- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
In pH-adjusted samples, the adheren
In pH-adjusted samples, the adherence of tested bacteria was
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
0/5000
In pH-adjusted samples, the adherence of tested bacteria was
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
การแปล กรุณารอสักครู่..
In pH-adjusted samples, the adherence of tested bacteria was
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
very low during all incubation periods (Fig. 3). However, in all pHunadjusted
samples of B. licheniformis, OD values of biofilms
increased rapidly after 10e12 days (Fig. 3A, B and C) while pH
decreased to about 5.7 (Fig. 1A, B and C). The same phenomenon
was seen for L. paracasei, with an increase of OD values after 8e12
days (Fig. 3D, E and F) and a decrease of pH to 5.5 (Fig. 1D, E and F).
These low pH values might cause milk protein coagulation which
can trap bacterial cells into the precipitates and make thicker biofilms.
Lowering pH can lead to the dissolution of calcium phosphate,
until, at the isoelectric point (pH ¼ 4.6), phosphate is almost
dissolved and caseins are precipitated (Fox & McSweeney, 1998).
Furthermore, biofilm formation might be enhanced by low pH
through its effect on quorum sensing (cell-to-cell signaling). There
is a general concept that changes in pH may influence many
physiological parameters which trigger numerous signaling
substances. These substances could contribute to the overall acid
tolerance response and promote biofilm formation, which is known
as an adaptation to external stressful environments. Quorum
sensing was intensively studied to regulate biofilm formation, but
signaling substances are not yet identified. The detailed role of pH
in influencing quorum sensing is still unclear. In a recent research
article on Salmonella typhimurium, pH was found to affect the
activity of two tested agfD (thin aggregative fimbriae) promoters
responsible for the regulation of multicellular and aggregative
behavior of this species (Gerstel & Romling, 2001).
Fig. 3 also shows that higher nutrient levels resulted in higher
maximum OD values of adhesion in both tested strains. Higher
nutrient levels are known to yield higher bacterial cell counts in
suspension. This could not only give cells more chances to interact
with other cells and with the surface; but could also lead to a more
rapid depletion of nutrients in solution, higher production of acid
and stronger competition among cells. These stresses were prolonged
and could affect quorum sensing of cells in the positive way
to form biofilms. Nutrient starvation has been demonstrated to
increase the expression of agfD promoters relating to biofilm
formation of S. typhimurium. The depletion of nitrogen and phosphate
compounds gave signals to switch on agfD promoters in S.
typhimurium (Gerstel & Romling, 2001).
4. Conclusions
The control of environmental pH at neutral range was proven to
have the ability to prevent milk coagulation and reduce long-term
biofilm formation in milk. In dairy farms where bacteria have many
chances to develop on milk residues, pH will decrease and biofilms
will form, as observed in this study. To avoid this, pH control using
alkalis is highly advisable. Powdered lime, a very inexpensive alkali
and usually used for scattering around livestock yards and lots, has
many positive effects such as avoiding the decrease of environmental
pH and reducing bacterial biofilms. In addition, in-time
washing and frequent cleaning are also recommended.
Acknowledgments
The authors wish to acknowledge JICA and JICE for sponsorships,
Dr. Takuma Genkawa and all members of the Laboratory of Postharvest
Science (Kyushu University) for immense supports and
valuable discussion, Mr. Brian Waters from the University of
Georgia for grammatical check of the manuscript.
References
Barnes, L. M., Lo, M. F., Adams, M. R., & Chamberlain, A. H. L. (1999). Effect of milk
proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Applied and Environmental
Microbiology, 65, 4543e4548.
Boor, K. J., & Murphy, S. C. (2002). Microbiology of market milks. In R. K. Robinson
(Ed.), Dairy microbiology handbook (pp. 91e122). John Wiley & Sons, Inc.
Burmolle, M., Webb, J. S., Rao, D., Hansen, L. H., Sorensen, S. J., & Kjelleberg, S.
(2006). Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial
agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies
biofilms. Applied and Environmental Microbiology, 72, 3916e3923.
Carpentier, B., & Cerf, O. (1993). Biofilms and their consequences, with particular
reference to hygiene in the food industry. Journal of Applied Bacteriology, 75,
499e511.
Corcoran, B. M., Stanton, C., Fitzgerald, G. F., & Ross, R. P. (2005). Survival of probiotic
lactobacilli in acidic environments is enhanced in the presence of metabolizable
sugars. Appl Environ Microbiol, 71, 3060e3067.
Crielly, E. M., Logan, N. A., & Anderton, A. (1994). Studies on the Bacillus flora of milk
and milk products. Journal of Applied Microbiology, 77, 256e263
การแปล กรุณารอสักครู่..
ในการปรับ pH ของตัวอย่างทดสอบแบคทีเรีย
น้อยมากในระหว่างระยะเวลาทั้งหมด ( รูปที่ 3 ) อย่างไรก็ตาม ใน phunadjusted
ตัวอย่าง B . licheniformis ค่า OD ของไบโอฟิล์ม
เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็ว หลังจาก 10e12 วัน ( รูปที่ 3A , B และ C ) ในขณะที่ pH
ลดลงประมาณ 5 ( รูปที่ 1A , B และ C )
ปรากฏการณ์เดียวกันเห็น L . paracasei , กับการเพิ่มขึ้นของ OD หลัง 8e12
วัน ( ภาพ 3DE และ F ) และการลดลงของ pH 5.5 ( ภาพ 1D , E และ F )
ค่า pH ต่ำเหล่านี้อาจก่อให้เกิดโปรตีนนมตกตะกอน
สามารถดักจับเซลล์แบคทีเรียซึ่งเป็นตะกอนและทำให้หนาขึ้น ไบโอฟิล์ม .
ลด pH สามารถนำไปสู่การสลายตัวของแคลเซียมฟอสเฟต ,
จนกว่าที่จุดไอโซอิเล็กทริก ( ¼ pH 4.6 ) , ฟอสเฟตเกือบ
ละลายและตระหนกตกใจอยู่ที่ตกตะกอน ( สุนัขจิ้งจอก& mcsweeney , 1998 ) .
นอกจากนี้การพัฒนาฟิล์มอาจถูกเพิ่มโดย
pH ต่ำผ่านผลกระทบต่อความต้องการเทคโนโลยีการ ( เซลล์เพื่อการส่งสัญญาณของเซลล์ ) มี
เป็นแนวคิดทั่วไปที่อาจมีอิทธิพลต่อการเปลี่ยนแปลง pH หลายทางสรีรวิทยาซึ่งเรียกสัญญาณมากมาย
สาร สารเหล่านี้สามารถมีส่วนร่วมโดยการส่งเสริมการสร้างความอดทนและกรด
ฟิล์มซึ่งเป็นที่รู้จักกันขณะที่การปรับตัวเพื่อสภาพแวดล้อมที่เคร่งเครียด ภายนอก การตรวจจับองค์ประชุม
และเรียนเพื่อควบคุมการสร้างไบโอฟิล์ม แต่ยังไม่ได้มีการระบุสาร
. รายละเอียดของบทบาทของ PH
มีอิทธิพลต่อความต้องการเทคโนโลยีการยังไม่ชัดเจน ในบทความล่าสุดในการวิจัย
Salmonella Typhimurium , pH พบว่ามีผลต่อ
กิจกรรมสองทดสอบ agfd ( บางฟิมเบรีย aggregative ) โปรโมเตอร์
รับผิดชอบในการควบคุมและมี aggregative พฤติกรรมของปลาชนิดนี้ ( อนเกอร์ ทล& romling , 2001 ) .
รูปที่ 3 พบว่าสูงกว่าระดับธาตุอาหารให้สูงกว่าค่า OD
สูงสุดทั้งในการตรวจสอบสายพันธุ์ สูงกว่า
ระดับธาตุอาหารว่าผลผลิตสูงกว่าแบคทีเรียเซลล์นับ
ระงับ นี้จะไม่เพียง แต่ให้เซลล์มีโอกาสโต้ตอบ
กับเซลล์อื่น ๆและด้วยพื้นผิว แต่ยังอาจนำไปสู่การสูญเสียของสารอาหารมากขึ้น
อย่างรวดเร็วในการแก้ปัญหาการผลิตที่สูงของกรด
และแข็งแรงการแข่งขันระหว่างเซลล์ ความเครียดเหล่านี้นาน
และอาจมีผลต่อความต้องการเทคโนโลยีการของเซลล์ในทาง
บวกกับฟอร์มไบโอฟิล์ม . การอดอาหารได้แสดง
เพิ่มการแสดงออกของโปรโมเตอร์ที่เกี่ยวข้องกับฟิล์ม
agfdการก่อตัวของ S . typhimurium . การสูญเสียของไนโตรเจนและฟอสเฟต
สารประกอบให้สัญญาณสลับกับ agfd โปรโมเตอร์ใน S .
typhimurium ( อนเกอร์ ทล& romling , 2001 ) .
4 สรุป
การควบคุมสิ่งแวดล้อม pH ที่เป็นกลางคือช่วงพิสูจน์
มีความสามารถที่จะป้องกันการแข็งตัว และลดการสร้างไบโอฟิล์มระยะยาว
นมในนม ในฟาร์มโคนมที่แบคทีเรียมีหลาย
โอกาสที่จะพัฒนาบนนมตกค้าง , pH จะลดลงและไบโอฟิล์ม
จะฟอร์มที่พบในการศึกษานี้ เพื่อหลีกเลี่ยงนี้โดยใช้ด่าง pH
ขอแนะนํา ผงมะนาว ,
- ไม่แพงมากและมักจะใช้สำหรับการกระจายรอบหลา ปศุสัตว์ และมาก ได้ผลในเชิงบวกมากมาย เช่น หลีกเลี่ยงการลดลงของ pH สิ่งแวดล้อม
และลดแบคทีเรียไบโอฟิล์ม . นอกจากนี้เวลาล้างและทำความสะอาดบ่อยด้วย
ขอบคุณที่แนะนำ ผู้เขียนต้องการที่จะรับทราบและ JICA jice สำหรับการสนับสนุน
คุณหมอทาคุมะ genkawa และสมาชิกของปฏิบัติการหลังการเก็บเกี่ยว
วิทยาศาสตร์ ( จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย ) สำหรับการสนับสนุนอันยิ่งใหญ่และ
สนทนามีคุณค่า คุณไบรอัน น้ำจากมหาวิทยาลัยจอร์เจียสำหรับการตรวจสอบไวยากรณ์ของ
ต้นฉบับ อ้างอิง
บาร์น ล. ม.ดูเถิด เอ็ม เอฟ อดัม เอ็ม อาร์ &แชมเบอร์เลน , A . H , L . ( 1999 ) ผลของโปรตีนในนม
ยึดติดของแบคทีเรียกับผิวเหล็กสแตนเลส ประยุกต์และสิ่งแวดล้อม
จุลชีววิทยา , 65 , 4543e4548 .
คนชั้นต่ำ เค เจ &เมอร์ฟี่ เอส. ซี. ( 2002 ) จุลชีววิทยาของนม ตลาด ใน R . K . โรบินสัน
( ed . ) , ผลิตภัณฑ์นมจุลชีววิทยา 2 . 91e122 ) จอห์นนิ่ง&บุตรชาย , Inc .
burmolle เมตร , เว็บบ์ เจ เอส รา , D . , Hansen Lเอช. โซเรนเซ่น เอส เจ & kjelleberg , S .
( 2006 ) เพิ่มการสร้างไบโอฟิล์มและเพิ่มความต้านทานให้กับตัวแทน Antimicrobial
และการบุกรุกแบคทีเรียที่เกิดจากปฏิกิริยาที่ multispecies
ไบโอฟิล์ม . ประยุกต์และสิ่งแวดล้อมจุลชีววิทยา , 72 , 3916e3923 .
พรุสต์ บี & Cerf , O . ( 1993 ) ไบโอฟิล์มและผลของพวกเขาโดย
อ้างอิงเพื่อสุขอนามัยในอุตสาหกรรมอาหารวารสารวิชาแบคทีเรียวิทยา , 75 , 499e511
.
Corcoran พ. ม. , สแตนตัน , C , G . F . ฟิตซ์เจอรัลด์ & Ross , R . P . ( 2005 ) การอยู่รอดของโปรไบโอติกแลคโตบาซิลลัสในสภาพแวดล้อมที่เป็นกรด
เพิ่มในการแสดงตนของน้ำตาลได้
ประสิทธิภาพสูงสุดของสิ่งแวดล้อม ธนิดา เหรียญทอง B Sc 71 , 3060e3067 .
crielly อีเอ็ม โลแกน เอ็น เอ & แอนเดอร์ตัน , A . ( 1994 ) การศึกษาในพืชของผลิตภัณฑ์นม
และนมวารสารสาขาจุลชีววิทยาประยุกต์ 256e263 , 77 ,
น้อยมากในระหว่างระยะเวลาทั้งหมด ( รูปที่ 3 ) อย่างไรก็ตาม ใน phunadjusted
ตัวอย่าง B . licheniformis ค่า OD ของไบโอฟิล์ม
เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็ว หลังจาก 10e12 วัน ( รูปที่ 3A , B และ C ) ในขณะที่ pH
ลดลงประมาณ 5 ( รูปที่ 1A , B และ C )
ปรากฏการณ์เดียวกันเห็น L . paracasei , กับการเพิ่มขึ้นของ OD หลัง 8e12
วัน ( ภาพ 3DE และ F ) และการลดลงของ pH 5.5 ( ภาพ 1D , E และ F )
ค่า pH ต่ำเหล่านี้อาจก่อให้เกิดโปรตีนนมตกตะกอน
สามารถดักจับเซลล์แบคทีเรียซึ่งเป็นตะกอนและทำให้หนาขึ้น ไบโอฟิล์ม .
ลด pH สามารถนำไปสู่การสลายตัวของแคลเซียมฟอสเฟต ,
จนกว่าที่จุดไอโซอิเล็กทริก ( ¼ pH 4.6 ) , ฟอสเฟตเกือบ
ละลายและตระหนกตกใจอยู่ที่ตกตะกอน ( สุนัขจิ้งจอก& mcsweeney , 1998 ) .
นอกจากนี้การพัฒนาฟิล์มอาจถูกเพิ่มโดย
pH ต่ำผ่านผลกระทบต่อความต้องการเทคโนโลยีการ ( เซลล์เพื่อการส่งสัญญาณของเซลล์ ) มี
เป็นแนวคิดทั่วไปที่อาจมีอิทธิพลต่อการเปลี่ยนแปลง pH หลายทางสรีรวิทยาซึ่งเรียกสัญญาณมากมาย
สาร สารเหล่านี้สามารถมีส่วนร่วมโดยการส่งเสริมการสร้างความอดทนและกรด
ฟิล์มซึ่งเป็นที่รู้จักกันขณะที่การปรับตัวเพื่อสภาพแวดล้อมที่เคร่งเครียด ภายนอก การตรวจจับองค์ประชุม
และเรียนเพื่อควบคุมการสร้างไบโอฟิล์ม แต่ยังไม่ได้มีการระบุสาร
. รายละเอียดของบทบาทของ PH
มีอิทธิพลต่อความต้องการเทคโนโลยีการยังไม่ชัดเจน ในบทความล่าสุดในการวิจัย
Salmonella Typhimurium , pH พบว่ามีผลต่อ
กิจกรรมสองทดสอบ agfd ( บางฟิมเบรีย aggregative ) โปรโมเตอร์
รับผิดชอบในการควบคุมและมี aggregative พฤติกรรมของปลาชนิดนี้ ( อนเกอร์ ทล& romling , 2001 ) .
รูปที่ 3 พบว่าสูงกว่าระดับธาตุอาหารให้สูงกว่าค่า OD
สูงสุดทั้งในการตรวจสอบสายพันธุ์ สูงกว่า
ระดับธาตุอาหารว่าผลผลิตสูงกว่าแบคทีเรียเซลล์นับ
ระงับ นี้จะไม่เพียง แต่ให้เซลล์มีโอกาสโต้ตอบ
กับเซลล์อื่น ๆและด้วยพื้นผิว แต่ยังอาจนำไปสู่การสูญเสียของสารอาหารมากขึ้น
อย่างรวดเร็วในการแก้ปัญหาการผลิตที่สูงของกรด
และแข็งแรงการแข่งขันระหว่างเซลล์ ความเครียดเหล่านี้นาน
และอาจมีผลต่อความต้องการเทคโนโลยีการของเซลล์ในทาง
บวกกับฟอร์มไบโอฟิล์ม . การอดอาหารได้แสดง
เพิ่มการแสดงออกของโปรโมเตอร์ที่เกี่ยวข้องกับฟิล์ม
agfdการก่อตัวของ S . typhimurium . การสูญเสียของไนโตรเจนและฟอสเฟต
สารประกอบให้สัญญาณสลับกับ agfd โปรโมเตอร์ใน S .
typhimurium ( อนเกอร์ ทล& romling , 2001 ) .
4 สรุป
การควบคุมสิ่งแวดล้อม pH ที่เป็นกลางคือช่วงพิสูจน์
มีความสามารถที่จะป้องกันการแข็งตัว และลดการสร้างไบโอฟิล์มระยะยาว
นมในนม ในฟาร์มโคนมที่แบคทีเรียมีหลาย
โอกาสที่จะพัฒนาบนนมตกค้าง , pH จะลดลงและไบโอฟิล์ม
จะฟอร์มที่พบในการศึกษานี้ เพื่อหลีกเลี่ยงนี้โดยใช้ด่าง pH
ขอแนะนํา ผงมะนาว ,
- ไม่แพงมากและมักจะใช้สำหรับการกระจายรอบหลา ปศุสัตว์ และมาก ได้ผลในเชิงบวกมากมาย เช่น หลีกเลี่ยงการลดลงของ pH สิ่งแวดล้อม
และลดแบคทีเรียไบโอฟิล์ม . นอกจากนี้เวลาล้างและทำความสะอาดบ่อยด้วย
ขอบคุณที่แนะนำ ผู้เขียนต้องการที่จะรับทราบและ JICA jice สำหรับการสนับสนุน
คุณหมอทาคุมะ genkawa และสมาชิกของปฏิบัติการหลังการเก็บเกี่ยว
วิทยาศาสตร์ ( จุฬาลงกรณ์มหาวิทยาลัย ) สำหรับการสนับสนุนอันยิ่งใหญ่และ
สนทนามีคุณค่า คุณไบรอัน น้ำจากมหาวิทยาลัยจอร์เจียสำหรับการตรวจสอบไวยากรณ์ของ
ต้นฉบับ อ้างอิง
บาร์น ล. ม.ดูเถิด เอ็ม เอฟ อดัม เอ็ม อาร์ &แชมเบอร์เลน , A . H , L . ( 1999 ) ผลของโปรตีนในนม
ยึดติดของแบคทีเรียกับผิวเหล็กสแตนเลส ประยุกต์และสิ่งแวดล้อม
จุลชีววิทยา , 65 , 4543e4548 .
คนชั้นต่ำ เค เจ &เมอร์ฟี่ เอส. ซี. ( 2002 ) จุลชีววิทยาของนม ตลาด ใน R . K . โรบินสัน
( ed . ) , ผลิตภัณฑ์นมจุลชีววิทยา 2 . 91e122 ) จอห์นนิ่ง&บุตรชาย , Inc .
burmolle เมตร , เว็บบ์ เจ เอส รา , D . , Hansen Lเอช. โซเรนเซ่น เอส เจ & kjelleberg , S .
( 2006 ) เพิ่มการสร้างไบโอฟิล์มและเพิ่มความต้านทานให้กับตัวแทน Antimicrobial
และการบุกรุกแบคทีเรียที่เกิดจากปฏิกิริยาที่ multispecies
ไบโอฟิล์ม . ประยุกต์และสิ่งแวดล้อมจุลชีววิทยา , 72 , 3916e3923 .
พรุสต์ บี & Cerf , O . ( 1993 ) ไบโอฟิล์มและผลของพวกเขาโดย
อ้างอิงเพื่อสุขอนามัยในอุตสาหกรรมอาหารวารสารวิชาแบคทีเรียวิทยา , 75 , 499e511
.
Corcoran พ. ม. , สแตนตัน , C , G . F . ฟิตซ์เจอรัลด์ & Ross , R . P . ( 2005 ) การอยู่รอดของโปรไบโอติกแลคโตบาซิลลัสในสภาพแวดล้อมที่เป็นกรด
เพิ่มในการแสดงตนของน้ำตาลได้
ประสิทธิภาพสูงสุดของสิ่งแวดล้อม ธนิดา เหรียญทอง B Sc 71 , 3060e3067 .
crielly อีเอ็ม โลแกน เอ็น เอ & แอนเดอร์ตัน , A . ( 1994 ) การศึกษาในพืชของผลิตภัณฑ์นม
และนมวารสารสาขาจุลชีววิทยาประยุกต์ 256e263 , 77 ,
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- พอใจแล้วในตอนนี้
- In addition, these recent prospect have
- The fatty acid nomenclature used was des
- งานลอยกระทง
- คุณโกหกฉัน ว่าคุณมีอายุ 29
- ระบบราชการจึงเป็นระบบที่มีลักษณะพิเศษ ข้
- ฉันรบกวนคุณหรือเปล่า
- คุณต้องการอะไร
- ปรับปรุงตัวเอง
- I stay calm and peace in the world.
- ฝันดีเช่นกัน
- ดึกมาก เหงามาก
- คุณทานอะไรหรือยัง
- หลอดยาสีฟันที่ใส่เฮโรอีน
- Although we had known for three years, b
- Click the button
- but i look that it's normal
- Goodnight Sweetheart
- Give me your line I D
- In pH-adjusted samples, the adherence of
- Occupational ExposuresInhalation and der
- I'll be quiet as you would do with me. B
- Width
- ฉันสบายดี
