2.1. Chemical and reagentsYellow on

2.1. Chemical and reagents
Yellow onion (Allium cepa), sweet Italian green pepper
(Capsicum annuum), cardoon stalks (C. cardunculus L), olive oil
and sunflower oil were obtained from local stores.
The methanol and ethanol were of analytical grade from
Panreac (Barcelona, Spain). The methanol (HPLC grade) was
purchased from Panreac (Barcelona, Spain). Trolox (6-hydroxy-2,
5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid), 2,20
-azinobis (3-eth
ylbenzothiazonile-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS),
2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), as well as the standards
used for identification and quantification of phenolic compounds
(quercetin, luteolin, isorhamnetin, 5-caffeoylquinic acid and
caffeic acid), were purchased from Sigma–Aldrich (Steinheim,
Germany).
2.2. Samples preparation
Chopped vegetables (yellow onion, green pepper, and
cardoon stalks) (300 g) were fried with olive or sunflower oils
(30 mL) at 115 C for 10 min in a non-stick frying pan. Then,
temperature was decreased to 108 C for 5 min. Chopped
vegetables were also submitted to heating at 150 C for
10 min and then at 110 C for 5 min in a non-stick griddle
without oil addition. Then, raw and cooked vegetables were
lyophilized in a freeze dryer Cryodos-80 (Telstar, Terrasa, Spain),
and stored at -
18 C until analysis.
2.3. Vegetables extracts
Vegetables extracts were prepared according to Siddiq,
Roidoung, Sogi, and Dolan (2013) with some modifications. Briefly,
thirty mL of ethanol/water (80/20) was added to 2 g of lyophilized
vegetables. The content was mixed on a mechanical shaker for 1 h
at room temperature and then centrifuged at 4000 rpm for 10 min.
Supernatant was collected and residues were re-extracted twice
using 10 mL of ethanol 80% by vortexing (1 min) and centrifuged
at 4000 rpm for 5 min. All three supernatants were combined
and frozen at -
18 C for antioxidant capacity and UHPLC–PDA–H
R–MS analysis.
2.4. Antioxidant capacity by ABTS assay
The ABTS antioxidant capacity was performed according to the
method of Re et al. (1999). The radicals ABTS+ were generated by
the addition of 0.36 mM potassium persulfate to a 0.9 mM ABTS
solution prepared in phosphate buffered saline (PBS) (pH 7.4),
and the ABTS+ solution was stored in darkness for 12 h. The ABTS+
solution was adjusted with PBS to an absorbance of 0.700 (±0.020)
at 734 nm in a 3 mL capacity cuvette (1 cm length) at 25 C
(Lambda 25 UV–VIS spectrophotometer, Perkin-Elmer Instru-
ments, Madrid, Spain). An aliquot of 100 lL of each vegetable
extract sample properly diluted in demineralized water, was added
to 2 mL of ABTS+ solution. The absorbance was measured spec-
trophotometrically at 734 nm after exactly 18 min. Calibration
was performed with Trolox solution (a water-soluble vitamin E
analog), and the antioxidant capacity was expressed as micromoles
of Trolox equivalent per gram of dry matter sample (lmol Trolox/
g dm).
2.5. Antioxidant capacity by DPPH assay
The antioxidant capacity was also measured using 2,2-
diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH
) decolorization assay (Brand-
Williams, Cuvelier, & Berset, 1995) with some modifications. A
6.1 10-
5 M DPPH methanolic solution was prepared immedi-
ately before use. The DPPH solution was adjusted with methanol
to an absorbance of 0.700 (±0.020) at 515 nm in a 3 mL capacity
cuvette (1 cm length) at 25 C (Lambda 25 UV–VIS spectropho-
tometer, Perkin-Elmer Instruments, Madrid, Spain). Vegetable
extracts were properly diluted in demineralized water prior to
analysis. Samples (50 lL) were added to 1.95 mL of the DPPH
solu-
tion. After mixing, the absorbance was measured at 515 nm after
exactly 18 min. Calibration was performed with Trolox solution
(a water-soluble vitamin E analog). The antioxidant capacity was
expressed as micromoles of Trolox equivalent per gram of dry mat-
ter sample (lmol Trolox/g dm).
2.6. (Poly)phenolic compounds by UHPLC–PDA–HR–MS
(Poly)phenolic compounds were analysed using an UPLC with a
PDA detector scanning from 200–600 nm, equipped with an
autosampler cooled at 4 C (Dionex Ultimate 3000 RS, Thermo Cor-
poration) and an ExactiveTM Orbitrap mass spectrometer fitted with
a heated electrospray ionization probe (HESI) (Thermo Fisher Sci-
entific, San José, USA). Chromatographic separation was performed
at 40 C on a Kinetex 5 lm RP 250 4.6 mm reversed phase col-
umn (Phenomenex, Macclesfield, UK). Ten microliter of each
ethanolic extract was analysed using an 80 min 5–50% gradient
of acetonitrile in 0.1% aqueous formic acid at a constant flow rate
of 1 mL/min. After passing the PDA flow cell, the eluate was split
and 0.2 mL/min was directed to the mass spectrometer with the
HESI operating in negative ionization mode. Analysis was carried
out in full-scan (100–800 m/z) and full-scan with In-Source
Collision-induced dissociation (CID) (100–800 m/z; CID 25.0 eV).
Capillary temperature was 300 C; sheath gas and auxiliary gas
were 60 and 20 units/min, respectively; source voltage was
4.0 kV. Identification

2.1. Chemical and reagents
Yellow onion (Allium cepa), sweet Italian green pepper
(Capsicum annuum), cardoon stalks (C. cardunculus L), olive oil
and sunflower oil were obtained from local stores.
The methanol and ethanol were of analytical grade from
Panreac (Barcelona, Spain). The methanol (HPLC grade) was
purchased from Panreac (Barcelona, Spain). Trolox (6-hydroxy-2,
5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid), 2,20
-azinobis (3-eth
ylbenzothiazonile-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS),
2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), as well as the standards
used for identification and quantification of phenolic compounds
(quercetin, luteolin, isorhamnetin, 5-caffeoylquinic acid and
caffeic acid), were purchased from Sigma–Aldrich (Steinheim,
Germany).
2.2. Samples preparation
Chopped vegetables (yellow onion, green pepper, and
cardoon stalks) (300 g) were fried with olive or sunflower oils
(30 mL) at 115 C for 10 min in a non-stick frying pan. Then,
temperature was decreased to 108 C for 5 min. Chopped
vegetables were also submitted to heating at 150 C for
10 min and then at 110 C for 5 min in a non-stick griddle
without oil addition. Then, raw and cooked vegetables were
lyophilized in a freeze dryer Cryodos-80 (Telstar, Terrasa, Spain),
and stored at -
18 C until analysis.
2.3. Vegetables extracts
Vegetables extracts were prepared according to Siddiq,
Roidoung, Sogi, and Dolan (2013) with some modifications. Briefly,
thirty mL of ethanol/water (80/20) was added to 2 g of lyophilized
vegetables. The content was mixed on a mechanical shaker for 1 h
at room temperature and then centrifuged at 4000 rpm for 10 min.
Supernatant was collected and residues were re-extracted twice
using 10 mL of ethanol 80% by vortexing (1 min) and centrifuged
at 4000 rpm for 5 min. All three supernatants were combined
and frozen at -
18 C for antioxidant capacity and UHPLC–PDA–H
R–MS analysis.
2.4. Antioxidant capacity by ABTS assay
The ABTS antioxidant capacity was performed according to the
method of Re et al. (1999). The radicals ABTS+ were generated by
the addition of 0.36 mM potassium persulfate to a 0.9 mM ABTS
solution prepared in phosphate buffered saline (PBS) (pH 7.4),
and the ABTS+ solution was stored in darkness for 12 h. The ABTS+
solution was adjusted with PBS to an absorbance of 0.700 (±0.020)
at 734 nm in a 3 mL capacity cuvette (1 cm length) at 25 C
(Lambda 25 UV–VIS spectrophotometer, Perkin-Elmer Instru-
ments, Madrid, Spain). An aliquot of 100 lL of each vegetable
extract sample properly diluted in demineralized water, was added
to 2 mL of ABTS+ solution. The absorbance was measured spec-
trophotometrically at 734 nm after exactly 18 min. Calibration
was performed with Trolox solution (a water-soluble vitamin E
analog), and the antioxidant capacity was expressed as micromoles
of Trolox equivalent per gram of dry matter sample (lmol Trolox/
g dm).
2.5. Antioxidant capacity by DPPH assay
The antioxidant capacity was also measured using 2,2-
diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH
) decolorization assay (Brand-
Williams, Cuvelier, & Berset, 1995) with some modifications. A
6.1  10-
5 M DPPH methanolic solution was prepared immedi-
ately before use. The DPPH solution was adjusted with methanol
to an absorbance of 0.700 (±0.020) at 515 nm in a 3 mL capacity
cuvette (1 cm length) at 25 C (Lambda 25 UV–VIS spectropho-
tometer, Perkin-Elmer Instruments, Madrid, Spain). Vegetable
extracts were properly diluted in demineralized water prior to
analysis. Samples (50 lL) were added to 1.95 mL of the DPPH
solu-
tion. After mixing, the absorbance was measured at 515 nm after
exactly 18 min. Calibration was performed with Trolox solution
(a water-soluble vitamin E analog). The antioxidant capacity was
expressed as micromoles of Trolox equivalent per gram of dry mat-
ter sample (lmol Trolox/g dm).
2.6. (Poly)phenolic compounds by UHPLC–PDA–HR–MS
(Poly)phenolic compounds were analysed using an UPLC with a
PDA detector scanning from 200–600 nm, equipped with an
autosampler cooled at 4 C (Dionex Ultimate 3000 RS, Thermo Cor-
poration) and an ExactiveTM Orbitrap mass spectrometer fitted with
a heated electrospray ionization probe (HESI) (Thermo Fisher Sci-
entific, San José, USA). Chromatographic separation was performed
at 40 C on a Kinetex 5 lm RP 250  4.6 mm reversed phase col-
umn (Phenomenex, Macclesfield, UK). Ten microliter of each
ethanolic extract was analysed using an 80 min 5–50% gradient
of acetonitrile in 0.1% aqueous formic acid at a constant flow rate
of 1 mL/min. After passing the PDA flow cell, the eluate was split
and 0.2 mL/min was directed to the mass spectrometer with the
HESI operating in negative ionization mode. Analysis was carried
out in full-scan (100–800 m/z) and full-scan with In-Source
Collision-induced dissociation (CID) (100–800 m/z; CID 25.0 eV).
Capillary temperature was 300 C; sheath gas and auxiliary gas
were 60 and 20 units/min, respectively; source voltage was
4.0 kV. Identification

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2.1. เคมีและตัวทำปฏิกิริยาสีเหลืองหัวหอม (Allium cepa) พริกเขียวหวานที่อิตาลี(Annuum พริกหวาน), cardoon stalks (C. cardunculus L), น้ำมันมะกอกและน้ำมันดอกทานตะวันได้รับมาจากร้านค้าท้องถิ่นเมทานอลและเอทานอลเป็นของเกรดวิเคราะห์จากPanreac (บาร์เซโลนา สเปน) มีเมทานอล (HPLC เกรด)ซื้อจาก Panreac (บาร์เซโลนา สเปน) Trolox (6-ไฮดร็อกซี่-2กรด 5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic), 2,20-azinobis (3-ethdiammonium ylbenzothiazonile 6 sulfonic กรดเกลือ (รเรียน),2.2 ได-1-picrylhydrazyl (DPPH), เป็นมาตรฐานใช้สำหรับการระบุและการนับของสารฟีนอ(quercetin, luteolin, isorhamnetin, 5 caffeoylquinic กรด และกรด caffeic), ซื้อจาก Sigma-Aldrich (Steinheimเยอรมนี)2.2. การเตรียมตัวอย่างสับผัก (หอมหัวใหญ่สีเหลือง พริกเขียว และcardoon stalks) (300 กรัม) ถูกทอด ด้วยน้ำมันมะกอก หรือทานตะวัน(30 มิลลิลิตร) 115 c เป็นเวลา 10 นาทีในกระทะไม่ติด แล้วอุณหภูมิได้ลดลงเป็น 108 C 5 นาทีสับผักยังส่งความร้อนที่ 150 C สำหรับ10 นาทีแล้ว 110 C เป็นเวลา 5 นาทีในหยองไม่ติดโดยนอกจากน้ำมัน แล้ว ผักดิบ และสุกได้lyophilized ในการหยุดเป่า Cryodos-80 (Telstar, Terrasa สเปน),และเก็บไว้ที่-18 C จนถึงการวิเคราะห์2.3 สารสกัดจากผักมีเตรียมสารสกัดจากผักตาม SiddiqRoidoung, Sogi และ Dolan (2013) ด้วยการปรับเปลี่ยนบางอย่าง สั้น ๆ30 mL ของเอทานอลน้ำ (80/20) ถูกเพิ่มไป 2 g ของ lyophilizedผัก เนื้อหาที่ถูกผสมในปั่นเครื่องจักรกลสำหรับ 1 hที่อุณหภูมิห้องแล้ว เหวี่ยงที่ 4000 rpm 10 นาทีSupernatant รวบรวม และสกัดตกค้างอีกครั้งใช้เอทานอล 80% 10 mL โดย vortexing (1 นาที) และเหวี่ยงที่ 4000 rpm 5 นาที Supernatants สามทั้งหมดได้รวมและแช่แข็งที่-18 C สารต้านอนุมูลอิสระและ UHPLC – PDA – HR – MS วิเคราะห์2.4. ความจุต้านอนุมูลอิสระ โดยทดสอบรเรียนกำลังการผลิตสารต้านอนุมูลอิสระรเรียนทำตามวิธีการของ Re et al. (1999) อนุมูลรเรียน + สร้างขึ้นโดยนอกเหนือจาก persulfate โพแทสเซียม 0.36 มม.การรเรียน 0.9 มม.โซลูชันที่เตรียมไว้ในน้ำเกลือฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (PBS) (ค่า pH 7.4),และรเรียน + แก้ปัญหาถูกเก็บไว้ในที่มืดสำหรับ 12 ชม รเรียนการ +ปรับปรุงโซลูชัน ด้วย PBS ให้มี absorbance 0.700 (±0.020)ที่ 734 nm ในการ 3 mL ผลิตตัวปรับต่อ (ความยาว 1 เซนติเมตร) ที่ 25 C(แลมบ์ดา 25 UV – VIS spectrophotometer เพอร์กินเอลเมอจัด-ยืน มาดริด สเปน) ส่วนลงตัวที่ 100 จะของผักแต่ละแยกตัวอย่างถูกเจือจางในน้ำไอออน เพิ่มถึง 2 มล.รเรียน +แก้ปัญหา Absorbance ที่ถูกวัดข้อมูลจำเพาะ-trophotometrically ที่ 734 nm หลังตรง 18 นาทีเทียบดำเนินการด้วย Trolox (ละลายน้ำได้วิตามินอีอนาล็อก), และการผลิตสารต้านอนุมูลอิสระถูกแสดงเป็น micromolesของ Trolox เทียบต่อกรัมของตัวอย่างเรื่องแห้ง (lmol Trolox /g dm).2.5. Antioxidant capacity by DPPH assayThe antioxidant capacity was also measured using 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH) decolorization assay (Brand-Williams, Cuvelier, & Berset, 1995) with some modifications. A6.1 10-5 M DPPH methanolic solution was prepared immedi-ately before use. The DPPH solution was adjusted with methanolto an absorbance of 0.700 (±0.020) at 515 nm in a 3 mL capacitycuvette (1 cm length) at 25 C (Lambda 25 UV–VIS spectropho-tometer, Perkin-Elmer Instruments, Madrid, Spain). Vegetableextracts were properly diluted in demineralized water prior toanalysis. Samples (50 lL) were added to 1.95 mL of the DPPHsolu-tion. After mixing, the absorbance was measured at 515 nm afterexactly 18 min. Calibration was performed with Trolox solution(a water-soluble vitamin E analog). The antioxidant capacity wasexpressed as micromoles of Trolox equivalent per gram of dry mat-ter sample (lmol Trolox/g dm).2.6. (Poly)phenolic compounds by UHPLC–PDA–HR–MS(Poly)phenolic compounds were analysed using an UPLC with aPDA detector scanning from 200–600 nm, equipped with anautosampler cooled at 4 C (Dionex Ultimate 3000 RS, Thermo Cor-poration) and an ExactiveTM Orbitrap mass spectrometer fitted witha heated electrospray ionization probe (HESI) (Thermo Fisher Sci-entific, San José, USA). Chromatographic separation was performedat 40 C on a Kinetex 5 lm RP 250 4.6 mm reversed phase col-umn (Phenomenex, Macclesfield, UK). Ten microliter of eachethanolic extract was analysed using an 80 min 5–50% gradientof acetonitrile in 0.1% aqueous formic acid at a constant flow rateof 1 mL/min. After passing the PDA flow cell, the eluate was splitand 0.2 mL/min was directed to the mass spectrometer with theHESI operating in negative ionization mode. Analysis was carriedout in full-scan (100–800 m/z) and full-scan with In-SourceCollision-induced dissociation (CID) (100–800 m/z; CID 25.0 eV).Capillary temperature was 300 C; sheath gas and auxiliary gaswere 60 and 20 units/min, respectively; source voltage was4.0 kV. Identification

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2.1 สารเคมีและสารเคมี
สีเหลืองหอม (Allium cepa) หวานพริกเขียวอิตาเลี่ยน
(พริกหยวกพริก), ก้าน cardoon ( C. cardunculus L), น้ำมันมะกอก
และน้ำมันดอกทานตะวันที่ได้รับจากร้านค้าในท้องถิ่น.
เมทิลแอลกอฮอล์และเอทานอลเป็นของเกรดวิเคราะห์จาก
Panreac ( บาร์เซโลนา, สเปน). เมทานอล (HPLC เกรด) คือการ
ซื้อจาก Panreac (บาร์เซโลน่า, สเปน) Trolox (6 ไฮดรอกซี-2,
กรด 5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic), 2,20
-azinobis (3-ETH
ylbenzothiazonile-6-Sulfonic Acid) เกลือ diammonium (ABTS),
2,2-diphenyl- 1-picrylhydrazyl (DPPH) เช่นเดียวกับมาตรฐานที่
ใช้สำหรับการระบุและการหาปริมาณสารประกอบฟีนอล
(quercetin, luteolin, isorhamnetin กรด 5 caffeoylquinic และ
กรด caffeic) ที่ซื้อมาจาก Sigma-Aldrich (Steinheim,
เยอรมนี).
2.2 การเตรียมความพร้อมตัวอย่าง
ผักสับ (สีเหลืองหอมพริกเขียวและ
ก้าน cardoon) (300 กรัม) ได้รับการทอดด้วยน้ำมันมะกอกหรือน้ำมันดอกทานตะวัน
(30 มิลลิลิตร) ที่ 115 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 10 นาทีในกระทะที่ไม่ติดกะทะ จากนั้น
อุณหภูมิลดลงถึง 108 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที สับ
ผักยังถูกส่งไปให้ความร้อนที่ 150 องศาเซลเซียสเป็น
เวลา 10 นาทีแล้วที่ 110 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีในแผ่นเหล็กไม่ติด
โดยไม่ต้องเติมน้ำมัน แล้วผักดิบและสุกถูก
แห้งในเครื่องแช่แข็ง Cryodos-80 (Telstar, Terrasa, สเปน)
และเก็บไว้ที่ -
? 18 C จนการวิเคราะห์.
2.3 ผักสารสกัดจาก
สารสกัดจากพืชผักผลไม้ที่ถูกจัดทำขึ้นตาม Siddiq,
Roidoung, Sogi และ Dolan (2013) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง สั้น ๆ
สามสิบมิลลิลิตรของเอทานอล / น้ํา (80/20) ถูกบันทึกอยู่ใน 2 กรัมของแห้ง
ผัก เนื้อหาที่ได้รับการผสมในเครื่องปั่นกลเป็นเวลา 1 ชั่วโมง
ที่อุณหภูมิห้องแล้วหมุนเหวี่ยงที่ 4000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที.
ใสถูกเก็บรวบรวมและสารตกค้างเป็นอีกครั้งที่สกัดครั้งที่สอง
โดยใช้ 10 มิลลิลิตรของเอทานอล 80% โดย vortexing (1 นาที) และหมุนเหวี่ยง
ที่ 4000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาที ทั้งสาม supernatants มารวมกัน
และแช่แข็งที่ -
? 18 C เป็นสารต้านอนุมูลอิสระและ UHPLC-PDA-H
. วิเคราะห์ R-MS
2.4 สารต้านอนุมูลอิสระโดยการทดสอบ ABTS
ABTS สารต้านอนุมูลอิสระที่ได้ดำเนินการตาม
วิธีการของเรื่อง, et al (1999) อนุมูล ABTS? + ถูกสร้างขึ้นโดย
นอกเหนือจาก 0.36 มิลลิโพแทสเซียมเพอร์ซัลเฟตไป 0.9 มิลลิ ABTS
แก้ปัญหาการจัดทำในฟอสเฟตบัฟเฟอร์น้ำเกลือ (PBS) (pH 7.4)
และ ABTS? + แก้ปัญหาที่ถูกเก็บไว้ในความมืดเป็นเวลา 12 ชั่วโมง ABTS? +
แก้ปัญหาที่ถูกปรับได้ด้วยพีบีเอสเพื่อการดูดกลืนแสงของ 0.700 (± 0.020) ความ
ที่ 734 นาโนเมตรใน 3 มลจุ cuvette (ความยาว 1 ซม.) วันที่ 25? C
(แลมบ์ดา 25 UV-VIS spectrophotometer, เพอร์กินเอลเมอเป็นเครื่อง
ments , มาดริด, สเปน) หาร 100 LL ของผักแต่ละ
ตัวอย่างสารสกัดปรับลดอย่างถูกต้องในน้ำปราศจากแร่ธาตุเสริม
2 มล ABTS? + โซลูชัน ค่าการดูดกลืนวัด spec-
trophotometrically ที่ 734 นาโนเมตรหลังจากว่า 18 นาที สอบเทียบ
ได้ดำเนินการกับการแก้ปัญหา Trolox (ละลายน้ำวิตามินอี
อะนาล็อก) และสารต้านอนุมูลอิสระได้รับการแสดงเป็น micromoles
ของ Trolox เทียบเท่าต่อกรัมของตัวอย่างแห้ง (lmol Trolox /
G DM).
2.5 สารต้านอนุมูลอิสระ DPPH โดยการทดสอบ
สารต้านอนุมูลอิสระนอกจากนี้ยังได้รับการวัดโดยใช้ 2,2-
diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH?
) ลดสีทดสอบ (Brand-
วิลเลียมส์ Cuvelier และ Berset, 1995) มีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง
6.1? 10-
5 M DPPH? วิธีการแก้ปัญหาเมทานอลได้จัดทำ immedi-
อย่างปานกลางก่อนการใช้งาน DPPH? แก้ปัญหาที่ถูกปรับได้ด้วยเมทานอล
เพื่อการดูดกลืนแสงของ 0.700 (± 0.020) ที่ 515 นาโนเมตรใน 3 มลจุ
cuvette (ความยาว 1 ซม.) วันที่ 25? C (แลมบ์ดา 25 UV-VIS spectropho-
tometer, เพอร์กินเอลเมอเครื่องดนตรี, มาดริด, สเปน ) ผัก
สารสกัดถูกปรับลดอย่างถูกต้องในน้ำปราศจากแร่ธาตุก่อนที่จะมี
การวิเคราะห์ ตัวอย่าง (50 LL) มีการเพิ่ม 1.95 มลของ DPPH?
โซลูชัน
การ หลังจากผสม, การดูดกลืนแสงที่ถูกวัดที่ 515 นาโนเมตรหลังจาก
ว่า 18 นาที ได้ดำเนินการสอบเทียบกับการแก้ปัญหา Trolox
(ละลายน้ำวิตามินอีอะนาล็อก) สารต้านอนุมูลอิสระได้รับการ
แสดงเป็นของ micromoles Trolox เทียบเท่าต่อกรัมของ Mat- แห้ง
ตัวอย่างตรี (lmol Trolox / g DM).
2.6 (โพลี) สารประกอบฟีนอโดย UHPLC-PDA-HR-MS
(โพลี) สารประกอบฟีนอถูกนำมาวิเคราะห์โดยใช้ UPLC กับ
การสแกนตรวจจับ PDA 200-600 นาโนเมตรพร้อมกับ
autosampler ระบายความร้อนที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียส (Dionex ที่ดีที่สุด 3000 อาร์เอสเทอร์โม Cor-
poration) และสเปกโตรมิเตอร์มวล ExactiveTM Orbitrap พอดีกับ
น้ำอุ่นสอบสวน electrospray ไอออนไนซ์ (HESI) (ฟิชเชอร์เทอร์โมภาพ
entific, SAN JOSE, สหรัฐอเมริกา) การแยกสารได้ดำเนินการ
ที่ 40 องศาเซลเซียสใน Kinetex 5 LM RP 250? 4.6 มมขั้นตอนการกลับรายการจะเก็บรวบรวม
UMN (Phenomenex, แฟรงก์สสหราชอาณาจักร) สิบไมโครลิตรของแต่ละ
สารสกัดที่ได้มาวิเคราะห์โดยใช้การไล่ระดับสี 80 นาที 5-50%
ของ acetonitrile ใน 0.1% กรดน้ำที่อัตราการไหลคงที่
ของ 1 มิลลิลิตร / นาที หลังจากผ่านเซลล์ไหล PDA ที่ eluate ถูกแบ่งออก
และ 0.2 มิลลิลิตร / นาทีถูกนำไปวิเคราะห์มวลที่มี
HESI ทำงานในโหมดไอออนไนซ์เชิงลบ วิเคราะห์ได้ดำเนินการ
ออกมาในแบบเต็มรูปแบบสแกน (100-800 m / z) และเต็มไปด้วยการสแกนในแหล่งที่มาของ
การแยกตัวออกชนที่เกิดขึ้น (CID) (100-800 เมตร / z; CID 25.0 EV).
ฝอยอุณหภูมิ 300 องศาเซลเซียส ; ก๊าซและก๊าซปลอกเสริม
60 และ 20 หน่วย / นาทีตามลำดับ; แรงดันไฟฟ้าที่มาเป็น
4.0 กิโลโวลต์ บัตรประจำตัว

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2.1 . เคมีและสารเคมีหอมหัวใหญ่สีเหลือง ( หอมหัวใหญ่ ) , พริกหวานเขียวอิตาลี( พริก annuum ) cardoon ดอก ( C . cardunculus ลิตร ) น้ำมันมะกอกและน้ำมันดอกทานตะวัน ได้จากร้านค้าในท้องถิ่นส่วนเมทานอลและเอทานอลเป็นเกรดวิเคราะห์panreac ( บาร์เซโลนา ) เมทานอล ( ป. 2 ) คือซื้อจาก panreac ( บาร์เซโลนา ) ( 6-hydroxy-2 สาร ,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic 2,20 กรด )- azinobis ( 3-ethylbenzothiazonile-6-sulfonic acid ) diammonium เกลือ ( Abbr )2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl ( dpph ) เช่นเดียวกับมาตรฐานใช้สำหรับการระบุและปริมาณของสารประกอบฟีนอล( เคอร์ลูทิโอลิน 5-caffeoylquinic กรดไอโซแรมเนติน , , , และกรด Caffeic ) ซื้อมาจากซิกม่า Aldrich ( steinheim ) ,เยอรมนี )2.2 . การเตรียมตัวอย่างผักสับหัวหอม เหลือง เขียว พริกไทย และcardoon ดอก ) ( 300 กรัม ) ถูกทอดด้วยน้ำมันมะกอก หรือ ทานตะวัน( 30 ml ) ที่ 115 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 10 นาที ใน ไม่ติดกระทะ จากนั้นอุณหภูมิลดลง 108 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที สับผักยังส่งความร้อน 150 C สำหรับ10 นาทีแล้วที่อุณหภูมิ 110 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีในไม่ติดแผ่นเหล็กไม่เติมน้ำมัน แล้วผักดิบและสุกคือเครื่องเป่าแห้งแช่แข็งไว้ใน cryodos-80 ( telstar terrasa , สเปน ) ,และเก็บไว้ที่ -18 C จนถึงการวิเคราะห์2.3 สารสกัดจากผักสารสกัดจากผัก siddiq เตรียมตาม ,roidoung sogi , และ โดแลน ( 2013 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน สั้น ๆ30 มิลลิลิตรเอทานอล / น้ำ ( 80 / 20 ) คือการเพิ่ม 2 กรัมของโปรตีนผัก เนื้อหาที่ถูกผสมในเครื่องปั่นกลเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง แล้วไฟฟ้าที่ 4000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีรวบรวมและนำดินอีกครั้งสกัด 2 ครั้งใช้ 10 มล. ของแอลกอฮอล์ 80% โดย vortexing ( 1 นาที ) และระดับที่ 4 , 000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 5 นาที ทั้งสาม supernatants ถูกรวมและแช่แข็งที่ -18 C และสารต้านอนุมูลอิสระ uhplc PDA ( H )R - นางสาวการวิเคราะห์2.4 . สารต้านอนุมูลอิสระผลิต Abbr การทดสอบการต้านการ Abbr ความจุตามไปวิธีการ re et al . ( 1999 ) อนุมูล Abbr + ถูกสร้างขึ้นโดยนอกจากนี้ของเปอร์ซัลเฟตโพแทสเซียม 0.36 มม. ถึง 0.9 มม. Abbrเตรียมสารละลายฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ( PBS ) ในน้ำเกลือ ( pH 7.4 )และโซลูชั่นที่ถูกเก็บไว้ในที่มืด Abbr + 12 ชั่วโมง + Abbrโซลูชั่นปรับกับ PBS เป็นค่า 0.700 ( ± 0.020 )ที่คุณ nm ใน 3 ml ความจุคิวเวตต์ ( 1 ซม. ความยาว ) ที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียส( แลมด้า 25 UV Vis เพอร์กินเอลเมอร์และชุดอุปกรณ์ - Spectrophotometer ,ments , มาดริด , สเปน ) เป็นส่วนลงตัวของ 100 จะของผักแต่ละสารเจือจางในน้ำตัวอย่างถูกต้องเปอร์เซนต์ คือเพิ่ม2 มล. Abbr + แก้ไข น - วัดสเป็คtrophotometrically ที่ 734 nm หลังตรง 18 นาที การสอบเทียบการแก้ไข ( ด้วยสารละลายวิตามิน อีอนาล็อก ) และสารต้านอนุมูลอิสระจะแสดงเป็นไมโครโมของสาร เท่ากับ 1 กรัม น้ำหนักแห้ง ( lmol / ตัวอย่างสารg DM )2.5 สารต้านอนุมูลอิสระผลิต dpph การทดสอบความจุของสารต้านอนุมูลอิสระ ยังใช้ 2 , 2 - วัดdiphenyl-1-picrylhydrazyl ( dpphการใช้ ( ยี่ห้อ )วิลเลียมส์ คว เลอร์ และ berset , 1995 ) ที่มีการปรับเปลี่ยน เป็น10 - .5 M dpph สารละลายเมทานอล immedi - เตรียมately ก่อนใช้ การ dpph สารละลายปรับด้วยเมทานอลเป็นค่า 0.700 ( ± 0.020 ) ที่ 515 nm ในความจุ 3 มล.คิวเวตต์ ( 1 ซม. ความยาว ) ที่อุณหภูมิ 25 C ( แลมบ์ดา 25 UV Vis spectropho - จำกัดtometer เพอร์กินเอลเมอร์ , เครื่องมือ , มาดริด , สเปน ) ผักสารสกัดถูกเจือจางในน้ำก่อนเปอร์เซนต์การวิเคราะห์ ตัวอย่าง ( 50 จะถูกเพิ่มไปยัง 950 ml ของ dpphซูลู -tion . หลังจากผสมน เป็นวัดที่ 515 nm หลังตรง 18 นาที การแสดงโซลูชั่นด้วยสาร( ละลายวิตามินอีอะนาล็อก ) ความจุของสารต้านอนุมูลอิสระคือแสดงเป็นไมโครโมของเทียบเท่า กรัมละ - บริการเสื่อสารตรีตัวอย่าง ( lmol สาร / g DM )2.6 ( โพลี ) สารประกอบฟีนอลโดย uhplc ––– PDA HR MS( โพลี ) สารประกอบฟีนอล วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้ uplc กับสแกนจากเครื่อง PDA 200 – 600 นาโนเมตรพร้อมกับautosampler เย็นที่ 4 C ( DIONEX สูงสุด 3 , 000 Rs , เทอร์โม - สีporation ) และ exactivetm orbitrap แมสสเปกโทรมิเตอร์ติดตั้งอุ่นวิธีพ่นละอองไฟฟ้าไนเซชั่นโพรบ ( hesi ) ( Thermo Fisher Sci -ซาน โฮเซ entific sci , USA ) เมื่อมีการแยกที่ 40 องศาเซลเซียสใน kinetex LM Rp 250 4.6 มม. 5 กลับเฟส Col -อืม ( phenomenex Macclesfield , สหราชอาณาจักร ) ไมโครลิตร สิบ ของแต่ละคนสิ่งสกัดวิเคราะห์ใช้ 80 นาที 5 – 50 % ไล่ระดับของไนใน 0.1% กรดฟอร์มิกน้ำที่อัตราการไหลคงที่1 มิลลิลิตร / นาที หลังจากผ่าน PDA การไหลของสารละลาย ( eluate ) คือการแยกเซลล์และ 0.2 มิลลิลิตร / นาทีกับแมสสเปกโทรมิเตอร์ด้วยhesi ปฏิบัติการในโหมดอิออนลบ วิเคราะห์ออกเต็มสแกน ( 100 - 800 m / Z ) และสแกนเต็มรูปแบบกับในแหล่งเกิดการชนกัน ( CID ) ( 100 - 800 m / z ; ซิด 25.0 EV )ซึ่งเป็นอุณหภูมิ 300 C ; น้ำมันและแก๊สปลอกเสริม60 และ 20 หน่วย / นาที ตามลำดับ แหล่งแรงดัน

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.