Histology and electron microscopypr

Histology and electron microscopy
processed routinely for histology, sectioned at 5 lm and stained
with haemotoxylin and eosin (H&E), Giemsa, and Chromotrope
2R modified trichrome (Weber et al., 1992). For TEM, small pieces
(2 mm3) of hepatopancreatic tissue from the same shrimp specimens
were fixed in 2.5% glutaraldehyde and 4% paraformaldehyde,
or 6% glutaraldehyde, in Millonig buffer followed by washing in
three changes of 0.1 M sodium cacodylate buffer and stained en
bloc in 0.5% aqueous uranyl acetate for 1 h. The fixed tissues were
embedded in epoxy resin 812 (Agar Scientific-pre-mix kit 812) following
dehydration through a graded acetone series. Thick sections
were stained with Toluidine Blue for viewing with a light microscope
to identify sections with suitable target areas. Ultra thin sections
(70–90 nm) of these samples were mounted on uncoated
copper grids and stained with uranyl acetate and Reynolds’ lead
citrate. Sections were examined using a JEOL 1210 transmission
electron microscope.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

มิญชวิทยาและอิเล็กตรอน microscopyดำเนินการเป็นประจำสำหรับมิญชวิทยา การจัดแบ่งเป็นส่วน ๆ ที่ 5 lm และทิ้งคราบhaemotoxylin eosin (H & E), Giemsa และ Chromotrope2R แก้ไข trichrome (แบ่งแยก et al., 1992) สำหรับยการ ขนาดเล็ก(2 mm3) ของเนื้อเยื่อ hepatopancreatic จาก specimens กุ้งเหมือนกันมีถาวร glutaraldehyde 2.5% และ 4% paraformaldehydeหรือ 6% glutaraldehyde ในบัฟเฟอร์ Millonig ตามล้างในการเปลี่ยนแปลง 3 0.1 M โซเดียม cacodylate บัฟเฟอร์และทิ้งคราบน้ำค่ายใน acetate uranyl อควี 0.5% สำหรับ 1 h เนื้อเยื่อถาวรได้ฝังอยู่ในอีพ๊อกซี่เรซิ่น 812 (Agar วิทยาศาสตร์พื้นฐานผสมชุด 812) ต่อไปนี้การคายน้ำผ่านชุดอะซีโตนที่มีการจัดระดับ ส่วนหนามีสี ด้วย Toluidine สีดู ด้วยกล้องจุลทรรศน์แสงระบุส่วนกับพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม ส่วนที่บางเป็นพิเศษ(70 – 90 nm) ตัวอย่างเหล่านี้ถูกติดตั้งบนเคลือบทองแดงกริด และสี uranyl acetate และลูกค้าเป้าหมายของเรย์โนลด์สซิเต ส่วนตรวจสอบใช้ส่ง JEOL 1210กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

จุลและกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน
การประมวลผลเป็นประจำสำหรับจุลแบ่งที่ 5 LM และย้อมสี
ด้วย haemotoxylin และ Eosin (H & E), Giemsa และ Chromotrope
2R แก้ไข trichrome (เวเบอร์ et al., 1992) สำหรับ TEM, ชิ้นเล็ก ๆ
(2 mm3) ของเนื้อเยื่อ Hepatopancreatic จากตัวอย่างกุ้งเดียวกัน
ได้รับการแก้ไขใน glutaraldehyde 2.5% และ 4% paraformaldehyde,
หรือ glutaraldehyde 6% ใน Millonig บัฟเฟอร์ตามด้วยการซักผ้าใน
สามการเปลี่ยนแปลงที่ 0.1 M โซเดียมบัฟเฟอร์ cacodylate และย้อมสี en
กลุ่ม 0.5% อะซิเตท uranyl น้ำเป็นเวลา 1 ชั่วโมง เนื้อเยื่อคงถูก
ฝังอยู่ในอีพ็อกซี่เรซิน 812 (วุ้นชุดวิทยาศาสตร์ก่อนผสม 812) ดังต่อไปนี้
การคายน้ำผ่านชุดอะซิโตนช้า ส่วนหนา
ถูกย้อมด้วยสีฟ้า toluidine สำหรับการดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง
ในการระบุส่วนที่มีพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม ส่วนที่บางเป็นพิเศษ
(70-90 นาโนเมตร) ของกลุ่มตัวอย่างเหล่านี้ถูกติดตั้งอยู่บนเคลือบผิว
กริดทองแดงและย้อมด้วยสีอะซิเตท uranyl และนำไปสู่นาดส์
ซิเตรต ส่วนที่มีการตรวจสอบโดยใช้ JEOL 1210 ส่ง
กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ลักษณะจุลทรรศน์อิเล็กตรอนและตรวจเนื้อเยื่อ
ประมวลผลเพื่อแบ่ง 5 อิมกับ haemotoxylin และ eosin คราบ
( H & E ) , จิมซา และ chromotrope
2R ดัดแปลงเทคนิค ( Weber et al . , 1992 ) สำหรับทีมเล็กชิ้น
( 2 มม. ) ของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อจากตัวอย่างกุ้ง
ถูกกำหนดในแบบดี 2.5 % และ 4 % หรือ 6 % glutaraldehyde พาราฟอร์มาลดิไฮด์
, ,ใน millonig บัฟเฟอร์ตามด้วยล้าง
3 การเปลี่ยนแปลงของ 0.1 โมลาร์โซเดียมเฟอร์คราบ EN
จากนั้นนำหมู่ 0.5% สารละลายยูเรนิลอะซิเตตสำหรับ 1 ชั่วโมงคงถูกฝังอยู่ในเนื้อเยื่อ
อีพอกซีเรซิน 812 ( วุ้นทางวิทยาศาสตร์ก่อนผสมชุด 812 ) ต่อไปนี้
น้ำผ่านระดับ สำหรับชุด ความหนาส่วน
ถูกย้อมด้วยโทลูอิดีนสีฟ้าสำหรับการรับชมด้วย
กล้องจุลทรรศน์แสงเพื่อระบุส่วนที่มีพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม พิเศษบางส่วน
( 70 – 90 nm ) ของตัวอย่างเหล่านี้ถูกติดตั้งบนกริดและย้อมด้วยสีเคลือบ
ทองแดงและตะกั่วอะซิเตทยูเรนิล Reynolds '
ซิเตรต . ส่วนมีการใช้จอลฮะ


ส่งกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน .