Irudayaraj, 2004). All spectra were

Irudayaraj, 2004). All spectra were transformed to absorbance
mode with nine-point segment smoothing.
2.4.3. Principal component analysis
PCA was carried out using Spectrum Quant software (Perkin
Elmer, Beaconsfield, UK) and validated with the spectra of randomly
selected samples that were not included among those used
to build the model.
2.5. Carbohydrate profiles and contents
2.5.1. Thin layer chromatography
An aliquot of 1 lL of syrup solution (100 mg mL1) was applied
to a silica gel TLC plate with aluminium support. The TLC plate was
developed in a solvent system of butanol/propanol/water (Kanaya,
Chiba, & Shimomura, 1978) and sprayed with aniline/diphenylamine/
phosphoric acid reagent in acetone for carbohydrate visualisation
(Anderson, Li, & Li, 2000).
2.5.2. High performance anion exchange chromatography with pulsed
amperometric detection
The types and amounts of carbohydrates in the natural sweeteners
were analysed and quantified by HPAEC-PAD according to
the method established by Mellado-Mojica and López (2012,
2013) in a Dionex ICS-3000 ion chromatograph (Dionex, Sunnyvale,
CA) with a CarboPac PA-100 guard column (4 mm  50 mm)
and a CarboPac-PA100 analytical column (4 mm  250 mm). The
syrups were diluted to a concentration of 0.2 mg mL1 with deionised
water (resistivity of 17 MX) and then filtered through a nylon
membrane with 0.45-lm pores before injection. Twenty-five
microlitres of each diluted sample was injected into the HPAEC.
Carbohydrates were separated using a gradient of sodium acetate
in 0.15 M NaOH at a flow of 0.8 mL min1 and a column temperature
of 25 C. The potentials applied for detection by the amperometric
pulse were E1 (400 ms), E2 (20 ms), E3 (20 ms), and E4
(60 ms) of +0.1, 2.0, +0.6, and 0.1 V, respectively.
3. Results and discussion
3.1. Physicochemical properties of the natural syrups
We determined the physicochemical parameters of the agave
syrups and the other syrups (corn, sugar cane, and honey bee) to
establish differences among the sweeteners based on their natural
origins.
The total soluble solids, moisture, pH, and colour of the natural
sweeteners were very similar regardless of the natural origin of the
sweeteners (Fig. 1). The total soluble solids (Brix) values were very
similar among all the natural syrups (Fig. 1A). The agave syrups
ranged from 65 to 79.5 Brix, the corn syrups ranged from 76.5
to 77.4 Brix, and the sugar cane syrups ranged from 69.8 to 80.1
Brix; the honey was somewhat higher, with maximum values
ranging from 80 to 84 Brix. The moisture content (%M) was similar
among all the sweeteners as well, ranging from 14.4% to 33%
(Fig. 1B). The honey had the lowest moisture level, ranging from
14.4% to 18.2%, while the agave and sugar cane syrups had very
similar moisture levels. All the natural syrups were slightly acidic,
with pH values between 3.36 and 5.26 (Fig. 1C). The pH of the
agave syrups ranged from pH 3.66 to pH 5.23.
The natural syrups exhibited a wide range of colours regardless
of their origin. The agave syrups showed a wide range of light
absorbance (0.017–3.956) and exhibited a variety of colour categories
from water white to dark amber (Fig. 1D). The corn syrups
exhibited only the water white colour (absorbance < 0.0945). The
honey exhibited colours ranging from water white to light amber
(absorbance from 0.034 to 0.652). The sugar cane syrups displayed
the darkest colours, ranging from amber to dark amber (absorbance
from 1.471 to 3.956).
The physicochemical properties of the agave syrups from A.
salmiana (AS22–AS25) contrasted with those of the other agave
syrups; the former had the lowest total soluble solids content,
the highest moisture content, and the darkest colour among the
agave samples.
Overall, the physicochemical properties of the natural sweeteners
were very similar, highlighting the importance of finding useful
tools to differentiate among sweeteners from different sources.
3.2. Classification of the agave syrups by infrared spectroscopic
techniques
IR spectroscopic techniques combined with multivariate data
analysis have been used as a nondestructive way to quantify and
characterise biological samples. These techniques can rapidly provide
a considerable amount of information about a sample and
have been successfully used to determine components such as carbohydrates,
fats, vitamins, amino acids, proteins, and moisture in
60
65
70
75
80
85
90 A
10
15
20
25
30
35
40 C
3
3.5
4
4.5
5
5.5
6 B
Agave Corn Honey Sugar cane Agave Corn Honey Sugar cane
0
0.5
1
1.5
2
2.5
3
3.5
4
4.5 D
Fig. 1. Physicochemical properties of the natural sweeteners; (A) total soluble solids (Brix); (B) pH; (C) moisture content (%M); (D) colour (DO 560 nm).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Irudayaraj, 2004) แรมสเป็คตราทั้งหมดถูกแปลงไป absorbanceโหมดส่วนจุดเก้าจุด/ตารางนิ้ว2.4.3. คอมโพเนนต์หลักการวิเคราะห์สมาคมได้ดำเนินการใช้ซอฟต์แวร์ Quant สเปกตรัม (เพอร์เอลเมอ บีคอนส์ฟิลด์ UK) และตรวจสอบกับแรมสเป็คตราของสุ่มตัวอย่างที่เลือกที่ไม่รวมอยู่ในหมู่ผู้ใช้การสร้างแบบจำลอง2.5 คาร์โบไฮเดรตโพรไฟล์และเนื้อหา2.5.1. บางชั้น chromatographyส่วนลงตัวที่ 1 ของน้ำ (มิลลิกรัมต่อ 100 มิลลิลิตร 1) จะถูกนำไปใช้การแผ่นเจล TLC ด้วยการสนับสนุนของอะลูมิเนียม แผ่น TLC เป็นพัฒนาระบบตัวทำละลายของบิวทานอ/อย่างไร propanol/น้ำ (คานายาชิบะ และ Shimomura, 1978) และฉีดพ่น ด้วย aniline/diphenylamine /กรดฟอสฟอริกรีเอเจนต์ในอะซีโตนในการสร้างมโนภาพของคาร์โบไฮเดรต(แอนเดอร์สัน Li และ Li, 2000)2.5.2 chromatography แลก anion สูงกับสูงตรวจสอบการ amperometricชนิดและจำนวนของคาร์โบไฮเดรตในสารให้ความหวานตามธรรมชาติanalysed และ quantified โดยแผ่น HPAEC ตามวิธีการจัดตั้งขึ้น โดย Mellado Mojica และ López (20122013) ใน chromatograph การไอออน Dionex ICS-3000 (Dionex, SunnyvaleCA) ด้วยคอลัมน์ยาม CarboPac PA-100 (4 มม. 50 มม.)และคอลัมน์วิเคราะห์ CarboPac PA100 (4 มม. 250 มม) ที่syrups ถูกผสมให้เข้มข้น 0.2 mg mL 1 กับ deionisedน้ำ (ความต้านทานของ 17 MX) และกรองแล้ว ผ่านเป็นไนลอนเมมเบรน มีรูขุมขน 0.45-lm ก่อนฉีด ยี่สิบห้าmicrolitres ของแต่ละอย่างแตกออกถูกฉีดเข้าไปใน HPAECคาร์โบไฮเดรตถูกแยกโดยใช้การไล่ระดับสีของโซเดียม acetateใน 0.15 M NaOH ที่กระแสต่ำสุด 0.8 mL 1 และอุณหภูมิคอลัมน์ของค. 25 ศักยภาพที่ใช้สำหรับการตรวจหาการ amperometricชีพจรได้ E1 (400 ms), (20 ms) E2, E3 (20 ms), และ E4(60 ms) +0.1, 2.0, +0.6 และ 0.1 V ตามลำดับ3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1. physicochemical คุณสมบัติของ syrups ธรรมชาติเรากำหนดพารามิเตอร์ physicochemical ของอากาเว่syrups และอื่น ๆ syrups (ข้าวโพด อ้อย และผึ้ง) เพื่อสร้างความแตกต่างระหว่างสารให้ความหวานตามธรรมชาติของพวกเขาจุดเริ่มต้นของแข็งละลายทั้งหมด ความชื้น pH และสีของธรรมชาติสารให้ความหวานคล้ายว่าจุดเริ่มต้นของธรรมชาติสารให้ความหวาน (Fig. 1) ค่าของแข็งละลายน้ำทั้งหมด (Brix) ถูกมากคล้ายกันในทั้งหมดธรรมชาติ syrups (Fig. 1A) Syrups อากาเว่อยู่ในช่วงจาก 65 ถึง 79.5 Brix, syrups ข้าวโพดมา 76.577.4 Brix และ syrups น้ำตาลอยู่ในช่วงจาก 69.8 ถึง 80.1Brix น้ำผึ้งมีค่อนข้างสูง มีค่าสูงสุดตั้งแต่ 80 ถึง 84 Brix ชื้น (%M)จากทั้งหมดที่สารให้ความหวานเช่น ตั้งแต่ 14.4% ถึง 33%(Fig. 1B) น้ำผึ้งมีระดับความชื้นต่ำ ตั้งแต่14.4% 18.2% ขณะ syrups อากาเว่และอ้อยได้มากระดับความชื้นเหมือนกัน Syrups ธรรมชาติทั้งหมดมีเปรี้ยวเล็กน้อยมีค่า pH ระหว่าง 3.36 และ 5.26 (Fig. 1C) PH ของการอยู่ในช่วงจาก 3.66 ค่า pH กับค่า pH 5.23 syrups อากาเว่Syrups ธรรมชาติจัดแสดงความหลากหลายของสีที่ไม่ต้นกำเนิดของพวกเขา Syrups อากาเว่พบหลากหลายของแสงabsorbance (0.017 – 3.956) และจัดแสดงความหลากหลายของประเภทสีจากน้ำสีขาวจะเหลืองเข้ม (Fig. 1D) Syrups ข้าวโพดจัดแสดงเฉพาะสีขาวน้ำสี (absorbance < 0.0945) ที่น้ำผึ้งจัดแสดงสีตั้งแต่สีขาวน้ำสีเหลืองอำพัน(absorbance จาก 0.034 กับ 0.652) Syrups อ้อยแสดงสีมืดมากที่สุด ตั้งแต่เหลืองถึงเหลืองเข้ม (absorbanceจาก 1.471 เพื่อ 3.956)คุณสมบัติ physicochemical ของ syrups อากาเว่จากอ.salmiana (AS22 – AS25) เปรียบเทียบกับอากาเว่อื่น ๆsyrups เดิมมีเนื้อหารวมของแข็งที่ละลายน้ำต่ำเนื้อหาของความชื้นที่สูง และสีมืดมากที่สุดในการตัวอย่างอากาเว่โดยรวม physicochemical คุณสมบัติของสารให้ความหวานตามธรรมชาติคล้าย เน้นความสำคัญของการหาประโยชน์เครื่องมือที่แตกต่างจากสารให้ความหวานจากแหล่งต่าง ๆ3.2 การจัดประเภทของ syrups อากาเว่โดยอินฟราเรดด้านเทคนิคเทคนิคด้าน IR รวมกับข้อมูลตัวแปรพหุใช้วิเคราะห์เป็นวิธีทำลายการกำหนดปริมาณ และcharacterise ตัวอย่างทางชีวภาพ เทคนิคเหล่านี้สามารถให้อย่างรวดเร็วจำนวนข้อมูลเกี่ยวกับตัวอย่างมาก และสำเร็จใช้ในการกำหนดคอมโพเนนต์เช่นคาร์โบไฮเดรตไขมัน วิตามิน กรดอะมิโน โปรตีน และความชื้นใน60657075808590 A10152025303540 C33.544.555.56 Bอากาเว่ข้าวโพดน้ำผึ้งอ้อยอากาเว่ข้าวโพดน้ำตาลน้ำผึ้ง00.511.522.533.544.5 DFig. 1 คุณสมบัติ physicochemical ของที่ธรรมชาติสารให้ความหวาน (A) ของแข็งละลายน้ำทั้งหมด (Brix); (ข) ค่า pH (C) เนื้อหาความชื้น (%M); (D) สี (ทำ 560 nm)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

irudayaraj , 2004 ) ทั้งหมดนี้ถูกเปลี่ยนเป็นโหมดที่มีเก้าจุดส่วนเรียบน
.
2.4.3 . การวิเคราะห์องค์ประกอบหลัก
PCA โดยใช้ซอฟต์แวร์สเปกตรัมการวิเคราะห์เชิงปริมาณ ( เพอร์กินเอลเมอร์ Beaconsfield ,
, UK ) และการตรวจสอบกับสเปกตรัมของสุ่ม
ตัวอย่างที่ไม่ได้ถูกรวมอยู่ในหมู่ผู้ใช้เพื่อสร้างแบบจำลอง
.
2.5 โปรไฟล์ของคาร์โบไฮเดรต และดาวน์โหลดเนื้อหา
.โครมาโตกราฟีแบบชั้นบาง
ส่วนลงตัว 1 จะใส่น้ำเชื่อม โซลูชั่น ( 100 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร  1 ) คือใช้
กับซิลิกาเจล TLC plate ด้วยการสนับสนุนของอะลูมิเนียม โดย TLC plate คือ
พัฒนาในระบบตัวทำละลายของบิวทานอล / โพรพานอล / น้ำ ( Kanaya ,
ชิบะ &ชิโมมูระ , 1978 ) และพ่นด้วยกรดฟอสฟอริคิน / น้ำมันเครื่อง /
3
( คาร์โบไฮเดรต ) สำหรับการถ่ายภาพ แอนเดอร์สัน หลี่ & Li , 2000 ) .
งานวาง .ประสิทธิภาพสูงด้วยการแลกเปลี่ยนแอนไอออนโครมาโทกราฟี

สำคัญการตรวจหาชนิดและปริมาณของคาร์โบไฮเดรตในสารให้ความหวานธรรมชาติ
วิเคราะห์และเชิงปริมาณ โดย hpaec-pad ตามวิธีการที่จัดตั้งขึ้นโดย mellado
มารี โม ก้า และ โลเปซ ( 2012
2013 ) ใน DIONEX ics-3000 โครมาโตกราฟ ( DIONEX Sunnyvale , CA , carbopac
) กับ pa-100 ยามคอลัมน์ ( 4 มม.  50 มม. )
และคอลัมน์ carbopac-pa100 วิเคราะห์ ( 4 มม.  250 มม. )
น้ำเชื่อมเพื่อลดความเข้มข้น 0.2 มล. ต่อ  1 กับ deionised
น้ำ ( ความต้านทานของ 17 MX ) และจากนั้นกรองผ่านเยื่อไนลอน
กับ 0.45-lm รูขุมขนก่อนการฉีด ยี่สิบห้า
microlitres ของแต่ละตัวอย่างที่เจือจาง ฉีดเข้าไปใน hpaec .
คาร์โบไฮเดรตแยกกันโดยใช้การไล่ระดับของโซเดียมอะซิเตต
0 .15 M NaOH ที่ไหล 0.8 มิลลิลิตรต่อนาที  1 และคอลัมน์ที่อุณหภูมิ 25 C .
 ศักยภาพใช้สำหรับตรวจจับชีพจรสำคัญ
คือ E1 , E2 ( 400 MS ) ( 20 ms ) E3 ( 20 ms ) และ e4
( 60 ms ) 0.1 ,  2.0 , 0.6 และ  0.1 V )
3 ผลและการอภิปราย
3.1 . สมบัติทางเคมีและกายภาพของน้ำเชื่อมธรรมชาติ
เรากำหนดพารามิเตอร์ทางกายภาพและทางเคมีของต้น
น้ำเชื่อมและน้ำเชื่อม ( ข้าวโพด , อ้อย , และผึ้ง )

สร้างความแตกต่างของสารให้ความหวานจากธรรมชาติ

ต้นกำเนิดของพวกเขา ปริมาณของแข็งที่ละลายได้ทั้งหมด , ความชื้น , pH , สีสันของธรรมชาติ
สารให้ความหวานมีโดยไม่คำนึงถึงที่มาของธรรมชาติ
สารให้ความหวาน ( รูปที่ 1 ) และปริมาณของแข็งที่ละลายได้ทั้งหมด (  Brix ) มีค่ามาก
คล้ายคลึงกันระหว่างธรรมชาติทั้งหมดน้ำเชื่อม ( รูปที่ 1A )ส่วนต้นน้ำเชื่อม
อยู่ระหว่าง 65 ถึง 79.5  บริกซ์ , ข้าวโพดน้ำเชื่อมมีค่า 76.5
ถึง 77.4  บริกซ์ และอ้อย น้ำเชื่อมมีค่า 69.8 ถึง 80.1
 Brix ; ที่รักอยู่ค่อนข้างสูง ด้วยค่าสูงสุด
ตั้งแต่ 80 ถึง 84  Brix ความชื้น ( % ) มีลักษณะคล้าย
ท่ามกลางบรรดาสารให้ความหวานเช่นกัน ตั้งแต่ 14.4 % ถึง 33 %
( รูปที่ 1A ) น้ำผึ้งได้ระดับความชื้นต่ำสุดตั้งแต่
14.4 % ถึง 18.2 % ในขณะที่ต้นและน้ำตาลน้ำเชื่อมอ้อยมีมาก
คล้ายกันความชื้นระดับ ทั้งหมดธรรมชาติน้ำเชื่อมเล็กน้อยที่เป็นกรดที่มีค่า pH ระหว่าง
3.36 และ 5.20 ( ภาพที่ 1c ) pH ของ
ต้นน้ำเชื่อมมีค่า pH 3.66 Ph 5.23 .
syrups ธรรมชาติมีหลากหลายสีไม่ว่า
ต้นกำเนิดของพวกเขา ส่วนต้นน้ำเชื่อมให้ช่วงกว้างของการดูดกลืนแสง
( 0.017 – 3956 ) และมีความหลากหลายของสีประเภท
จากน้ำสีขาวถึงสีเหลืองเข้ม ( รูป 1D ) ข้าวโพดน้ำเชื่อม
มีเพียงน้ำสีขาวสี ( ค่า < 0.0945 )
ที่รักมีสีตั้งแต่น้ำสีขาวแสงอำพัน
( การดูดกลืนแสงจาก 0.034 จะ 0.652 ) อ้อย syrups แสดง
สีมืด ตั้งแต่สีเหลืองเป็นสีเหลืองเข้ม ( ค่า

จาก 1.471 เพื่อ 3.956 )การเปรียบเทียบคุณสมบัติของต้นน้ำเชื่อมจาก A .
salmiana ( as22 – as25 ) เทียบกับบรรดาของน้ำเชื่อมอีกต้น
; อดีตที่มีค่าของแข็งที่ละลายได้ทั้งหมด เนื้อหา
ความชื้นสูงที่สุด และมืดที่สุดสีในหมู่

โดยรวมต้นตัวอย่าง คุณสมบัติทางกายภาพและทางเคมีของสารให้ความหวานธรรมชาติ
คือ คล้ายกันมาก เน้นความสำคัญของการหาประโยชน์
เครื่องมือที่จะแยกความแตกต่างของสารให้ความหวานจากแหล่งที่แตกต่างกัน .
2 . การจำแนกประเภทของต้นน้ำเชื่อมโดยเทคนิคอินฟราเรดสเปกโทรสโกปีอินฟราเรดสเปกโทรสโกปี

เทคนิครวมกับการวิเคราะห์ข้อมูลหลายตัวแปรได้

ชันและวิธีใหม่ที่จะหาตัวอย่างทางชีวภาพ เทคนิคเหล่านี้สามารถอย่างรวดเร็วมีจำนวนมากของข้อมูลเกี่ยวกับ

ตัวอย่างและได้รับการใช้ประสบความสำเร็จในการตรวจสอบส่วนประกอบเช่นคาร์โบไฮเดรต
ไขมัน , วิตามิน , กรดอะมิโน , โปรตีน , และความชื้นใน 60




65 70 75 80 85 90 เป็น





10 15 20 25 30 35 40 C



3
3
4

5 5

6 b
ต้น 5.5 น้ำผึ้งข้าวโพดอ้อยต้นอ้อยน้ำผึ้งข้าวโพด
0
0
1
1
2
2
3
3
4
2 D
รูปที่ 1 คุณสมบัติทางกายภาพและทางเคมีของสารให้ความหวานธรรมชาติ ; ( ) ของแข็งที่ละลายได้ทั้งหมด (  Brix ) ; ( b ) M ;( c ) ความชื้น ( % ) ( D ) สี ( 560 nm )