SSF of steam exploded duckweed (1,

SSF of steam exploded duckweed (1, 5 10, 20% w/v) was performed
in glass universal bottles. The reaction solution (10 mL)
contained: substrate (1%, 5%, 10%, 20% w/v), 10% (v/v with
8.0  107 cells mL1) of S. cerevisiae NCYC2826, CTec 2 (20 U or
0.87 FPU g1 substrate) + BG (2 U g1 substrate) and Nitrogen base
(6.9 g L1) (Elliston et al., 2013). The concentration of enzymes and
nitrogen base were increased in proportion to the substrate concentration.
The yeast inoculum comprised 10% (v/v) of final fermentation
solution. The yeast titre was further concentrated by
4, 10, 20 and 50 times as part of studies into the effect of yeast
inoculum. The SE slurries (20% w/w DM) were separately inoculated
with concentrated YM cultured yeast: 4 times
(3.2  108 cells mL1), 10 times (8.0  108 cells mL1), 50 times
(4.0  109 cells mL1) of the standard inoculum and SE medium
cultured yeast at a basal concentration of 1.8  107 cells mL1,
and concentrated 2 times (3.6  107 cells mL1), 4 times
(7.2  107 cells mL1) and 20 times (3.6  108 cells mL1) of the
norm. When adding concentrated inocula, the enzyme cocktail
and nitrogen base were proportionally added to bring the volume
up to 10 mL. Substrate blanks were prepared as a control to detect
fermentable sugars and ethanol from YM solution or enzyme
preparations and subtracted from the sample readings. SSF samples
were incubated over 72 h at 25 C with moderate agitation
(120 rpm). Strong agitation (300 rpm) was used in one experiment
to assess the effect of agitation on ethanol yield from a high substrate
concentration (20% w/w). Aliquots (2 mL) of fermented samples
were transferred to screw-cap tubes and were heated at
100 C for 5 min to terminate the SSF. The resulting samples were
centrifuged and the supernatants were assessed for ethanol and
fermentation inhibitors using HPLC methods (below).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

SSF ของไอน้ำกระจาย duckweed (1, 5 10, 20% w/v) มีดำเนินการในขวดแก้วสากล โซลูชั่นปฏิกิริยา (10 มล.)อยู่: พื้นผิว (1%, 5%, 10%, 20% w/v), 10% (v/v มีเซลล์ 8.0 107 mL 1) ของ S. cerevisiae NCYC2826, CTec 2 (20 U หรือพื้นผิว 0.87 FPU g 1) + BG (2 U g 1 พื้นผิว) และไนโตรเจนเบส(6.9 g L 1) (Elliston et al., 2013) ความเข้มข้นของเอนไซม์ และไนโตรเจนที่ฐานได้เพิ่มสัดความเข้มข้นของพื้นผิวInoculum ยีสต์ประกอบด้วย 10% (v/v) ของการหมักขั้นสุดท้ายการแก้ปัญหา Titre ยีสต์เข้มข้นโดยเพิ่มเติมครั้งที่ 4, 10, 20 และ 50 เป็นส่วนหนึ่งของการศึกษาผลของยีสต์inoculum แยกต่างหากได้ inoculated slurries SE (20% w/w DM)มีเข้มข้น YM อ่างยีสต์: 4 ครั้ง(เซลล์ 3.2 108 mL 1), 10 ครั้ง (เซลล์ 8.0 108 mL 1), 50 ครั้ง(เซลล์ 4.0 109 mL 1) ของมาตรฐาน inoculum และสื่อตะวันออกเฉียงใต้ยีสต์อ่างที่เข้มข้นโรคของเซลล์ 1.8 107 mL 1และเข้มข้น 2 เท่าเวลา (เซลล์ 3.6 107 mL 1), 4(เซลล์ 7.2 107 mL 1) และ ครั้งที่ 20 (เซลล์ 3.6 108 mL 1) ของการปกติ เมื่อเพิ่มเข้มข้น inocula เอนไซม์ค็อกเทลและมีเพิ่มไนโตรเจนฐานนำปริมาณตามสัดส่วนถึง 10 mL ช่องว่างพื้นผิวที่เตรียมเป็นตัวควบคุมเพื่อตรวจสอบfermentable น้ำตาลและเอทานอลจากโซลูชัน YM หรือเอนไซม์เตรียม และหักออกจากอ่านตัวอย่าง ตัวอย่าง SSFมี incubated กว่า 72 h ที่ 25 C มีอาการกังวลต่อปานกลาง(120 รอบต่อนาที) อาการกังวลต่อแรง (300 rpm) ถูกใช้ในการทดลองหนึ่งการประเมินผลของอาการกังวลต่อบนผลผลิตเอทานอลจากพื้นผิวสูงความเข้มข้น (20% w/w) Aliquots (2 mL) หมักอย่างถูกโอนย้ายไปสกรูฝาท่อ และมีความร้อนที่C 100 สำหรับ 5 นาทีไปสิ้นสุด SSF ตัวอย่างผลลัพธ์ที่ได้centrifuged และ supernatants ถูกประเมินสำหรับเอทานอล และหมัก inhibitors ที่ใช้วิธี HPLC (ด้านล่าง)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

SSF ของไอน้ำระเบิดแหน (1, 5 10 20% w / v)
ที่ได้ดำเนินการในขวดแก้วสากล วิธีการแก้ปัญหาการเกิดปฏิกิริยา (10 มิลลิลิตร)
มี (ปริมาตร / ปริมาตรที่มีพื้นผิว (1%, 5%, 10%, 20% w / v),
10%? 8.0 107 มิลลิลิตรเซลล์ 1) เอส NCYC2826 cerevisiae, CTEC 2 (20 U หรือ
0.87 FPU กรัม 1 พื้นผิว) + BG (2 U กรัม 1 พื้นผิว) และฐานไนโตรเจน
(6.9 กรัม L? 1) (Elliston et al., 2013)
ความเข้มข้นของเอนไซม์และฐานไนโตรเจนเพิ่มขึ้นในสัดส่วนที่ความเข้มข้นของสาร.
หัวเชื้อยีสต์ประกอบด้วย 10% (v / v)
ของการหมักสุดท้ายการแก้ปัญหา titre
ยีสต์เข้มข้นต่อไปโดยที่4, 10, 20 และ 50
ครั้งเป็นส่วนหนึ่งของการศึกษาลงไปในผลกระทบของยีสต์เชื้อ slurries SE (20% w / w การ DM)
เป็นเชื้อที่แยกจากกันด้วยยีสต์เลี้ยงเข้มข้นYM: 4 ครั้ง
(? 3.2 108 เซลล์มิลลิลิตร 1), 10 ครั้ง (? 8.0 108 เซลล์มิลลิลิตร 1), ครั้งที่ 50
(4.0 109 เซลล์มิลลิลิตร 1) ของเชื้อที่ได้มาตรฐานและ SE
กลางเพาะเลี้ยงยีสต์ที่มีความเข้มข้นพื้นฐาน1.8? 107 มิลลิลิตรเซลล์? 1,
และเข้มข้น 2 ครั้ง (3.6? 107 มิลลิลิตรเซลล์ 1) ครั้งที่ 4
(7.2? 107 มิลลิลิตรเซลล์? 1) และ 20 ครั้ง (3.6? 108 มิลลิลิตรเซลล์? 1)
ของบรรทัดฐาน เมื่อมีการเพิ่มความเข้มข้น inocula
ค็อกเทลเอนไซม์และฐานไนโตรเจนถูกเพิ่มตามสัดส่วนที่จะนำปริมาณถึง
10 มิลลิลิตร ช่องว่างของพื้นผิวได้จัดทำขึ้นเป็นตัวควบคุมการตรวจสอบน้ำตาลหมักเอทานอลจากสารละลาย YM หรือเอนไซม์เตรียมและหักออกจากการอ่านตัวอย่าง ตัวอย่าง SSF ถูกบ่มในช่วง 72 ชั่วโมงที่ 25 องศาเซลเซียสมีความปั่นป่วนในระดับปานกลาง(120 รอบต่อนาที) กวนที่แข็งแกร่ง (300 รอบต่อนาที) ที่ใช้ในการทดลองเพื่อประเมินผลกระทบของความปั่นป่วนต่อผลผลิตเอทานอลจากพื้นผิวสูงเข้มข้น(20% w / w) aliquots (2 มิลลิลิตร) ของกลุ่มตัวอย่างหมักถูกโอนไปยังท่อสกรูหมวกและถูกความร้อนที่100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีในการยุติ SSF กลุ่มตัวอย่างที่ส่งผลให้ได้รับการหมุนเหวี่ยงและ supernatants ถูกประเมินเอทานอลและสารยับยั้งการหมักโดยใช้วิธีHPLC (ด้านล่าง)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

SSF ไอน้ำระเบิดแหน ( 1 , 5 , 10 , 20 % w / v ) กำหนด
แก้วสากล ขวด ปฏิกิริยาสารละลาย ( 10 ml ) ที่อยู่ : (
( 1% , 5% , 10% , 20% w / v ) 10 % ( ปริมาตร / ปริมาตรกับ
8.0  107 เซลล์  1 มล. ) ของ S . cerevisiae ncyc2826 ctec , 2 ( 20 U หรือ
0.87 FPU กรัม  1 แผ่น ) BG 2 u g  1 แผ่น ) และไนโตรเจน ( 6.9 กรัมต่อลิตรฐาน
 ( 1 ) เอลลิสต้อน et al . , 2013 ) ความเข้มข้นของเอนไซม์และ
ฐานไนโตรเจนเพิ่มขึ้นในสัดส่วนที่ความเข้มข้นสารอาหาร .
ยีสต์เชื้อจำนวน 10% ( v / v ) ของสารละลายหมัก
สุดท้าย ยีสต์ titre ยังเข้มข้นโดย
4 , 10 , 20 และ 50 เท่าเป็นส่วนหนึ่งของการศึกษาผลของเชื้อยีสต์

ความเร็ว slurries ( 20% w / w DM ) ถูกแยกเชื้อด้วยการเพาะเลี้ยงยีสต์เข้มข้น

: 4 ครั้ง ( 3.2  108 เซลล์  1 มิลลิลิตร )10 ครั้ง ( 8.0  108 เซลล์ ml  1 ) , 50 ครั้ง
( 4.0  109 เซลล์  1 มล. ) ของเชื้อมาตรฐานและขนาดกลาง
เพาะเลี้ยงยีสต์เซความเข้มข้น ( 1.8  107 เซลล์ ml  1
และเข้มข้น 2 เท่า ( 3.6  107 เซลล์ ml  1 ) 4 ครั้ง
( 7.2  107 เซลล์  1 มิลลิลิตร ) และครั้งที่ 20 ( 3.6  108 เซลล์ ml  1 ) ของ
ม เมื่อเพิ่มความเข้มข้นของเอนไซม์ inocula
, ค็อกเทลฐานไนโตรเจน และเพิ่มสัดส่วนให้ถึง 10 ml ( ปริมาณ
ว่างเตรียมเป็นตัวควบคุมเพื่อตรวจน้ำตาลและเอทานอลจาก
กรัม ) หรือการเตรียมสารละลายเอนไซม์
และหักออกจากตัวอย่างการอ่าน . SSF ตัวอย่าง
ถูกบ่มกว่า 72 ชั่วโมง ที่ 25 องศาเซลเซียส 
การกวนปานกลาง ( 120 รอบต่อนาที ) ไม่แข็งแรง ( 300 รอบต่อนาที ) ถูกใช้ในการทดลอง
เพื่อศึกษาผลของการกวนที่มีผลต่อผลผลิตเอทานอลความเข้มข้นสูงจากพื้นผิว
( 20% w / w ) เฉยๆ ( 2 มล. ) จากตัวอย่าง
ถูกย้ายสกรูฝาท่อและได้รับอุณหภูมิ 100 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที
 ยุติ SSF . ส่งผลให้จำนวน
ไฟฟ้าและ supernatants ประเมินจากเอทานอลและการหมักโดยใช้วิธี HPLC
inhibitors ( ด้านล่าง )