- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2. Experimental2.1. SamplesThe 28 h
2. Experimental
2.1. Samples
The 28 honey samples used in this study were of the following
botanical types: 5 from eucalyptus (Eucalyptus calmadulensis
Denhn), 3 from citrus (Citrus spp.), 3 from asphodel (Asphodelus
microcarpus Salzm.), 3 from sulla (Hedysarium coronarium L.), 3
from thistle (Galactites tomentosa Moench), 3 from strawberry-tree
(Arbutus unedo L.), 2 from lavender (Lavandula spp.), 2 from acacia
(Robinia pseudacacia L.), and the last four from linden (Tilia spp.),
heather (Erica arborea L.), rosemary (Rosmarinus officinalis L.) and
multifloral, respectively. Except for linden and acacia honeys (all
from northern Italy), the remaining samples were obtained from
local beekeepers (Sardinia, Italy). The attribution of the botanical
origin for unifloral honey was confirmed by melissopalinological
analysis [14]. All samples were stored at 4 ◦C from the time immediately
following their extraction from the honeycomb to the time
of their analysis. Prior to each analytical determination, each sample
was homogenized for 15 min with an Ultra-turrax mixer mod.
T18 (IKA, Staufen, Germany).
2.2. Chemicals and reagents
All reagents were analytical grade. Riboflavin, d-pantothenic
acid hemicalcium salt, folic acid, nicotinic acid and trifluoroacetic
acid were purchased from Sigma Aldrich (Milan, Italy). l-Ascorbic
acid was obtained from Lancaster (Eastgate White Lund, Morecambe,
England), sodium dihydrogen phosphate and sodium
hydroxide were obtained from Carlo Erba (Milan, Italy). Acetonitrile
(HPLC grade) was purchased from Riedel de Haen (Milan, Italy).
Only ultra pure water, purchased from Merck (Milan, Italy), was
used throughout each phase of the method.
2.3. RP-HPLC equipment
The HPLC equipment consisted of a Series 200 binary pump,
a sampling valve, a 20 L sample loop and a Series 200
UV–vis variable wavelength detector, all from PerkinElmer, Milan
Italy. Separation was performed on an Alltima C18 column
250 mm × 4.6 mm, 5 m particle size (Alltech, Sedriano, Italy) fitted
with a guard cartridge packed with the same stationary phase.
Data were elaborated using Turbochrom Workstation Software
(PerkinElmer, Milan, Italy). Each sample was prepared and injected
in triplicate.
2.4. Standard preparation
The stock standard solution was prepared by weighing in a
100 mL volumetric flask, 10.0 mg of vitamin B2; 25.0 mg of vitamin
B5; 10.0 mg of vitamin B9 and by adding 40 mL of water. Then,
4 mL of NaOH were introduced. After complete dissolution, 50 mL of
phosphate buffer 1 M (pH = 5.5), 10.0 mg of vitamin B3 and 10.0 mg
of vitamin C were added, and the solution was topped up to the
mark with water. The standard solution was kept in the dark at
4 ◦C and was prepared fresh daily.
2.5. Sample preparation
10 g of homogenized honey were weighed and dissolved in
10 mL of ultra pure water. Then, 1 mL of NaOH 2 M (in order to favor
the complete solubilization of the honey) and 12.5 mL of phosphate
buffer 1 M (pH = 5.5) were added, and the solution was topped up
to the mark with ultra pure water in a 25 mL volumetric flask. Sample
solutions were injected through a PVDF (13 mm and 0.45 m)
model 6722 filter from Alltech, Sedriano, Italy. Also, the honey solution
was stored in the dark at 4 ◦C until injection.
2.6. RP-HPLC analysis
Chromatographic separation was accomplished by optimizing
(in terms of both program of elution gradient and sensitivity) the
method described by Heudi et al.[15] previously proposed for measures
in polyvitamin premixes. Further details on the assessment
and experimental conditions of the chromatographic method are
reported in Section 3.1 (optimization of chromatographic method).
2.1. Samples
The 28 honey samples used in this study were of the following
botanical types: 5 from eucalyptus (Eucalyptus calmadulensis
Denhn), 3 from citrus (Citrus spp.), 3 from asphodel (Asphodelus
microcarpus Salzm.), 3 from sulla (Hedysarium coronarium L.), 3
from thistle (Galactites tomentosa Moench), 3 from strawberry-tree
(Arbutus unedo L.), 2 from lavender (Lavandula spp.), 2 from acacia
(Robinia pseudacacia L.), and the last four from linden (Tilia spp.),
heather (Erica arborea L.), rosemary (Rosmarinus officinalis L.) and
multifloral, respectively. Except for linden and acacia honeys (all
from northern Italy), the remaining samples were obtained from
local beekeepers (Sardinia, Italy). The attribution of the botanical
origin for unifloral honey was confirmed by melissopalinological
analysis [14]. All samples were stored at 4 ◦C from the time immediately
following their extraction from the honeycomb to the time
of their analysis. Prior to each analytical determination, each sample
was homogenized for 15 min with an Ultra-turrax mixer mod.
T18 (IKA, Staufen, Germany).
2.2. Chemicals and reagents
All reagents were analytical grade. Riboflavin, d-pantothenic
acid hemicalcium salt, folic acid, nicotinic acid and trifluoroacetic
acid were purchased from Sigma Aldrich (Milan, Italy). l-Ascorbic
acid was obtained from Lancaster (Eastgate White Lund, Morecambe,
England), sodium dihydrogen phosphate and sodium
hydroxide were obtained from Carlo Erba (Milan, Italy). Acetonitrile
(HPLC grade) was purchased from Riedel de Haen (Milan, Italy).
Only ultra pure water, purchased from Merck (Milan, Italy), was
used throughout each phase of the method.
2.3. RP-HPLC equipment
The HPLC equipment consisted of a Series 200 binary pump,
a sampling valve, a 20 L sample loop and a Series 200
UV–vis variable wavelength detector, all from PerkinElmer, Milan
Italy. Separation was performed on an Alltima C18 column
250 mm × 4.6 mm, 5 m particle size (Alltech, Sedriano, Italy) fitted
with a guard cartridge packed with the same stationary phase.
Data were elaborated using Turbochrom Workstation Software
(PerkinElmer, Milan, Italy). Each sample was prepared and injected
in triplicate.
2.4. Standard preparation
The stock standard solution was prepared by weighing in a
100 mL volumetric flask, 10.0 mg of vitamin B2; 25.0 mg of vitamin
B5; 10.0 mg of vitamin B9 and by adding 40 mL of water. Then,
4 mL of NaOH were introduced. After complete dissolution, 50 mL of
phosphate buffer 1 M (pH = 5.5), 10.0 mg of vitamin B3 and 10.0 mg
of vitamin C were added, and the solution was topped up to the
mark with water. The standard solution was kept in the dark at
4 ◦C and was prepared fresh daily.
2.5. Sample preparation
10 g of homogenized honey were weighed and dissolved in
10 mL of ultra pure water. Then, 1 mL of NaOH 2 M (in order to favor
the complete solubilization of the honey) and 12.5 mL of phosphate
buffer 1 M (pH = 5.5) were added, and the solution was topped up
to the mark with ultra pure water in a 25 mL volumetric flask. Sample
solutions were injected through a PVDF (13 mm and 0.45 m)
model 6722 filter from Alltech, Sedriano, Italy. Also, the honey solution
was stored in the dark at 4 ◦C until injection.
2.6. RP-HPLC analysis
Chromatographic separation was accomplished by optimizing
(in terms of both program of elution gradient and sensitivity) the
method described by Heudi et al.[15] previously proposed for measures
in polyvitamin premixes. Further details on the assessment
and experimental conditions of the chromatographic method are
reported in Section 3.1 (optimization of chromatographic method).
0/5000
2. Experimental2.1. SamplesThe 28 honey samples used in this study were of the followingbotanical types: 5 from eucalyptus (Eucalyptus calmadulensisDenhn), 3 from citrus (Citrus spp.), 3 from asphodel (Asphodelusmicrocarpus Salzm.), 3 from sulla (Hedysarium coronarium L.), 3from thistle (Galactites tomentosa Moench), 3 from strawberry-tree(Arbutus unedo L.), 2 from lavender (Lavandula spp.), 2 from acacia(Robinia pseudacacia L.), and the last four from linden (Tilia spp.),heather (Erica arborea L.), rosemary (Rosmarinus officinalis L.) andmultifloral, respectively. Except for linden and acacia honeys (allfrom northern Italy), the remaining samples were obtained fromlocal beekeepers (Sardinia, Italy). The attribution of the botanicalorigin for unifloral honey was confirmed by melissopalinologicalanalysis [14]. All samples were stored at 4 ◦C from the time immediatelyfollowing their extraction from the honeycomb to the timeof their analysis. Prior to each analytical determination, each samplewas homogenized for 15 min with an Ultra-turrax mixer mod.T18 (IKA, Staufen, Germany).2.2. Chemicals and reagentsAll reagents were analytical grade. Riboflavin, d-pantothenicacid hemicalcium salt, folic acid, nicotinic acid and trifluoroaceticacid were purchased from Sigma Aldrich (Milan, Italy). l-Ascorbicacid was obtained from Lancaster (Eastgate White Lund, Morecambe,England), sodium dihydrogen phosphate and sodiumhydroxide were obtained from Carlo Erba (Milan, Italy). Acetonitrile
(HPLC grade) was purchased from Riedel de Haen (Milan, Italy).
Only ultra pure water, purchased from Merck (Milan, Italy), was
used throughout each phase of the method.
2.3. RP-HPLC equipment
The HPLC equipment consisted of a Series 200 binary pump,
a sampling valve, a 20 L sample loop and a Series 200
UV–vis variable wavelength detector, all from PerkinElmer, Milan
Italy. Separation was performed on an Alltima C18 column
250 mm × 4.6 mm, 5 m particle size (Alltech, Sedriano, Italy) fitted
with a guard cartridge packed with the same stationary phase.
Data were elaborated using Turbochrom Workstation Software
(PerkinElmer, Milan, Italy). Each sample was prepared and injected
in triplicate.
2.4. Standard preparation
The stock standard solution was prepared by weighing in a
100 mL volumetric flask, 10.0 mg of vitamin B2; 25.0 mg of vitamin
B5; 10.0 mg of vitamin B9 and by adding 40 mL of water. Then,
4 mL of NaOH were introduced. After complete dissolution, 50 mL of
phosphate buffer 1 M (pH = 5.5), 10.0 mg of vitamin B3 and 10.0 mg
of vitamin C were added, and the solution was topped up to the
mark with water. The standard solution was kept in the dark at
4 ◦C and was prepared fresh daily.
2.5. Sample preparation
10 g of homogenized honey were weighed and dissolved in
10 mL of ultra pure water. Then, 1 mL of NaOH 2 M (in order to favor
the complete solubilization of the honey) and 12.5 mL of phosphate
buffer 1 M (pH = 5.5) were added, and the solution was topped up
to the mark with ultra pure water in a 25 mL volumetric flask. Sample
solutions were injected through a PVDF (13 mm and 0.45 m)
model 6722 filter from Alltech, Sedriano, Italy. Also, the honey solution
was stored in the dark at 4 ◦C until injection.
2.6. RP-HPLC analysis
Chromatographic separation was accomplished by optimizing
(in terms of both program of elution gradient and sensitivity) the
method described by Heudi et al.[15] previously proposed for measures
in polyvitamin premixes. Further details on the assessment
and experimental conditions of the chromatographic method are
reported in Section 3.1 (optimization of chromatographic method).
(HPLC grade) was purchased from Riedel de Haen (Milan, Italy).
Only ultra pure water, purchased from Merck (Milan, Italy), was
used throughout each phase of the method.
2.3. RP-HPLC equipment
The HPLC equipment consisted of a Series 200 binary pump,
a sampling valve, a 20 L sample loop and a Series 200
UV–vis variable wavelength detector, all from PerkinElmer, Milan
Italy. Separation was performed on an Alltima C18 column
250 mm × 4.6 mm, 5 m particle size (Alltech, Sedriano, Italy) fitted
with a guard cartridge packed with the same stationary phase.
Data were elaborated using Turbochrom Workstation Software
(PerkinElmer, Milan, Italy). Each sample was prepared and injected
in triplicate.
2.4. Standard preparation
The stock standard solution was prepared by weighing in a
100 mL volumetric flask, 10.0 mg of vitamin B2; 25.0 mg of vitamin
B5; 10.0 mg of vitamin B9 and by adding 40 mL of water. Then,
4 mL of NaOH were introduced. After complete dissolution, 50 mL of
phosphate buffer 1 M (pH = 5.5), 10.0 mg of vitamin B3 and 10.0 mg
of vitamin C were added, and the solution was topped up to the
mark with water. The standard solution was kept in the dark at
4 ◦C and was prepared fresh daily.
2.5. Sample preparation
10 g of homogenized honey were weighed and dissolved in
10 mL of ultra pure water. Then, 1 mL of NaOH 2 M (in order to favor
the complete solubilization of the honey) and 12.5 mL of phosphate
buffer 1 M (pH = 5.5) were added, and the solution was topped up
to the mark with ultra pure water in a 25 mL volumetric flask. Sample
solutions were injected through a PVDF (13 mm and 0.45 m)
model 6722 filter from Alltech, Sedriano, Italy. Also, the honey solution
was stored in the dark at 4 ◦C until injection.
2.6. RP-HPLC analysis
Chromatographic separation was accomplished by optimizing
(in terms of both program of elution gradient and sensitivity) the
method described by Heudi et al.[15] previously proposed for measures
in polyvitamin premixes. Further details on the assessment
and experimental conditions of the chromatographic method are
reported in Section 3.1 (optimization of chromatographic method).
การแปล กรุณารอสักครู่..
2. การทดลอง
2.1 ตัวอย่าง
28
ตัวอย่างน้ำผึ้งที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีดังต่อไปนี้ประเภทพฤกษศาสตร์: 5 จากยูคา (ยูคาลิป calmadulensis
(. ส้มเอสพีพี) Denhn) 3 จากส้ม 3 จากอัสโฟเดล
(Asphodelus. microcarpus Salzm) 3 จาก sulla (Hedysarium coronarium L. ) 3
จากหนาม (Galactites tomentosa Moench) 3 จากสตรอเบอร์รี่ต้นไม้
(Arbutus unedo L. ) 2 จากลาเวนเดอร์ (Lavandula spp.) 2 จากกระถิน
(Robinia pseudacacia ลิตร) และในช่วงสี่จากดอกเหลือง (Tilia spp.),
เฮเทอร์ (เอริก้า arborea L. ), โรสแมรี่ (Rosmarinus officinalis L. ) และ
multifloral ตามลำดับ ยกเว้นดอกเหลืองและ honeys กระถิน
(ทั้งหมดจากภาคเหนือของอิตาลี) กลุ่มตัวอย่างที่เหลือที่ได้รับจากผึ้งท้องถิ่น (Sardinia, อิตาลี)
แสดงที่มาของพฤกษศาสตร์แหล่งกำเนิดน้ำผึ้ง unifloral รับการยืนยันจาก melissopalinological วิเคราะห์ [14] ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 ◦Cครั้งทันทีต่อไปนี้การสกัดของพวกเขาจากรังผึ้งเพื่อเวลาของการวิเคราะห์ของพวกเขา ก่อนที่จะมีความมุ่งมั่นในแต่ละวิเคราะห์แต่ละตัวอย่างถูกปั่นเป็นเวลา 15 นาทีกับ mod ผสมอัลตร้า turrax. T18 (IKA, Staufen, เยอรมนี). 2.2 สารเคมีและสารเคมีสารเคมีทั้งหมดเป็นเกรดการวิเคราะห์ Riboflavin, D-pantothenic เกลือ hemicalcium กรดกรดโฟลิกกรด nicotinic และ TRIFLUOROACETIC กรดที่ซื้อมาจากซิกม่าดิช (เอซีมิลาน, อิตาลี) l-Ascorbic กรดที่ได้รับจากแลงแคสเตอร์ (อีสท์สีขาวลันด์มอร์แคมบ์, อังกฤษ), ฟอสเฟต dihydrogen โซเดียมและโซเดียมไฮดรอกไซที่ได้รับจากคาร์โลเออร์บา(มิลาน, อิตาลี) acetonitrile (HPLC เกรด) ซื้อมาจาก Riedel เดอ Haen (มิลาน, อิตาลี). เฉพาะอัลตร้าน้ำบริสุทธิ์ที่ซื้อมาจากเมอร์ค (มิลาน, อิตาลี) ถูกนำมาใช้ตลอดแต่ละขั้นตอนของวิธีการ. 2.3 อุปกรณ์ RP-HPLC อุปกรณ์ HPLC ประกอบซีรีส์ 200 ปั๊มไบนารีวาล์วสุ่มตัวอย่างเป็นห่วงตัวอย่างL 20 และซีรีส์ 200 UV-Vis เครื่องตรวจจับคลื่นตัวแปรทั้งหมดจาก PerkinElmer, มิลานอิตาลี แยกได้ดำเนินการในคอลัมน์ C18 Alltima 250 มิลลิเมตร× 4.6 มิลลิเมตร, 5 เมตรขนาดอนุภาค (ออลเทค, Sedriano, อิตาลี) ติดตั้งกับตลับหมึกยามเต็มไปด้วยเฟสเดียวกัน. ข้อมูลเพิ่มเติมโดยใช้ Turbochrom เวิร์คสเตชั่ซอฟแวร์(PerkinElmer มิลานประเทศอิตาลี ) แต่ละตัวอย่างจัดทำและฉีดในเพิ่มขึ้นสามเท่า. 2.4 การจัดทำมาตรฐานหุ้นสารละลายมาตรฐานได้รับการจัดทำขึ้นโดยการชั่งน้ำหนักใน100 มิลลิลิตรขวดปริมาตร 10.0 มิลลิกรัมวิตามินบี 2; 25.0 มิลลิกรัมของวิตามินB5; 10.0 มิลลิกรัมของวิตามิน B9 และโดยการเพิ่ม 40 มิลลิลิตรน้ำ จากนั้น4 มิลลิลิตร NaOH ถูกนำมาใช้ หลังจากการสลายตัวสมบูรณ์ 50 มลของฟอสเฟตบัฟเฟอร์1 M (pH = 5.5) 10.0 มิลลิกรัมวิตามินบี 3 และ 10.0 มิลลิกรัมของวิตามินซีมีการเพิ่มและการแก้ปัญหาที่ได้รับการเติมกับเครื่องหมายด้วยน้ำ วิธีการแก้ปัญหามาตรฐานถูกเก็บไว้ในที่มืดที่4 ◦Cและถูกจัดทำสดใหม่ทุกวัน. 2.5 การเตรียมสารตัวอย่าง10 กรัมน้ำผึ้งปั่นชั่งและละลายใน10 มิลลิลิตรของน้ำบริสุทธิ์พิเศษ จากนั้น 1 มิลลิลิตร NaOH 2 M (ในการสั่งซื้อเพื่อให้ประโยชน์แก่ละลายสมบูรณ์ของน้ำผึ้ง) และ 12.5 มิลลิลิตรฟอสเฟตบัฟเฟอร์1 M (pH = 5.5) มีการเพิ่มและการแก้ปัญหาที่ได้รับการเติมเครื่องหมายที่มีน้ำเป็นพิเศษบริสุทธิ์25 มิลลิลิตรขวดปริมาตร ตัวอย่างการแก้ปัญหาที่ถูกฉีดผ่าน PVDF (ที่ 13 มิลลิเมตรและ 0.45 ม.) รุ่น 6722 กรองจากออลเทค, Sedriano อิตาลี นอกจากนี้ยังมีวิธีการแก้ปัญหาน้ำผึ้งถูกเก็บไว้ในที่มืดที่ 4 ◦Cจนกว่าฉีด. 2.6 RP-HPLC วิเคราะห์โครมาแยกก็ประสบความสำเร็จโดยการเพิ่มประสิทธิภาพ(ในแง่ของโปรแกรมของการไล่ระดับสีชะทั้งสองและความไว) คําวิธีการอธิบายโดยHeudi et al. [15] ที่นำเสนอก่อนหน้านี้สำหรับมาตรการในpolyvitamin premixes รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการประเมินผลและเงื่อนไขการทดลองวิธีโครมามีการรายงานในมาตรา3.1 (การเพิ่มประสิทธิภาพของวิธีโครมา)
2.1 ตัวอย่าง
28
ตัวอย่างน้ำผึ้งที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้มีดังต่อไปนี้ประเภทพฤกษศาสตร์: 5 จากยูคา (ยูคาลิป calmadulensis
(. ส้มเอสพีพี) Denhn) 3 จากส้ม 3 จากอัสโฟเดล
(Asphodelus. microcarpus Salzm) 3 จาก sulla (Hedysarium coronarium L. ) 3
จากหนาม (Galactites tomentosa Moench) 3 จากสตรอเบอร์รี่ต้นไม้
(Arbutus unedo L. ) 2 จากลาเวนเดอร์ (Lavandula spp.) 2 จากกระถิน
(Robinia pseudacacia ลิตร) และในช่วงสี่จากดอกเหลือง (Tilia spp.),
เฮเทอร์ (เอริก้า arborea L. ), โรสแมรี่ (Rosmarinus officinalis L. ) และ
multifloral ตามลำดับ ยกเว้นดอกเหลืองและ honeys กระถิน
(ทั้งหมดจากภาคเหนือของอิตาลี) กลุ่มตัวอย่างที่เหลือที่ได้รับจากผึ้งท้องถิ่น (Sardinia, อิตาลี)
แสดงที่มาของพฤกษศาสตร์แหล่งกำเนิดน้ำผึ้ง unifloral รับการยืนยันจาก melissopalinological วิเคราะห์ [14] ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บไว้ที่ 4 ◦Cครั้งทันทีต่อไปนี้การสกัดของพวกเขาจากรังผึ้งเพื่อเวลาของการวิเคราะห์ของพวกเขา ก่อนที่จะมีความมุ่งมั่นในแต่ละวิเคราะห์แต่ละตัวอย่างถูกปั่นเป็นเวลา 15 นาทีกับ mod ผสมอัลตร้า turrax. T18 (IKA, Staufen, เยอรมนี). 2.2 สารเคมีและสารเคมีสารเคมีทั้งหมดเป็นเกรดการวิเคราะห์ Riboflavin, D-pantothenic เกลือ hemicalcium กรดกรดโฟลิกกรด nicotinic และ TRIFLUOROACETIC กรดที่ซื้อมาจากซิกม่าดิช (เอซีมิลาน, อิตาลี) l-Ascorbic กรดที่ได้รับจากแลงแคสเตอร์ (อีสท์สีขาวลันด์มอร์แคมบ์, อังกฤษ), ฟอสเฟต dihydrogen โซเดียมและโซเดียมไฮดรอกไซที่ได้รับจากคาร์โลเออร์บา(มิลาน, อิตาลี) acetonitrile (HPLC เกรด) ซื้อมาจาก Riedel เดอ Haen (มิลาน, อิตาลี). เฉพาะอัลตร้าน้ำบริสุทธิ์ที่ซื้อมาจากเมอร์ค (มิลาน, อิตาลี) ถูกนำมาใช้ตลอดแต่ละขั้นตอนของวิธีการ. 2.3 อุปกรณ์ RP-HPLC อุปกรณ์ HPLC ประกอบซีรีส์ 200 ปั๊มไบนารีวาล์วสุ่มตัวอย่างเป็นห่วงตัวอย่างL 20 และซีรีส์ 200 UV-Vis เครื่องตรวจจับคลื่นตัวแปรทั้งหมดจาก PerkinElmer, มิลานอิตาลี แยกได้ดำเนินการในคอลัมน์ C18 Alltima 250 มิลลิเมตร× 4.6 มิลลิเมตร, 5 เมตรขนาดอนุภาค (ออลเทค, Sedriano, อิตาลี) ติดตั้งกับตลับหมึกยามเต็มไปด้วยเฟสเดียวกัน. ข้อมูลเพิ่มเติมโดยใช้ Turbochrom เวิร์คสเตชั่ซอฟแวร์(PerkinElmer มิลานประเทศอิตาลี ) แต่ละตัวอย่างจัดทำและฉีดในเพิ่มขึ้นสามเท่า. 2.4 การจัดทำมาตรฐานหุ้นสารละลายมาตรฐานได้รับการจัดทำขึ้นโดยการชั่งน้ำหนักใน100 มิลลิลิตรขวดปริมาตร 10.0 มิลลิกรัมวิตามินบี 2; 25.0 มิลลิกรัมของวิตามินB5; 10.0 มิลลิกรัมของวิตามิน B9 และโดยการเพิ่ม 40 มิลลิลิตรน้ำ จากนั้น4 มิลลิลิตร NaOH ถูกนำมาใช้ หลังจากการสลายตัวสมบูรณ์ 50 มลของฟอสเฟตบัฟเฟอร์1 M (pH = 5.5) 10.0 มิลลิกรัมวิตามินบี 3 และ 10.0 มิลลิกรัมของวิตามินซีมีการเพิ่มและการแก้ปัญหาที่ได้รับการเติมกับเครื่องหมายด้วยน้ำ วิธีการแก้ปัญหามาตรฐานถูกเก็บไว้ในที่มืดที่4 ◦Cและถูกจัดทำสดใหม่ทุกวัน. 2.5 การเตรียมสารตัวอย่าง10 กรัมน้ำผึ้งปั่นชั่งและละลายใน10 มิลลิลิตรของน้ำบริสุทธิ์พิเศษ จากนั้น 1 มิลลิลิตร NaOH 2 M (ในการสั่งซื้อเพื่อให้ประโยชน์แก่ละลายสมบูรณ์ของน้ำผึ้ง) และ 12.5 มิลลิลิตรฟอสเฟตบัฟเฟอร์1 M (pH = 5.5) มีการเพิ่มและการแก้ปัญหาที่ได้รับการเติมเครื่องหมายที่มีน้ำเป็นพิเศษบริสุทธิ์25 มิลลิลิตรขวดปริมาตร ตัวอย่างการแก้ปัญหาที่ถูกฉีดผ่าน PVDF (ที่ 13 มิลลิเมตรและ 0.45 ม.) รุ่น 6722 กรองจากออลเทค, Sedriano อิตาลี นอกจากนี้ยังมีวิธีการแก้ปัญหาน้ำผึ้งถูกเก็บไว้ในที่มืดที่ 4 ◦Cจนกว่าฉีด. 2.6 RP-HPLC วิเคราะห์โครมาแยกก็ประสบความสำเร็จโดยการเพิ่มประสิทธิภาพ(ในแง่ของโปรแกรมของการไล่ระดับสีชะทั้งสองและความไว) คําวิธีการอธิบายโดยHeudi et al. [15] ที่นำเสนอก่อนหน้านี้สำหรับมาตรการในpolyvitamin premixes รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการประเมินผลและเงื่อนไขการทดลองวิธีโครมามีการรายงานในมาตรา3.1 (การเพิ่มประสิทธิภาพของวิธีโครมา)
การแปล กรุณารอสักครู่..
2 . ทดลอง
2.1 . ตัวอย่าง
28 ที่รัก กลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ คือ ดังต่อไปนี้
พฤกษศาสตร์ประเภท : 5 จากยูคาลิปตัส ( Eucalyptus calmadulensis
denhn ) , ที่ 3 จากส้ม ( Citrus spp . ) , ที่ 3 จาก asphodel ( asphodelus
microcarpus salzm ) , 3 จากซัลลา ( hedysarium coronarium L . ) 3
จาก Thistle ( galactites tomentosa ชาวไทย ) , ที่ 3 จากสตรอเบอรี่
( Arbutus unedo L . ) , 2 จากลาเวนเดอร์ ลาเวนเดอร์ .) , 2 จากกระถิน
( robinia pseudacacia L . ) , และสุดท้ายสี่จาก Linden ( ทิเลีย spp . ) ,
Heather ( เอริก้า Arborea L . ) , โรสแมรี ( rosmarinus officinalis L . ) และ
multifloral ตามลำดับ ยกเว้น Linden และกระถินน้ำผึ้ง ( ทั้งหมด
จากตอนเหนือของอิตาลี ) , ตัวอย่าง ที่เหลือได้จาก
beekeepers ท้องถิ่น ( ซาร์ดิเนีย , อิตาลี ) แสดงที่มาของสวนพฤกษศาสตร์
แหล่งกำเนิด unifloral น้ำผึ้งที่ได้รับการยืนยันโดย melissopalinological
การวิเคราะห์ [ 14 ] ตัวอย่างทั้งหมดจะถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส ◦จากเวลาทันที
ต่อไปนี้สกัดจากรังผึ้ง เพื่อเวลา
ของการวิเคราะห์ของพวกเขา ก่อนที่จะกำหนดแต่ละวิเคราะห์แต่ละตัวอย่าง
เป็นโฮโม 15 นาทีกับ Ultra turrax ผสม mod .
t18 ( Ika Staufen , เยอรมนี ) .
2.2 . เคมีและสารเคมี
ทั้งหมดถูกวิเคราะห์สารเคมีเกรด Riboflavin กรด hemicalcium d-pantothenic
, เกลือ , กรดโฟลิก , กรดและกรด trifluoroacetic
ารซื้อมาจากซิกม่า Aldrich ( มิลาน , อิตาลี ) โมเลกุลเกาะติดของโฮสต์และกรด
ได้จาก แลงแคสเตอร์ ( Eastgate สีขาวลุนด์มอร์
, , อังกฤษ ) , ฟอสเฟต dihydrogen และโซเดียม
โซดาไฟ ได้จากคาร์โลมา ( มิลาน , อิตาลี ) ไน
( ป. 2 ) ซื้อมาจาก รีเดล เดอ แหน ( มิลาน , อิตาลี )
เท่านั้น อัลตร้า น้ำบริสุทธิ์ ซื้อจากเมอร์ค ( มิลาน , อิตาลี ) ,
ที่ใช้ตลอดขั้นตอนของแต่ละวิธี .
2.3 ๆอุปกรณ์
อุปกรณ์ HPLC ประกอบด้วยเลขฐานสองชุด 200 ปั๊ม
ตัวอย่างวาล์ว 20 ลิตรตัวอย่างวงและชุด 200
UV Vis เครื่องตรวจจับคลื่นและตัวแปรทั้งหมดจาก Perkinelmer มิลาน
อิตาลีมีการแยกคอลัมน์
alltima c18 250 มม. × 4.6 มม. 5 อนุภาคขนาด M ( เพราะ sedriano , อิตาลี ) พอดี
พร้อมยามตลับบรรจุด้วยเฟสอยู่กับที่เดิม .
ข้อมูลอธิบายโดยใช้ turbochrom เวิร์กสเตชันซอฟต์แวร์
( Perkinelmer , มิลาน , อิตาลี ) แต่ละตัวอย่างถูกเตรียมและฉีด
ทั้งสามใบ 2.4 .
การเตรียมมาตรฐานโซลูชั่นมาตรฐานสินค้าถูกเตรียมโดยเครื่องชั่งใน
100 มล. ปริมาตรขวด , 10.0 มิลลิกรัม วิตามินบี2 ; 50 มก. ของวิตามิน B5
; 10.0 มิลลิกรัมของวิตามินบี 9 และโดยการเพิ่ม 40 มิลลิลิตรของน้ำ งั้น
4 ml ใช้ได้ถูกนำมา หลังการสลายตัวสมบูรณ์ 50 มิลลิลิตร
M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 1 = 5.5 ) , 10.0 มิลลิกรัมของวิตามิน B3 และ 10.0 มิลลิกรัมต่อลิตร
วิตามินซีเพิ่ม และโซลูชันที่ถูกราดขึ้นไป
มาร์ค กับ น้ำ โซลูชั่นมาตรฐานที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
4 ◦ C และเตรียมสดใหม่ทุกวัน
2.5
ตัวอย่างการเตรียม 10 กรัมของน้ำผึ้งเป็นโฮโมหนักและละลายใน 10 ml ของน้ำบริสุทธิ์พิเศษ
. แล้ว 1 มิลลิลิตร ใช้ 2 M ( เพื่อความโปรดปราน
ขณะที่สมบูรณ์ของที่รัก ) และ 12.5 มิลลิลิตร M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ 1
( pH = 5.5 ) ถูกเพิ่มและเติมสารละลาย
ให้ มาร์ค กับ อัลตร้า น้ำบริสุทธิ์ปริมาตร 25 ml ในขวด ตัวอย่าง
โซลูชั่นถูกฉีดผ่านแผ่นฟิล์ม PVDF ( 13 มม. และ 0.45 m )
รูปแบบ 6722 กรองจากเพราะ sedriano , อิตาลี นอกจากนี้ โซลูชั่นที่รัก
ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่อุณหภูมิ 4 ◦ C จนกระทั่งฉีด .
2.6 ๆการวิเคราะห์และแยกได้โดยการเพิ่ม
( ทั้งในแง่ของการโปรแกรมของชนิดและความไว )
วิธีที่อธิบายโดย heudi et al . [ 15 ] ก่อนหน้านี้เสนอมาตรการ
ใน polyvitamin premixes . รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการประเมิน
และเงื่อนไขการทดลองของวิธีโครมาโทกราฟี คือ
รายงานในส่วน 3.1 ( การเพิ่มประสิทธิภาพของวิธีโครม ) .
2.1 . ตัวอย่าง
28 ที่รัก กลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ คือ ดังต่อไปนี้
พฤกษศาสตร์ประเภท : 5 จากยูคาลิปตัส ( Eucalyptus calmadulensis
denhn ) , ที่ 3 จากส้ม ( Citrus spp . ) , ที่ 3 จาก asphodel ( asphodelus
microcarpus salzm ) , 3 จากซัลลา ( hedysarium coronarium L . ) 3
จาก Thistle ( galactites tomentosa ชาวไทย ) , ที่ 3 จากสตรอเบอรี่
( Arbutus unedo L . ) , 2 จากลาเวนเดอร์ ลาเวนเดอร์ .) , 2 จากกระถิน
( robinia pseudacacia L . ) , และสุดท้ายสี่จาก Linden ( ทิเลีย spp . ) ,
Heather ( เอริก้า Arborea L . ) , โรสแมรี ( rosmarinus officinalis L . ) และ
multifloral ตามลำดับ ยกเว้น Linden และกระถินน้ำผึ้ง ( ทั้งหมด
จากตอนเหนือของอิตาลี ) , ตัวอย่าง ที่เหลือได้จาก
beekeepers ท้องถิ่น ( ซาร์ดิเนีย , อิตาลี ) แสดงที่มาของสวนพฤกษศาสตร์
แหล่งกำเนิด unifloral น้ำผึ้งที่ได้รับการยืนยันโดย melissopalinological
การวิเคราะห์ [ 14 ] ตัวอย่างทั้งหมดจะถูกเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส ◦จากเวลาทันที
ต่อไปนี้สกัดจากรังผึ้ง เพื่อเวลา
ของการวิเคราะห์ของพวกเขา ก่อนที่จะกำหนดแต่ละวิเคราะห์แต่ละตัวอย่าง
เป็นโฮโม 15 นาทีกับ Ultra turrax ผสม mod .
t18 ( Ika Staufen , เยอรมนี ) .
2.2 . เคมีและสารเคมี
ทั้งหมดถูกวิเคราะห์สารเคมีเกรด Riboflavin กรด hemicalcium d-pantothenic
, เกลือ , กรดโฟลิก , กรดและกรด trifluoroacetic
ารซื้อมาจากซิกม่า Aldrich ( มิลาน , อิตาลี ) โมเลกุลเกาะติดของโฮสต์และกรด
ได้จาก แลงแคสเตอร์ ( Eastgate สีขาวลุนด์มอร์
, , อังกฤษ ) , ฟอสเฟต dihydrogen และโซเดียม
โซดาไฟ ได้จากคาร์โลมา ( มิลาน , อิตาลี ) ไน
( ป. 2 ) ซื้อมาจาก รีเดล เดอ แหน ( มิลาน , อิตาลี )
เท่านั้น อัลตร้า น้ำบริสุทธิ์ ซื้อจากเมอร์ค ( มิลาน , อิตาลี ) ,
ที่ใช้ตลอดขั้นตอนของแต่ละวิธี .
2.3 ๆอุปกรณ์
อุปกรณ์ HPLC ประกอบด้วยเลขฐานสองชุด 200 ปั๊ม
ตัวอย่างวาล์ว 20 ลิตรตัวอย่างวงและชุด 200
UV Vis เครื่องตรวจจับคลื่นและตัวแปรทั้งหมดจาก Perkinelmer มิลาน
อิตาลีมีการแยกคอลัมน์
alltima c18 250 มม. × 4.6 มม. 5 อนุภาคขนาด M ( เพราะ sedriano , อิตาลี ) พอดี
พร้อมยามตลับบรรจุด้วยเฟสอยู่กับที่เดิม .
ข้อมูลอธิบายโดยใช้ turbochrom เวิร์กสเตชันซอฟต์แวร์
( Perkinelmer , มิลาน , อิตาลี ) แต่ละตัวอย่างถูกเตรียมและฉีด
ทั้งสามใบ 2.4 .
การเตรียมมาตรฐานโซลูชั่นมาตรฐานสินค้าถูกเตรียมโดยเครื่องชั่งใน
100 มล. ปริมาตรขวด , 10.0 มิลลิกรัม วิตามินบี2 ; 50 มก. ของวิตามิน B5
; 10.0 มิลลิกรัมของวิตามินบี 9 และโดยการเพิ่ม 40 มิลลิลิตรของน้ำ งั้น
4 ml ใช้ได้ถูกนำมา หลังการสลายตัวสมบูรณ์ 50 มิลลิลิตร
M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 1 = 5.5 ) , 10.0 มิลลิกรัมของวิตามิน B3 และ 10.0 มิลลิกรัมต่อลิตร
วิตามินซีเพิ่ม และโซลูชันที่ถูกราดขึ้นไป
มาร์ค กับ น้ำ โซลูชั่นมาตรฐานที่ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่
4 ◦ C และเตรียมสดใหม่ทุกวัน
2.5
ตัวอย่างการเตรียม 10 กรัมของน้ำผึ้งเป็นโฮโมหนักและละลายใน 10 ml ของน้ำบริสุทธิ์พิเศษ
. แล้ว 1 มิลลิลิตร ใช้ 2 M ( เพื่อความโปรดปราน
ขณะที่สมบูรณ์ของที่รัก ) และ 12.5 มิลลิลิตร M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ 1
( pH = 5.5 ) ถูกเพิ่มและเติมสารละลาย
ให้ มาร์ค กับ อัลตร้า น้ำบริสุทธิ์ปริมาตร 25 ml ในขวด ตัวอย่าง
โซลูชั่นถูกฉีดผ่านแผ่นฟิล์ม PVDF ( 13 มม. และ 0.45 m )
รูปแบบ 6722 กรองจากเพราะ sedriano , อิตาลี นอกจากนี้ โซลูชั่นที่รัก
ถูกเก็บไว้ในที่มืดที่อุณหภูมิ 4 ◦ C จนกระทั่งฉีด .
2.6 ๆการวิเคราะห์และแยกได้โดยการเพิ่ม
( ทั้งในแง่ของการโปรแกรมของชนิดและความไว )
วิธีที่อธิบายโดย heudi et al . [ 15 ] ก่อนหน้านี้เสนอมาตรการ
ใน polyvitamin premixes . รายละเอียดเพิ่มเติมเกี่ยวกับการประเมิน
และเงื่อนไขการทดลองของวิธีโครมาโทกราฟี คือ
รายงานในส่วน 3.1 ( การเพิ่มประสิทธิภาพของวิธีโครม ) .
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- Toyota is more modern than Fiat
- ผิดหวังหรือ
- Sources of error in isokinetic dynamomet
- First by listing all attributes by the i
- I wishes treat the knee to my granmother
- ฉันเชื่อสิ่งที่ฉันคิด
- ตอนนี้เธออายุ 20ปี
- All data were statistically analyzed (me
- She is the good listener of us and liste
- The availability and timing for the sale
- กิจกรรม
- น้ำ เป็นสิ่งจำเป็นต่อการดำรงชีพของมนุษย์
- ภาพโฆษณานี้ เมื่อฉันเห็นโฆษณานี้ทำให้ฉัน
- ดึกแล้ว
- ผัดเปรี้ยวหวาน
- All data were statistically analyzed (me
- 4 units on over half Rai compound, each
- Other measures have been investigated, f
- But I love you. I'm totally and complete
- วีนนี้คุณทำได้ดีมากๆ ฉันเสียใจที่ไปหาคุณ
- เอาไปทำไม
- รักแบบไม่มีข้อแม้
- ตอนนี้ฉันดูหนัง
- Terminals are places where the movement
