All samples were freeze-dried, and

All samples were freeze-dried, and these dried samples
were used in the isoflavone analyses. Approximately,
0.3 g of finely ground raw soybean, 0.15 g of
soaked soybean, 0.05 g of slurry, 0.5 g of dried beverage
of okara, 0.5 g of tofu, and 0.2 g of whey were
weighed into 125 ml flat bottom flasks, and 12 ml of
extraction solution (acetonitrile: 0.1 N HCl in 5:1 ratio)
was added to each flask. The solution was mixed using
a rotary shaker (120 rpm) overnight at room temperature.
Extracts were suction filtered into 250 ml round
bottom flasks through Whatman No.42 filter paper and
washed twice with 12 ml volumes of extraction solution.
Samples were condensed to approximately 1 ml
using a vacuum rotary evaporator (Bu¨ chi, Brinkmann,
Switzerland) with a water bath at 30 °C. The dried
material was re-dissolved in a mixture of
methanol:water (80:20,v:v) to a final volume of 10 ml
and filtered through a 0.22
￿
m PTFE syringe filter
(MSI, Westboro, MA) prior to HPLC analysis (modification
of Wang and Murphy, [16]). All steps were
performed in reduced light conditions to minimize
light-induced isoflavone degradation.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างทั้งหมดได้กรอบ และเหล่านี้แห้งตัวอย่างที่ใช้ในวิเคราะห์ isoflavone ประมาณ0.3 g ประณีตดินดิบกากถั่วเหลือง 0.15 g ของถั่วเหลือง 0.05 g ของสารละลาย 0.5 g เครื่องดื่มแห้งที่เปี่ยมล้นไปด้วยokara, 0.5 g ของเต้าหู้ และ 0.2 g ของเวย์ได้ชั่งน้ำหนักน้ำก้น 125 ml และ 12 ml ของโซลูชั่นสกัด (acetonitrile: 0.1 N HCl ในอัตราส่วน 5:1)มีเพิ่มการหนาวละ โซลูชันถูกผสมโดยใช้แบบโรตารี่เชคเกอร์ (120 rpm) ค้างคืนที่อุณหภูมิห้องบางส่วนถูกดูดกรองเข้ารอบ 250 mlสุดท้ายน้ำโดยใช้กระดาษกรอง Whatman No.42 และล้างสองครั้ง ด้วยปริมาณ 12 ml ของสกัดตัวอย่างถูกบีบให้ประมาณ 1 mlใช้เครื่องโรตารี่ evaporator (Bu¨ ชี Brinkmannสวิสเซอร์แลนด์) กับห้องน้ำที่ 30 องศาเซลเซียส ที่แห้งวัสดุไม่ละลายอีกครั้งในส่วนผสมของเมทานอล: น้ำ (80:20, v: v) ปริมาตรสุดท้ายของ 10 mlและกรองผ่านการ$ 0.22�m ไฟเบอร์เข็มตัวกรอง(MSI, Westboro, MA) ก่อนวิเคราะห์ HPLC (ปรับเปลี่ยนวังและเมอร์ฟี่, [16]) ขั้นตอนทั้งหมดได้ดำเนินการในสภาพแสงน้อยลงเพื่อลดเซรามิก isoflavone เกิดแสง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างทั้งหมดถูกแช่แข็งแห้งและแห้งตัวอย่างเหล่านี้ถูกนำมาใช้ในการวิเคราะห์ isoflavone
ประมาณ
0.3 กรัมบดละเอียดถั่วเหลืองดิบ 0.15
กรัมของถั่วเหลืองแช่, 0.05 กรัมของสารละลาย 0.5
กรัมเครื่องดื่มแห้งของกากถั่วเหลือง, 0.5 กรัมเต้าหู้และ 0.2
กรัมของเวย์ได้รับการชั่งน้ำหนักเข้า125 มล. ขวดด้านล่างแบน, และ 12 มล.
ของการแก้ปัญหาการสกัด(acetonitrile: 0.1 N HCl 5: 1)
ถูกบันทึกอยู่ในแต่ละขวด วิธีการแก้ปัญหาที่ถูกผสมโดยใช้เครื่องปั่นหมุน (120 รอบต่อนาที) ในชั่วข้ามคืนที่อุณหภูมิห้อง. สารสกัดถูกดูดกรองลงใน 250 มลรอบขวดด้านล่างผ่านครั้งที่ 42 เบอร์กระดาษกรองและล้างครั้งที่สองกับ12 มล. ปริมาณของการแก้ปัญหาการสกัด. ตัวอย่างข้นประมาณ 1 มล. โดยใช้เครื่องดูดฝุ่นเครื่องระเหยแบบหมุน (บุชิ Brinkmann, วิตเซอร์แลนด์) กับอ่างน้ำที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส แห้งวัสดุเป็นอีกครั้งที่ละลายในส่วนผสมของเมทานอล: น้ำ (80: 20, โวลต์: V) ปริมาณสุดท้ายของ 10 มล. และกรองผ่าน 0.22 ??? มกรอง PTFE เข็มฉีดยา(MSI, Westboro, MA) ก่อน การวิเคราะห์ HPLC (การเปลี่ยนแปลงของวังและเมอร์ฟี่[16]) ขั้นตอนทั้งหมดถูกดำเนินการในสภาพแสงที่ลดลงเพื่อลดการย่อยสลายisoflavone แสงที่เกิดขึ้น

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

คุณทำให้ฉันแทบบ้าคุณทำให้ฉันแทบบ้าคุณทำให้ฉันแทบบ้า