2.3. Fruit preparationBananas cv. K

2.3. Fruit preparation
Bananas cv. Kluai Hom Thong (AAA group) were harvested
at 75–80% maturity from a commercial plantation in Petchaburi
province, Western Thailand. Hands, free of visual defects and of
uniform weight and shape of banana were selected. The hands
were surfaced-sterilized with 0.1 g L−1 of sodium hypochlorite
solution for 3 min. The crown surface of each hand was
re-cut using a sterilized knife to make a fresh wound surface
for artificial inoculation and allowed to air dry for 2–3 h. The
hands were then randomly allocated to treatment groups. A treatment
unit consisting of seven hands was used to assess disease
development. Five hands of banana were allocated for measurement
of fruit quality. Treatments were applied within 24 h of
harvest.
2.4. Antifungal assays
Antifungal activity of plant extracts was evaluated using three
fungi cultured on agar plates at concentrations of 0, 0.1, 0.5,
1.0, 5.0 and 10.0 g L−1. For comparison, 0.75 g L−1 of CBZ
and unamended media were used as controls. The prepared
extracts were added to conical flasks containing previously sterilized
and cooled agar medium. After thorough mixing, 15 mL of
media were poured into sterilized Petri dishes 9 cm in diameter
(Thangavelu et al., 2004).
One millilitre of conidial suspension (105 conidia/mL) was
evenly spread on the agar plates and incubated at room temperature.
The number of germinated conidia were counted in 10
microscopic fields of 100 conidia in three replicate plates and
presented as percent germination. Conidia were considered to
have germinated if the germ tubes were equal to or longer than
the length of the conidia itself (Khan et al., 2001).
Fungal plugs (0.5 mm in diameter) were removed with a cork
borer from the growing margin of each fungus colony and placed
at the center of the test plate. Five replications were made for
each treatment and the cultures were incubated at room temperature.
Colony diameter was measured in two directions daily
until the fungus covered the whole of the agar in the control plate.
Data were expressed as growth rate (mm/day) relative to control.
Percentage inhibition (conidial germination and mycelial
growth) was converted to probit values (Finney, 1978) and the
ED50 was determined.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. ผลไม้เตรียมกล้วยพันธุ์กล้วยหอมทอง (AAA group) ได้เก็บเกี่ยวเมื่อครบกำหนด 75-80% จากการปลูกเชิงพาณิชย์ในเพชรบุรีจังหวัด ภาคตะวันตก มือ ฟรี ของข้อบกพร่องมองเห็น และเลือกชุดน้ำหนักและรูปร่างของกล้วย มือมีพื้นผิวและฆ่าเชื้อ ด้วย 0.1 กรัม L−1 กรรมการแก้ไขปัญหา 3 นาที พื้นมงกุฎแต่ละมือถูกการตัดใช้มีดผ่านการฆ่าเชื้อจะทำให้พื้นผิวบาดแผลสดสำหรับ inoculation เทียม และอนุญาตให้อากาศแห้ง 2-3 สำหรับการมือแล้วสุ่มถูกปันส่วนไปยังกลุ่มรักษา ในการรักษาหน่วยประกอบด้วยเจ็ดมือถูกใช้เพื่อประเมินโรคการพัฒนา มือห้าของกล้วยถูกปันส่วนสำหรับการวัดของผลไม้คุณภาพ ใช้รักษาภายใน 24 ชม.ของเก็บเกี่ยว2.4. assays ต้านเชื้อราประกอบกิจกรรมต้านเชื้อราของสารสกัดจากพืชใช้สามเชื้อราที่เพาะเลี้ยงในจานอาหารที่ความเข้มข้น 0, 0.1, 0.51.0, 5.0 และ 10.0 g L−1 สำหรับการเปรียบเทียบ 0.75 กรัม L−1 CBZและ unamended สื่อถูกใช้เป็นตัวควบคุม การเตรียมเพิ่มสารสกัดจากกรวยขวดผ่านการฆ่าเชื้อก่อนหน้านี้ที่ประกอบด้วยและอาหารเย็นกลาง หลังจากผสมอย่างละเอียด 15 mLสื่อถูกเทลงใน Petri อาหารผ่านการฆ่าเชื้อเส้นผ่าศูนย์กลาง 9 ซม.(Thangavelu et al. 2004)มี millilitre หนึ่ง conidial ระงับ (105 conidia มิลลิลิตร)เท่า ๆ กันกระจายบนอาหารแผ่น และได้รับการกกที่อุณหภูมิห้องนับจำนวนของ conidia เปลือกงอกใน 10ฟิลด์ด้วยกล้องจุลทรรศน์ของ conidia 100 ในสามแผ่น replicate และแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์การงอก พิจารณาว่า conidiaมีงอกถ้าจมูกหลอดเท่ากับ หรือเกินกว่าความยาวของ conidia เอง (Khan et al. 2001)เชื้อราปลั๊ก (0.5 มิลลิเมตรเส้นผ่านศูนย์กลาง) ถูกลบออก ด้วยคอร์กมอดจากกำไรเติบโตแต่ละอาณาจักรเห็ดราและศูนย์กลางของแผ่นทดสอบ ระยะที่ห้าเกิดขึ้นสำหรับทรีตเมนท์และวัฒนธรรมได้รับการกกที่อุณหภูมิห้องเส้นผ่าศูนย์กลางของโคโลมีวัดในสองทิศทางทุกวันจนกระทั่งเชื้อราปกคลุมทั้งหมดของอาหารจานควบคุมข้อมูลที่แสดงเป็นอัตราการเติบโต (มม.ต่อวัน) สัมพันธ์กับการควบคุมเปอร์เซ็นต์ยับยั้ง (การงอกของ conidial และ mycelialเจริญเติบโต) ถูกแปลงเป็นค่า probit (Finney, 1978) และพิจารณา ED50

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 ผลไม้เตรียม
กล้วยพันธุ์ กล้วยหอมทอง (กลุ่ม AAA) เก็บเกี่ยว
เมื่อครบกำหนด 75-80% จากไร่ในเชิงพาณิชย์ในเพชรบุรี
จังหวัดภาคตะวันตก มืออิสระจากข้อบกพร่องของภาพและ
น้ำหนักเครื่องแบบและรูปร่างของกล้วยได้รับการคัดเลือก มือ
ถูกโผล่ผ่านการฆ่าเชื้อด้วย L-1 ของโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 0.1 กรัม
วิธีการแก้ปัญหาเป็นเวลา 3 นาที พื้นผิวมงกุฎของแต่ละมือที่ถูก
ตัดใหม่ใช้มีดฆ่าเชื้อที่จะทำให้พื้นผิวแผลสด
สำหรับการฉีดวัคซีนเทียมและได้รับอนุญาตให้อากาศแห้ง 2-3 ชั่วโมง
มือจากนั้นก็สุ่มจัดสรรให้กับกลุ่มการรักษา การรักษา
หน่วยประกอบด้วยเจ็ดมือถูกใช้ในการประเมินโรค
พัฒนา ห้ามือของกล้วยถูกจัดสรรสำหรับการตรวจวัด
คุณภาพของผลไม้ ถูกนำไปใช้รักษาภายใน 24 ชั่วโมงของ
การเก็บเกี่ยว.
2.4 การตรวจเชื้อรา
กิจกรรมต้านเชื้อราของสารสกัดจากพืชได้รับการประเมินโดยใช้สาม
เชื้อราเพาะเลี้ยงบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อที่ความเข้มข้น 0, 0.1, 0.5,
1.0, 5.0 และ 10.0 กรัม L-1 สำหรับการเปรียบเทียบ, L-1 ของ CBZ 0.75 กรัม
และสื่อ unamended ถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุม เตรียม
สารสกัดถูกเพิ่มเข้าไปในขวดรูปกรวยที่มีการฆ่าเชื้อก่อนหน้านี้
และระบายความร้อนขนาดกลางวุ้น หลังจากตรวจสอบอย่างละเอียดผสม 15 มลของ
สื่อถูกเทลงไปในการฆ่าเชื้ออาหารเลี้ยงเชื้อ 9 ซม. เส้นผ่าศูนย์กลาง
(Thangavelu et al., 2004).
หนึ่งมิลลิลิตรของการระงับเชื้อรา (105 ปอร์ / มิลลิลิตร) ถูก
แพร่กระจายอย่างสม่ำเสมอบนแผ่นวุ้นและบ่มที่อุณหภูมิห้อง .
จำนวนสปอร์งอกถูกนับรวมอยู่ใน 10
เขตกล้องจุลทรรศน์ 100 สปอร์ในสามแผ่นซ้ำและ
นำเสนอเป็นเปอร์เซ็นต์การงอกของเมล็ด สปอร์ได้รับการพิจารณาจะ
ได้งอกถ้าหลอดเชื้อโรคเท่ากับหรือนานกว่า
ความยาวของสปอร์ของตัวเอง (ข่าน et al., 2001).
ปลั๊กเชื้อรา (0.5 มม) ถูกถอดออกด้วยไม้ก๊อก
หนอนเจาะจากอัตรากำไรขั้นต้นที่เพิ่มขึ้นของ แต่ละเชื้อราอาณานิคมและวางไว้
ที่ศูนย์ของแผ่นทดสอบ ห้าซ้ำถูกสร้างขึ้นมาสำหรับ
การรักษาแต่ละและวัฒนธรรมที่ถูกบ่มที่อุณหภูมิห้อง.
เส้นผ่าศูนย์กลางอาณานิคมวัดในสองทิศทางในชีวิตประจำวัน
จนเชื้อราที่ครอบคลุมทั้งวุ้นในแผ่นควบคุมได้.
ข้อมูลแสดงเป็นอัตราการเติบโต (มม / วัน) ญาติ ในการควบคุม.
ยับยั้งเป็นร้อยละ (งอกเชื้อราและเส้นใย
เจริญเติบโต) ถูกดัดแปลงไปเป็นค่า probit (ฟินนีย์, 1978) และ
ED50 ถูกกำหนด

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 เตรียมผลไม้กล้วยพันธุ์ กล้วยหอมทอง ( กลุ่ม AAA ) เก็บเกี่ยวที่ 75 - 80% วุฒิภาวะจากสวนป่าเชิงพาณิชย์ในเพชรบุรีจังหวัดภาคตะวันตกของประเทศไทย มือ , ฟรีของข้อบกพร่องที่มองเห็นได้ และน้ำหนักของชุดและรูปร่างของกล้วยที่ถูกคัดเลือก มือมี surfaced ฆ่าเชื้อด้วย 0.1 g L − 1 ของโซเดียมไฮโปคลอไรต์โซลูชั่นสำหรับ 3 นาที มงกุฎพื้นผิวของแต่ละมือ คือRe : ตัดโดยใช้ฆ่าเชื้อมีดเพื่อให้พื้นผิวที่แผลสดสำหรับการปลูกเทียมและอนุญาตให้อากาศแห้งประมาณ 2 – 3 ชั่วโมงมือมีจุดมุ่งหมายที่จัดสรรให้กลุ่มการรักษา การรักษาหน่วยประกอบด้วยเจ็ดในมือถูกใช้เพื่อประเมินโรคการพัฒนา มือห้าของกล้วยที่ถูกจัดสรรสำหรับการวัดคุณภาพของผลไม้ การทดลองใช้ภายใน 24 ชั่วโมงของการเก็บเกี่ยว2.4 . ในการพยายามฤทธิ์ต้านราของพืชถูกประเมินโดยใช้สามเชื้อราบนอาหารวุ้นจานที่ความเข้มข้น 0 , 0.1 , 0.5 ,1.0 , 5.0 และ 10.0 กรัม L − 1 สำหรับการเปรียบเทียบ , 0.75 กรัม L − 1 cbzunamended และสื่อที่ใช้ควบคุม ที่เตรียมไว้สารสกัดถูกเพิ่มไปยังจานขวดฆ่าเชื้อที่มีก่อนหน้านี้และเย็นวุ้น ) หลังจากอย่างละเอียดผสม 15 มิลลิลิตรสื่อที่ถูกเทลงไปในจานเพาะเลี้ยงสูง 9 ซม. เส้นผ่านศูนย์กลาง( thangavelu et al . , 2004 )1 มิลลิลิตรของเดียระงับ ( 105 conidia / ml )อย่างเท่าเทียมกันกระจายบนแผ่นวุ้น และ บ่มที่อุณหภูมิห้องจำนวนการงอก conidia ถูกนับในสิบทางด้านของ 100 เดีย 3 ทำซ้ำจานแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์การงอก ผลการศึกษาพบว่าถ้าได้งอก germ หลอด เท่ากับหรือมากกว่าความยาวของโคนิเดียเอง ( ข่าน et al . , 2001 )เชื้อราปลั๊ก ( 0.5 มม. ) ถูกลบออกด้วยจุกไม้ก๊อกเจาะจากขอบของแต่ละนิคม และปลูกเชื้อราอยู่ที่ศูนย์กลางของแผ่นทดสอบ . ห้าซ้ำถูกสร้างสำหรับแต่ละวัฒนธรรมมีการรักษาและบ่มที่อุณหภูมิห้องวัดเส้นผ่าศูนย์กลางโคโลนีใน 2 เส้นทางทุกวันจนเชื้อราครอบคลุมทั้งหมดของวุ้นในจานควบคุมข้อมูลที่แสดงเป็นอัตราการเติบโต ( มม. / วัน ) เมื่อเทียบกับการควบคุมเปอร์เซ็นต์การยับยั้งการงอกของโคนิเดียของเส้นใย ( และการเจริญเติบโต ) จะถูกแปลงเป็นค่าโปร ( ฟินนีย์ , 1978 ) และed50 ตัดสินใจไว้แล้ว