abstractArticle history:Received 8

abstract
Article history:
Received 8 July 2009
Accepted 21 July 2009
Available online 28 July 2009
Keywords:
TMAH treatment
Microwave-assisted digestion
Biological samples
CV AAS
Mercury fractionation
A simple and reliable method to determine total and inorganic mercury in biological certified reference
material (CRM) by cold vapor atomic absorption spectrometry (CV AAS) is proposed. After the CRM
treatment at room temperature with tetramethylammonium hydroxide (TMAH), inorganic mercury is
determined by CV AAS. Total mercury is measured by the same technique, after sample acid digestion in a
microwave oven. Organic mercury, basically methylmercury, is obtained by difference. In both procedures,
the quartz tube is kept at room temperature. By means of analysis of the following reference materials: pig
kidney, lobster hepatopancreas, dogfish liver and mussel tissue, it was clear that the difference between the
total and inorganic mercury concentrations agrees with the methylmercury concentration. Only one
calibration curve against aqueous standards in acidic medium was carried out for both procedures. The
concentrations obtained by both procedures are in agreement with the certified values according to the t-test
at a 95% confidence level. The relative standard deviations were lower than 3.0% for digested CRM and 6.0%
for CRM treated with TMAH for most of the samples. The limits of detection in the samples were 0.02 µg g−1
and 0.04 µg g−1 for inorganic and total Hg, respectively, since the sample mass for total mercury was half of
that for inorganic mercury determination. Simplicity and high efficiency without using chromatographic
techniques are some of the qualities of the proposed method, being adequate for fractionation analysis of
mercury in biological samples.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

บทคัดย่อบทความประวัติ:ได้รับ 8 2552 กรกฎาคมยอมรับ 21 2552 กรกฎาคมออนไลน์อยู่ 28 2552 กรกฎาคมคำสำคัญ:รักษา TMAHไมโครเวฟช่วยย่อยอาหารตัวอย่างทางชีวภาพCV AASแยกปรอทวิธีการง่าย ๆ และเชื่อถือได้เพื่อตรวจสอบสารปรอทอนินทรีย์ และรวมในการอ้างอิงที่ได้รับการรับรองทางชีวภาพมีเสนอวัสดุ (CRM) โดยไอเย็นดูดกลืนโดยอะตอม spectrometry (CV AAS) หลังจาก CRMรักษาที่อุณหภูมิห้องด้วยไฮดรอกไซด์ tetramethylammonium (TMAH), ปรอทอนินทรีย์เป็นกำหนด โดย CV AAS ปรอททั้งหมดจะถูกวัด โดยเทคนิคเดียวกัน หลังจากตัวอย่างกรดย่อยอาหารในตัวเตาอบไมโครเวฟ สารปรอทอินทรีย์ พื้น methylmercury จะได้รับ โดยความแตกต่าง ในทั้งสองขั้นตอนหลอดควอตซ์จะถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิห้อง โดยการวิเคราะห์เอกสารอ้างอิงต่อไปนี้: หมูไต กุ้งก้ามกราม hepatopancreas, dogfish ตับ และเนื้อเยื่อของหอยแมลงภู่ มันก็ชัดเจนว่าแตกต่างกันความเข้มข้นของปรอทอนินทรีย์ และรวมเห็นด้วยกับความเข้มข้นของ methylmercury เพียงหนึ่งกราฟปรับเทียบกับสารละลายมาตรฐานเป็นกรดกลางได้ดำเนินการสำหรับกระบวนการทั้งสอง การความเข้มข้นได้ โดยขั้นตอนทั้งสองอยู่ในข้อตกลงค่ารับรองตามทดสอบ tที่ระดับความเชื่อมั่น 95% ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ได้ต่ำกว่า 3.0% สำหรับ CRM ย่อยและ 6.0%สำหรับ CRM รักษา ด้วย TMAH สำหรับตัวอย่าง ข้อจำกัดของการตรวจสอบในตัวอย่างได้ 0.02 µg g−1และ 0.04 µg g−1 สำหรับปรอทอนินทรีย์ และรวม ลำดับ ตั้งแต่มวลตัวอย่างสำหรับปรอทรวมครึ่งหนึ่งของที่วัดปริมาณปรอทอนินทรีย์ ความเรียบง่ายและมีประสิทธิภาพสูงโดยโครมาเทคนิคมีคุณภาพของวิธีการนำเสนอ การเพียงพอสำหรับการวิเคราะห์แยกปรอทในตัวอย่างทางชีวภาพ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

นามธรรม
ประวัติศาสตร์บทความ
ที่ได้รับ 8 กรกฎาคม 2009
ได้รับการยอมรับ 21 กรกฎาคม 2009
พร้อมใช้งานออนไลน์ 28 กรกฎาคม 2009
คำสำคัญ:
TMAH รักษา
ไมโครเวฟช่วยย่อยอาหาร
ตัวอย่างทางชีวภาพ
CV AAS
ปรอทแยก
วิธีที่ง่ายและน่าเชื่อถือในการตรวจสอบสารปรอทรวมและอนินทรีในการอ้างอิงทางชีวภาพได้รับการรับรอง
วัสดุ (CRM) โดยไอเย็นดูดซึมอะตอม spectrometry (CV AAS) จะเสนอ หลังจากที่ CRM
รักษาที่อุณหภูมิห้องกับ Tetramethylammonium ไฮดรอกไซ (TMAH) ปรอทอนินทรี
กำหนดโดย CV AAS ปรอทรวมเป็นวัดโดยใช้เทคนิคเดียวกันหลังจากกรดตัวอย่างการย่อยอาหารใน
เตาไมโครเวฟ ปรอทอินทรีย์พื้นเมทิลจะได้รับโดยความแตกต่าง ในขั้นตอนการทั้งสอง
หลอดควอทซ์จะถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิห้อง โดยวิธีการของการวิเคราะห์วัสดุอ้างอิงต่อไปนี้: หมู
ไตตับกุ้ง, ตับปลาฉลามหนูและเนื้อเยื่อหอยแมลงภู่เป็นที่ชัดเจนว่าความแตกต่างระหว่าง
ความเข้มข้นของสารปรอทรวมและอนินทรีเห็นด้วยกับความเข้มข้นของเมทิล เพียงคนเดียวที่
สอบเทียบกับมาตรฐานโค้งน้ำในสื่อที่เป็นกรดได้ดำเนินการขั้นตอนทั้งสอง
ความเข้มข้นที่ได้รับโดยวิธีการทั้งสองอยู่ในข้อตกลงที่มีค่าได้รับการรับรองให้เป็นไปตาม t-test
ที่ระดับความเชื่อมั่น 95% เบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ต่ำกว่า 3.0% สำหรับย่อย CRM และ 6.0%
สำหรับการรักษาด้วย CRM TMAH สำหรับกลุ่มตัวอย่างส่วนใหญ่ ข้อ จำกัด ของการตรวจสอบในตัวอย่างเป็น 0.02 ไมโครกรัมต่อกรัม-1
และ 0.04 ไมโครกรัม G-1 สำหรับนินทรีย์และรวมปรอทตามลำดับเนื่องจากมวลตัวอย่างสำหรับปรอทรวมเป็นครึ่งหนึ่งของ
ที่สำหรับการกำหนดปรอทนินทรีย์ ความเรียบง่ายและมีประสิทธิภาพสูงโดยไม่ต้องใช้สาร
เทคนิคบางส่วนของคุณภาพของวิธีการที่นำเสนอเป็นที่เพียงพอสำหรับการวิเคราะห์แยกของ
สารปรอทในตัวอย่างทางชีวภาพ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

บทคัดย่อบทความ : ประวัติได้รับ 8 กรกฎาคม 2552ยอมรับ 21 กรกฎาคม 2552ออนไลน์ 28 กรกฎาคม 2552คำสำคัญ :tmah รักษาช่วยย่อยอาหาร ไมโครเวฟตัวอย่างทางชีวภาพพันธุ์ธรรมชาติส่วนดาวพุธง่ายและเชื่อถือได้วิธีการตรวจสอบทั้งหมดและอนินทรีย์ ปรอทในอ้างอิงทางชีวภาพวัสดุ ( CRM ) โดย Atomic absorption spectrometry ( ไอเย็นและ AAS ) เสนอ หลังจาก CRMการรักษาที่อุณหภูมิห้องกับ tetramethylammonium โซดาไฟ ( tmah ) , ปรอทอนินทรีย์ คือกำหนดโดย CV AAS . ปรอททั้งหมดจะถูกวัดโดยวิธีเดียวกัน หลังจากตัวอย่างกรดย่อยอาหารในเตาไมโครเวฟ ปรอทอินทรีย์โดยทั่วไปเมทิลเมอร์คิวรีได้แตกต่าง ทั้งในกระบวนการควอตซ์หลอด เก็บไว้ที่อุณหภูมิห้อง โดยวิธีการของการวิเคราะห์ต่อไปนี้วัสดุอ้างอิง : หมูไต , ตับและเนื้อเยื่อตับปลาฉลามหนูกุ้ง หอยแมลงภู่ ชัดเจนว่า ความแตกต่างระหว่างและความเข้มข้นของปรอทอนินทรีย์ทั้งหมดเห็นด้วยกับเมทิลเมอร์คิวรีความเข้มข้น หนึ่งเท่านั้นเส้นปรับเทียบกับมาตรฐานน้ำในอาหารที่เป็นกรด ทำทั้งกระบวนการ ที่ความเข้มข้นที่ได้จากกระบวนการทั้งสองอยู่ในข้อตกลงกับค่ารับรองตามสถิติที่ระดับความเชื่อมั่น 95 % เบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ต่ำกว่า 3.0% สำหรับย่อย CRM และ 6.0 %สำหรับ CRM ที่ได้รับ tmah สำหรับส่วนใหญ่ของกลุ่มตัวอย่าง ขอบเขตของการตรวจสอบภายในจำนวน 0.02 µ G G − 1และ 0.04 µ G G − 1 สำหรับการรวมปรอทตามลำดับ เนื่องจากมวลจำนวนรวมเป็นครึ่งหนึ่งของปรอทให้ปรอทอนินทรีย์ ความมุ่งมั่น ความเรียบง่ายและมีประสิทธิภาพสูง โดยใช้โครมาโทกราฟีเทคนิคบางคุณภาพของวิธีที่นำเสนอ มีเพียงพอสำหรับการวิเคราะห์องค์ประกอบของปรอทในตัวอย่างทางชีวภาพ