Staph. aureus and Sh. flexneri reac

Staph. aureus and Sh. flexneri reached 107 CFU ml)1; the
level of growth of L. monocytogenes which reached
106 CFU ml)1 was slightly lower than those of the other four
pathogens. Multiplex PCR assay of the same contaminated
pork samples also showed positive PCR-amplified products
for the target pathogens. Consequently, the 24-h enrichment
allowed both assays to detect samples contaminated with
lower level (10–17 CFU g)1 sample) and higher level (1203–
1735 CFU g)1 sample) of target pathogens (Table 3). The
multiplex PCR developed in the present study was capable
of detecting all five pathogens simultaneously in the spiked
pork after 24-h enrichment.
Multiplex PCR and traditional culture method detection
of naturally contaminated samples
According to the results shown in Table 4, after 24-h
enrichment, a total of 20 samples, or 80%, tested positive
for one or more of these organisms by multiplex PCR
assay. Among the 25 naturally contaminated samples, 15,
4 and 13 samples, respectively, were positive for
Salm. Enteritidis, E. coli O157:H7 and Staph. aureus by
both methods. One sample was L. monocytogenes-positive
by multiplex PCR method, and two samples were positive
by the culture method. Two samples were Sh. flexneripositive
by the multiplex PCR method, and one sample
was positive by the culture method. Comparing the
results of two methods, beef sample number four was
found to be contaminated with L. monocytogenes by the
culture method, whereas this sample was found to be
negative for L. monocytogenes by multiplex PCR method.
Chicken sample number two was found to be contaminated
with Sh. flexneri by multiplex PCR method, whereas
this sample was demonstrated to be absent of Sh. flexneri
by traditional culture method. Despite some minor differences
occurred, the results from testing naturally contaminated
samples validated the feasibility of the multiplex
PCR assay combined with multipathogen enrichment for
detecting these target pathogens in food samples.
Discussion
Rapid and accurate methods for simultaneous identification
of foodborne pathogens are becoming more and
more important (Dı´az-Lo´ pez et al. 2011). Previously
reported methods of multiplex PCR usually assay only for
two or three pathogens. In the present study, a multiplex
PCR assay that used five pairs of primers was developed
to simultaneously detect Salm. Enteritidis, L. monocytogenes,
Staph. aureus, E. coli O157:H7 and Sh. flexneri. The
applications of this method in artificially contaminated
and naturally contaminated meat samples were also
verified. Therefore, the current multiplex PCR assay

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เชื้อ aureus และดวลจุดโทษ flexneri ถึง 107 โคโลนี มล. ) 1;
ระดับของการเจริญเติบโตของลิตร monocytogenes ซึ่งถึง
106 โคโลนี มล. ) 1 ต่ำกว่าอีกสี่
เชื้อโรคเล็กน้อย ทดสอบ pcr หลายตัวอย่างที่ปนเปื้อน
หมูเดียวกันยังแสดงให้เห็น PCR-ขยายผลิตภัณฑ์บวก
เชื้อโรคเป้าหมาย ดังนั้นการตกแต่ง 24 ชั่วโมง
ได้รับอนุญาตทั้งการตรวจการตรวจสอบตัวอย่างที่ปนเปื้อนด้วย
ระดับต่ำ (10-17 โคโลนีกรัม) 1 ตัวอย่าง) และระดับที่สูงขึ้น (1203 -
1,735 โคโลนีกรัม) 1 ตัวอย่าง) ของเชื้อโรคเป้าหมาย (ตารางที่ 3)
multiplex PCR การพัฒนาในการศึกษาครั้งนี้มีความสามารถในการตรวจจับ
ทั้งห้าเชื้อโรคพร้อมกันในแหลม
หมูหลังจาก 24 ชั่วโมงการตกแต่ง.
multiplex PCR และการตรวจสอบวิธีการแบบดั้งเดิมวัฒนธรรม
ตัวอย่างที่ปนเปื้อนตามธรรมชาติ
ตามผลที่แสดงในตาราง 4หลังจาก 24 ชั่วโมง
ตกแต่งทั้งหมด 20 ตัวอย่างหรือ 80% ทดสอบบวก
สำหรับหนึ่งหรือมากกว่าของสิ่งมีชีวิตเหล่านี้โดยการ multiplex PCR
ทดสอบ หมู่ที่ 25 กลุ่มตัวอย่างที่ปนเปื้อนตามธรรมชาติ, 15,
4 และ 13 ตัวอย่างตามลำดับผลบวกต่อ
salm Enteritidis, E O157 coli: H7 และเชื้อ aureus โดย
วิธีการทั้งสอง เป็นตัวอย่างหนึ่งลิตร monocytogenes บวก
โดยวิธี PCR หลายและทั้งสองตัวอย่างเป็นบวก
โดยวิธีการเพาะเลี้ยง ทั้งสองตัวอย่างที่ดวลจุดโทษ flexneripositive
โดยวิธี PCR multiplex และเป็นหนึ่งตัวอย่าง
เป็นบวกโดยวิธีการเพาะเลี้ยง เปรียบเทียบ
ผลของการสองวิธีตัวอย่างเนื้อวัวจำนวนสี่ถูก
พบว่ามีการปนเปื้อนด้วยลิตร monocytogenes โดย
วิธีการเพาะเลี้ยงในขณะที่ตัวอย่างนี้พบว่าเป็น
เชิงลบสำหรับลิตร monocytogenes โดยวิธี PCR multiplex.
จำนวนตัวอย่างไก่สองถูกพบว่ามีการปนเปื้อนด้วย
ดวลจุดโทษ flexneri โดยวิธี PCR multiplex ขณะ
ตัวอย่างนี้แสดงให้เห็นจะขาดของดวลจุดโทษ flexneri
โดยวิธีการเพาะเลี้ยงแบบดั้งเดิม แม้จะมีความแตกต่างเล็กน้อยบาง
เกิดขึ้นผลที่ได้จากการทดสอบการปนเปื้อนตามธรรมชาติ
ตัวอย่างการตรวจสอบความเป็นไปได้ของการทดสอบ multiplex PCR
บวกกับการตกแต่ง multipathogen สำหรับ
การตรวจหาเชื้อโรคเป้าหมายเหล่านี้ในตัวอย่างอาหาร.

วิธีการสนทนาอย่างรวดเร็วและถูกต้องสำหรับการระบุพร้อมกัน
ของเชื้อโรคที่เกิดจากอาหารมีมากขึ้นและที่สำคัญมากขึ้น
(dı'az-Lo 'PEZ et al,. 2011) วิธีการก่อนหน้านี้
รายงานของ multiplex PCR มักจะวิเคราะห์การเฉพาะ
สองหรือสามเชื้อโรค ในการศึกษาปัจจุบัน multiplex PCR
ทดสอบที่ใช้ห้าคู่ไพรเมอร์ได้รับการพัฒนา
พร้อมกันตรวจสอบ salm Enteritidis ลิตร monocytogenes
เชื้อ aureus, E O157 coli: H7 และดวลจุดโทษ flexneri
การประยุกต์ใช้วิธีการนี​​้ในการปนเปื้อนเทียม
และตัวอย่างเนื้อสัตว์ที่ปนเปื้อนตามธรรมชาติได้รับการตรวจสอบยัง
ดังนั้นการวิเคราะห์ multiplex PCR ปัจจุบัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

Staph หมอเทศข้างลายและเชิ้ต flexneri ถึง 107 CFU ml) 1 ใน
ระดับการเจริญเติบโตของ L. monocytogenes ซึ่งถึง
106 CFU ml) 1 ได้เล็กน้อยต่ำกว่าที่อื่น ๆ 4
โรค Multiplex PCR assay เดียวกันปนเปื้อน
ตัวอย่างหมูยังพบผลิตภัณฑ์ PCR ขยายบวก
สำหรับโรคเป้าหมาย ดังนั้น ขอ 24 h
อนุญาตทั้ง assays เพื่อตรวจสอบตัวอย่างปนเปื้อน
ลดระดับ (10–17 CFU g) ตัวอย่าง 1) และระดับสูง (1203–
1735 CFU g) ตัวอย่าง 1) ของโรคเป้าหมาย (ตาราง 3)
Multiplex PCR พัฒนาในการศึกษาปัจจุบันไม่สามารถ
ตรวจโรคห้าทั้งหมดพร้อมกันในการถูกแทง
หมูหลังจากเติมเต็ม 24 h.
Multiplex PCR และวัฒนธรรมวิธีตรวจ
ตัวอย่างปนเปื้อนตามธรรมชาติ
ตามผลลัพธ์ที่แสดงในตาราง 4 หลังจาก 24 h
บ่อ จำนวน 20 ตัวอย่าง หรือ 80% ทดสอบบวก
สำหรับหนึ่งหรือมากกว่าของสิ่งมีชีวิตเหล่านี้โดย multiplex PCR
วิเคราะห์ นี่อย่างปนเปื้อนตามธรรมชาติ 25, 15,
ตัวอย่างที่ 4 และ 13 ตามลำดับ มีค่าบวกสำหรับ
Salm Enteritidis, O157:H7 E. coli และ Staph หมอเทศข้างลายโดย
ทั้งสองวิธี ตัวอย่างหนึ่งคือ L. monocytogenes บวก
โดย multiplex PCR วิธี และตัวอย่างที่สองก็บวก
โดยวัฒนธรรมวิธีการ ตัวอย่างสองดีเชิ้ต flexneripositive
โดยวิธี multiplex PCR และตัวอย่างหนึ่ง
ถูกบวก โดยวิธีวัฒนธรรม เปรียบเทียบ
ผลลัพธ์ของสองวิธี เนื้อตัวอย่างเลข 4 ถูก
พบยังอาจปน L. monocytogenes โดย
วัฒนธรรมวิธีการ ในขณะที่ตัวอย่างนี้พบได้
ค่าลบสำหรับ L. monocytogenes โดยวิธีการ multiplex PCR
ไก่ตัวอย่างหมายเลข 2 พบมีการปนเปื้อน
กับเชิ้ต flexneri multiplex PCR วิธี ให้โดยในขณะที่
ตัวอย่างนี้ได้แสดงให้เห็นว่าการของเชิ้ต flexneri
โดยวัฒนธรรมวิธีการ แม้ มีความแตกต่างเล็กน้อย
เกิดขึ้น ผลจากการทดสอบการปนเปื้อนตามธรรมชาติ
ตัวอย่างตรวจสอบความเป็นไปได้ของการล็ก
ทดสอบ PCR รวมกับบ่อ multipathogen สำหรับ
ตรวจสอบเหล่านี้เป้าหมายโรคในตัวอย่างอาหาร
สนทนา
วิธีที่รวดเร็ว และแม่นยำพร้อมรหัส
ของ foodborne โรคจะเป็นมากขึ้น และ
สำคัญ (Dı´az Lo´ ลเปส et al. 2011) ก่อนหน้านี้
รายงานวิธีการล็ก PCR assay โดยปกติสำหรับ
โรคสอง หรือสาม ในการศึกษาปัจจุบัน การล็ก
ทดสอบ PCR ที่ใช้ไพรเมอร์ 5 คู่ได้รับการพัฒนา
พร้อมตรวจ Salm Enteritidis, L. monocytogenes,
Staph หมอเทศข้างลาย เชิ้ต flexneri และ O157:H7 E. coli
ใช้วิธีนี้ในปนเปื้อนเหือด
และตัวอย่างเนื้อสัตว์ปนเปื้อนตามธรรมชาติยัง
ตรวจสอบ ดังนั้น ในปัจจุบัน multiplex PCR assay

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

staph . sh flexneri และสุนัขจิ้งจอกถึง 107 CFU ,มล.) 1
ระดับการขยายตัวของ monocytogenes L .ซึ่งมาถึง
106 CFU ,มล.) 1 ที่เป็นเล็กน้อยต่ำกว่าอื่นๆสี่
ซึ่งจะช่วยให้เด็กนักเรียนเหล่านั้น มัลติเพล็กซ์ pcr สอบของตัวอย่าง
หมูเกิดการปนเปื้อนเดียวกันยังพบในเชิงบวก pcr - แอมพลิฟายสินค้า
ซึ่งจะช่วยให้เด็กนักเรียนเป้าหมาย ดังนั้นจึงมีผลทำให้ผล 24 - ชั่วโมงทำให้ร่ำรวย
assays ทั้งที่ได้รับอนุญาตให้พบตัวอย่างการปนเปื้อนด้วย
ระดับที่ต่ำกว่า(ตัวอย่าง 10-17 10-17 10-17 10-17 CFU , G ) 1 )และระดับสูง( 1203 -
1735 G CFU ,) 1 ตัวอย่าง)ของเด็กนักเรียนเป้าหมาย(โต๊ะ 3 ) จะ pcr แบบมัลติเพล็กซ์
ซึ่งจะช่วยพัฒนาขึ้นในปัจจุบันมีการศึกษามีความสามารถ
ซึ่งจะช่วยในการตรวจจับห้าเด็กนักเรียนได้พร้อมกันในที่เครื่องเซ่นไหว้
เนื้อหมูหลังจาก 24 - ชั่วโมงทำให้ร่ำรวย.
แบบมัลติเพล็กซ์ pcr และวิธีการแบบดั้งเดิมวัฒนธรรมการตรวจจับ
ของอย่างเป็นธรรมชาติเกิดการปนเปื้อนตัวอย่าง
ซึ่งจะช่วยให้ผลการแสดงไว้ในตารางที่ 4 ,หลังจากความร่ำรวย 24 - ชั่วโมง
รวม 2080% หรือตัวอย่างการทดสอบในเชิงบวก
สำหรับหนึ่งหรือมากกว่าของสิ่งมีชีวิตเหล่านี้ได้โดยพยายาม pcr
แบบมัลติเพล็กซ์ ในจำนวน 25 ตัวอย่างอย่างเป็นธรรมชาติเกิดการปนเปื้อนที่ 15
4 และ 13 ตัวอย่างตามลำดับอยู่ในเชิงบวกสำหรับ
salm enteritidis ผล o157 : H 7 และ staph .สุนัขจิ้งจอกโดยวิธีใดวิธีหนึ่ง
ทั้งสอง. หนึ่งตัวอย่างเป็นแอล monocytogenes - บวก
โดยใช้วิธีการ pcr มัลติเพล็กซ์และสองตัวอย่างเป็นบวก
โดยใช้วิธีการทางวัฒนธรรม. สองตัวอย่างเป็นวิธีการ SH flexneripositive
โดย pcr แบบมัลติเพล็กซ์และหนึ่งตัวอย่าง
เป็นบวกโดยใช้วิธีการทางวัฒนธรรม การเปรียบเทียบ
ผลของทั้งสองวิธีที่เนื้อตัวอย่างหมายเลข 4 เป็น
พบว่าจะเกิดการปนเปื้อนด้วย monocytogenes แอลโดยใช้วิธีการ
ทางวัฒนธรรมในขณะที่ตัวอย่างนี้เป็น
ซึ่งจะช่วยลบสำหรับ monocytogenes แอลโดยใช้วิธีการ pcr แบบมัลติเพล็กซ์.
ไก่ตัวอย่างหมายเลขสองมาพบว่าจะมีการปนเปื้อน
flexneri SH โดยใช้วิธีการ pcr แบบมัลติเพล็กซ์ในขณะที่
ตัวอย่างนี้ก็แสดงให้เห็นจะไม่อยู่ของ SH flexneri
โดยใช้วิธีการทางวัฒนธรรมแบบดั้งเดิม แม้ว่าจะมีความแตกต่างกันเล็กน้อยบาง
เกิดขึ้นผลที่ได้จากการทดสอบอย่างเป็นธรรมชาติเกิดการปนเปื้อน
ตัวอย่างการตรวจสอบความเป็นไปได้ที่การสอบแบบมัลติเพล็กซ์
pcr ซึ่งประกอบไปด้วยความร่ำรวย multipathogen สำหรับ
การตรวจจับเหล่านี้เป้าหมายเด็กนักเรียนในอาหารตัวอย่าง.

ซึ่งจะช่วยการ อภิปราย อย่างรวดเร็วและแม่นยำวิธีสำหรับการระบุตัวตนเกิดขึ้นพร้อมกัน
ของเด็กนักเรียนมาใช้ประโยชน์ได้มากขึ้นและ
ซึ่งจะช่วยเพิ่มความสำคัญ( dı ' az - Lo ' pez et al . 2011 ) ก่อนหน้านี้
ซึ่งจะช่วยแจ้งว่าวิธีการของ pcr แบบมัลติเพล็กซ์สอบปกติสำหรับ
สองหรือสามเด็กนักเรียน ในการศึกษาในปัจจุบันที่พยายาม
pcr แบบมัลติเพล็กซ์ที่ใช้ 5 คู่ของ primers ได้รับการพัฒนาขึ้น
ในการตรวจหา salm พร้อมกัน แอล. enteritidis monocytogenes
staph .สุนัขจิ้งจอกและมีเพียงเชื้ออี. E . o157 : H 7 และ SH flexneri . ตัวอย่างเนื้อ
แอปพลิเคชันของวิธีการนี้อาจเกิดการปนเปื้อนใน
ซึ่งจะช่วยการปนเปื้อนและเป็นธรรมชาติที่มีการตรวจสอบยัง
ดังนั้นจึงพยายาม pcr แบบมัลติเพล็กซ์ในปัจจุบัน