histopathological examination
Prostate tissues embedded in paraffin wax were cut into 10- lm-thick sections using a microsection machine. Staining with hematoxylin and eosin was firstly performed. The stained pros- tate tissues were mounted and cover slipped using mounting solution and then examined under a microscope.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.4 การเหนี่ยวนำของต่อมลูกหมากโตและการรักษาประการแรก อวัยวะ testis ของหนูถูกเอาการแยกอิทธิพลของฮอร์โมนเพศชายที่แท้จริงยกเว้นหนูในกลุ่มปรับรูป สาย spermatic และเลือดถูกควบกับเย็บแผล Silkam 3/8-16 มม. (B. วอนเบราน์ SA ผ่าตัด ผู้ใช้ สเปน) และอวัยวะ testis ได้ resected เพื่อก่อให้เกิดต่อมลูกหมากในหนูขาว การฉีดใต้ผิวหนังของฮอร์โมนเพศชาย (20 มิลลิกรัมกิโลกรัม สารเคมีวาโกะ โตเกียว ญี่ปุ่น) 4 สัปดาห์หลังจาก castration ดำเนิน และ วันถัดไป หนูถูกแบ่งออกเป็น 4 กลุ่ม (แต่ละกลุ่ม n = 10): กลุ่มควบคุม (1), (2) เกิดของฮอร์โมนเพศชาย (ใต้) ต่อมลูกหมาก และกลุ่มกลุ่ม (3) ถือว่า KH053 (บริหารปาก 200 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม) (4) Finasteride (ซิกม่า – Aldrich, St. Louis, MO สหรัฐอเมริกา) รักษากลุ่มเป็นบวก จากการศึกษาก่อนหน้านี้ เรารับหนู ด้วย 200 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัมของ KH053 (Hong ร้อยเอ็ด 2013 Kim et al. 2014) วัสดุทั้งหมดคือการสัตว์ในตอนเช้าสำหรับ 30 วัน2.5. เลือดคอลเลกชันและการวิเคราะห์ทางชีวเคมีAfter 4weeks, all rats were fasted overnight. Blood was obtained from the heart of the rat. Blood was collected in a serum separating tube (SST tube). Blood samples were cen- trifuged at 3000g for 15 min. The serum was separated from blood and stored at 20 C. The total protein, glutamic oxa- loacetic transaminase (GOT, AST), glutamic pyruvic transam- inase (GPT, ALT), and DHT levels were analyzed by Green lab (Seoul, Korea). After the animals were sacrificed, the tissue of prostate was stored in formaldehyde solution in order to evaluate pathological change and expression of growth factors.2.6. Histopathological examinationProstate tissues embedded in paraffin wax were cut into 10- lm-thick sections using a microsection machine. Staining with hematoxylin and eosin was firstly performed. The stained pros- tate tissues were mounted and cover slipped using mounting solution and then examined under a microscope.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.4 การเหนี่ยวนำของเพลี้ยกระโดดสีน้ำตาลและการรักษา
ประการแรกอวัยวะลูกอัณฑะของหนูถูกลบออกเพื่อยกเว้นอิทธิพลของฮอร์โมนเพศชายที่แท้จริงยกเว้นหนูในกลุ่มควบคุมได้ สายและเลือดน้ำกามเรือได้ผูกกับ Silkam เย็บ 3 / 8-16 มิลลิเมตร ( B. Braun ผ่าตัด SA, Rubi, สเปน) และอวัยวะลูกอัณฑะถูก resected เพื่อที่จะทำให้เกิดเพลี้ยกระโดดสีน้ำตาลในหนูที่ฉีดใต้ผิวหนังของฮอร์โมนเพศชาย (20 mg / kg; สารเคมี Wako โตเกียวประเทศญี่ปุ่น) เป็นเวลา 4 สัปดาห์หลังจากการตัดอัณฑะได้ดำเนินการ และวันรุ่งขึ้นหนูถูกแบ่งออกเป็น 4 กลุ่ม (แต่ละกลุ่ม n = 10): (1) กลุ่มควบคุม (2) ฮอร์โมนเพศชายที่เกิดขึ้น (ใต้ผิวหนัง) กลุ่มเพลี้ยกระโดดสีน้ำตาลและ (3) KH053 กลุ่มได้รับการรักษา (200 mg / kg การบริหารช่องปาก) (4) Finasteride (Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA) กลุ่มรักษาเป็นกลุ่มในเชิงบวก ขึ้นอยู่กับการศึกษาก่อนหน้านี้เราได้รับการรักษาหนูกับ 200 มิลลิกรัม / กิโลกรัมของ KH053 (ฮ่องกง, et al, 2013;.. คิม et al, 2014) วัสดุทั้งหมดเป็นยาสัตว์ในตอนเช้าเป็นเวลา 30 วัน.
2.5 เก็บเลือดและการวิเคราะห์ทางชีวเคมี
หลังจาก 4weeks หนูทั้งหมดถูกอดอาหารค้างคืน เลือดที่ได้รับจากหัวใจของหนู เก็บตัวอย่างเลือดในหลอดเซรั่มแยก (หลอด SST) ตัวอย่างเลือด cen- trifuged ที่ 3000G นาน 15 นาที ซีรั่มถูกแยกออกจากเลือดและเก็บไว้ที่ 20 องศาเซลเซียสโปรตีนรวม, กลูตามิก oxa- transaminase loacetic (GOT, AST) pyruvic กลูตามิก transam- inase (GPT, ALT) และ DHT ระดับการวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการสีเขียว (กรุงโซลประเทศเกาหลีใต้ ) หลังจากที่สัตว์ที่ถูกเสียสละเนื้อเยื่อของต่อมลูกหมากที่ถูกเก็บไว้ในสารละลายฟอร์มาลดีไฮด์เพื่อประเมินการเปลี่ยนแปลงทางพยาธิวิทยาและการแสดงออกของปัจจัยการเจริญเติบโต.
2.6 ทางจุลพยาธิวิทยาการตรวจสอบ
เนื้อเยื่อต่อมลูกหมากที่ฝังอยู่ในพาราฟินถูกตัดออกเป็น 10 ส่วน LM-หนาใช้เครื่อง microsection การย้อมสีด้วย hematoxylin และ Eosin ได้ดำเนินการประการแรก เปื้อนเนื้อเยื่อต่อมลูกหมาก pros- ถูกติดตั้งและฝาครอบลื่นใช้วิธีการติดตั้งและจากนั้นตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์