Lycopene extraction was carried out

Lycopene extraction was carried out in a 35 ml screw-top vial placed in a thermostated water bath (±0.1 °C). 0.5 g of sample was added to the vial and agitated with 20 ml of acetone/n-hexane mixture under appropriate conditions (Table 1, Table 2 and Table 3). The vial was connected to a peristaltic pump that continuously draws the extract and passes it through a quartz flow cell (Hellma, Germany), mounted on a UV–VIS spectrophotometer (HP 8452A Diode Array Spectrophotometer, Agilent, USA). The extract was passed through a 0.45 μm hydrophobic PTFE membrane filter (Whatman) to eliminate suspended solids before entering the quartz flow cell. Absorbance of the extract was measured continuously every 60 s for 45 min at 472 and 503 nm against a blank of pure solvent mixture. To minimise the interference from other carotenoids, the concentration of lycopene was calculated at 503 nm using the molar extinction coefficient 17.2 × 104 M−1 cm−1 (Fish, Perkins-Veazie, & Collins, 2002). Lycopene content was expressed as mg/100 g fresh weight.

The contents of the carotenoids beta-carotene and lycopene were determined using reversed phase HPLC. A 1200 Series HPLC system (Agilent Technologies, Waldbronn, Germany), equipped with a quaternary pump, a degasser, a thermostatic autosampler and a diode array detector (DAD), was used to separate the analytes. The method followed was developed by García-Plazaola and Becerril (1999) with small modifications (Cortés-Olmos et al., 2014).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ไลโคปีนสกัดได้ดำเนินการในขวดเป็นสกรูด้านบน 35 มิลลิลิตรวางไว้ในอ่างน้ำควบคุมอุณหภูมิ (ถึง° C) 0.5 กรัมตัวอย่างลงขวด และไม่สบายใจอีก ด้วย 20 มล.ผสมอะซีโตน/เอ็นเฮกเซนภายใต้เงื่อนไขที่เหมาะสม (ตารางที่ 1 ตารางที่ 2 และตารางที่ 3) ขวดถูกเชื่อมต่อกับปั๊ม peristaltic ที่วาดสารสกัด และผ่านเซลล์ไหลควอตซ์ (Hellma เยอรมัน), ติดตั้งบนสเปคเครื่อง UV – VIS (สเปค HP 8452A ไดโอดอาร์เรย์ Agilent สหรัฐอเมริกา) อย่างต่อเนื่อง สารสกัดถูกส่งผ่านผ่าน 0.45 ไมครอนฝ่ามือไฟเบอร์เยื่อกรอง (Whatman) เพื่อกำจัดปริมาณสารแขวนลอยก่อนเข้าเซลล์ไหลควอตซ์ ค่าของสารสกัดโดยวัดอย่างต่อเนื่องทุก 60 s สำหรับ 45 นาทีที่ 472 และ 503 nm กับเปล่าผสมตัวทำละลายที่บริสุทธิ์ เพื่อลดการรบกวนจากแคโรทีนอยด์อื่น ๆ คำนวณความเข้มข้นของไลโคปีนที่ 503 nm ใช้สบสูญพันธุ์สัมประสิทธิ์ 17.2 × 104 M−1 cm−1 (ปลา เพอร์กิน Veazie และคอ ลลินส์ 2002) ไลโคปีนเนื้อหาถูกแสดงเป็น มิลลิกรัม/100 กรัมน้ำหนักสดเนื้อหาของแคโรทีนอยด์เบต้าแคโรทีและไลโคปีนถูกใช้กลับเฟส HPLC 1200 ชุด HPLC ระบบ (Agilent เทคโนโลยี Waldbronn เยอรมนี), พร้อมกับปั๊มสี่ การ degasser การเกิดระบบ และไดโอดอาร์เรย์เครื่องตรวจจับ (พ่อ), ถูกใช้ในการแยกสารวิเคราะห์ ตามวิธีการพัฒนา โดย García Plazaola และ Becerril (1999) มีการปรับเปลี่ยนขนาดเล็ก (Cortés Olmos et al. 2014)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สกัดไลโคปีนได้ดำเนินการในขวด 35 มล. สกรูด้านบนวางไว้ในอ่างน้ำ thermostated (± 0.1 ° C) 0.5 กรัมของกลุ่มตัวอย่างถูกบันทึกอยู่ในขวดและตื่นเต้นกับ 20 มล. ของอะซิโตน / สารผสม N-เฮกเซนภายใต้เงื่อนไขที่เหมาะสม (ตารางที่ 1 และตารางที่ 2 ตารางที่ 3) ขวดได้รับการเชื่อมต่อกับปั๊ม peristaltic อย่างต่อเนื่องดึงสารสกัดและผ่านมันผ่านเซลล์ไหลควอทซ์ (Hellma, เยอรมนี) ติดตั้งอยู่บน UV-VIS spectrophotometer (HP 8452A ไดโอดอาร์เรย์ Spectrophotometer, Agilent, สหรัฐอเมริกา) สารสกัดก็ผ่านไปผ่าน 0.45 ไมโครเมตรชอบน้ำ PTFE เมมเบรนกรอง (Whatman) เพื่อขจัดสารแขวนลอยก่อนเข้าสู่เซลล์ไหลควอทซ์ การดูดกลืนแสงของสารสกัดวัดอย่างต่อเนื่องทุก ๆ 60 วินาทีเป็นเวลา 45 นาทีที่ 472 และ 503 นาโนเมตรเทียบกับที่ว่างของตัวทำละลายผสมบริสุทธิ์ เพื่อลดการรบกวนจาก carotenoids อื่น ๆ ที่มีความเข้มข้นของไลโคปีนที่คำนวณได้ที่ 503 นาโนเมตรโดยใช้ค่าสัมประสิทธิ์การสูญเสียฟันกราม 17.2 × 104 M-1 ซม-1 (ปลา Perkins-Veazie และคอลลิน, 2002) เนื้อหาไลโคปีนได้รับการแสดงเป็นมก. / 100 กรัมน้ำหนักสด. เนื้อหาของ carotenoids เบต้าแคโรทีนและไลโคปีนได้รับการพิจารณาโดยใช้ย้อนกลับ HPLC เฟส 1200 ซีรี่ส์ระบบ HPLC (Agilent Technologies, Waldbronn, เยอรมนี) พร้อมกับปั๊มไตรมาสที่ดีแก๊สเซอร์เป็น autosampler อุณหภูมิและเครื่องตรวจจับไดโอดอาร์เรย์ (DAD) ถูกใช้ในการแยกวิเคราะห์จึงทำให้ วิธีการที่ใช้รับการพัฒนาโดยการ์เซียและ Plazaola Becerril (1999) ด้วยการปรับเปลี่ยนขนาดเล็ก (Cortés-Olmos et al., 2014)