3 Leaf (frond)samplingObjectivesTo

3 Leaf (frond)
sampling


Objectives

To determine the nutritional status of leaflets from frond #9 on immature palms and frond #17 on mature palms to assist with the preparation of annual fertilizer programmes.

Standards

The appropriate frond is correctly sampled in each LSU palm in each field nominated for leaf sampling.

A composite sample, including leaf material from each LSU palm is provided for each field nominanted for leaf sampling.

Leaf sampling must follow procedures very carefully to avoid sample contamination.

Frond #17 is used to allow year-on-year comparisons and to compare results with established critical nutrient levels (Tables A1 and A2).

Leaf samples are analyzed for N, P, K, Mg, Ca, B, Cu, Zn. Other nutrients may be included for palms planted on particular soil types.

Leaf sampling is carried out once each year but monthly sampling of a few LSU fields is required to determine seasonal fluctuations in leaf nutrient levels.

Procedures

Frond #17 is sampled from the labelled reference LSU palms in some or all fields in a leaf sampling unit (LSU) and prepared for analysis.

Cleanliness is essential at all stages to prevent sample contamination.

Collect samples between 6.30 am and 12.00 noon.

1 Locate the LSU palm and ensure that each is in a healthy condition. The LSU marking system (every tenth tree in every tenth row) will result in a 1% sample.
2 Abnormalities and deficiency symptoms
(for N, P, K, Mg, B and Cu) identified on

LSU palms are recorded at sampling. Record the petiole cross-section (PCS) and frond production rate if required (Appendix 6).
3 Frond #17 is located by counting from the first fully open frond in the centre of the crown (frond #1) and removed with a sickle or chisel (see Ng et al., this volume).
4 The frond is cut into three approximately equal sections. The tip and base sections are discarded and placed in the frond stack.
5 Twelve leaflets are selected and removed from each frond. Six leaflets are cut from each side at the mid-point of the frond section. Ensure that the 12 leaflets comprise three from the upper rank and three from the lower rank from each side of the rachis.
6 The leaflet samples from each field (or smaller area if required) are put together in a large labelled plastic bag. About 500 leaflets are collected for each field of 30 ha (e.g. 30 ha x 136 palms ha-1 x 1% sampling points x 12 leaflets)
7 The samples are then sent to the estate laboratory or sample preparation room for further preparation.
8 The leaflets are bundled and trimmed to retain the 20–30 cm midsection.
9 It is not necessary to wash the leaves!
10 The mid-rib of each leaflet section is removed and discarded.
11 The remaining parts of the leaflets (lamina) are then cut into small pieces 2 cm long and placed on aluminum trays to be dried.
12 The samples must be clearly labelled at all stages of the process.
13 The leaflets are dried in a fan-assisted oven for 48 hours (65 ºC) or 24 hours (105 ºC). Leaf N concentration will be reduced if the temperature in the oven exceeds 105 ºC!
14 After drying, the leaflets are placed in labelled plastic bags.
15 The sample is divided into two. Half is retained as a backup and for future reference (stored in a cool, dry place) and half is submitted for analysis.
16 It is recommended that leaf samples be ground at the estate before they are sent for analysis. This reduces processing time (and cost) for analysis and allows the

estate to carry out important cross- checking on laboratory analysis quality.
Leaf sampling is usually carried out once each year. More frequent sampling may be required to examine specific areas or to investigate particular nutritional problems.

Leaf sampling should be done at the same time each year and not during very wet or very dry periods. Complete the sampling procedure in the shortest possible time.

Tentative critical leaf nutrient levels are given in Table A1 and A2.

Notes

Annual frond analyses should be inter- preted in conjunction with soil analysis data, field inspections, and compared to results from previous years. Use of a suitable agronomic database will allow for more efficient data storage and the analysis of trends.
Sample a few LSU fields at monthly intervals to determine magnitude of seasonal fluctuations in leaf nutrient levels.
Frond #9 is used for leaf analysis in young palms, but results may be difficult to interpret. The usual practice is to delay sampling until frond #17 can be used (i.e. at least four years after planting).
Samples should be taken at least three months after a fertilizer application so that leaf sampling results are not affected by

fertilizer applied recently. In the first three years after planting, application of fertilizer may be done at frequent intervals and there may not, therefore, be any three-month period during which no fertilizer has been applied.
Since fertilizer costs are such a large part of total field costs it is essential to verify that the laboratory carrying out leaf analysis is reliable. The service laboratory must be checked each year by submitting cross-check samples. For this purpose, prepare a large homogenous bulk sample of dry ground leaf material from frond #17 and store in a cool, dry place. Submit five sub-samples with each estate consign- ment. These five samples are to used to test the variability in analysis within a batch and over time. If laboratory analyses show unacceptable variation within a batch of samples or between years, the analysis must be repeated.
A second cross-check is to include 5–10 identical paired samples with each sample consignment. Plot the results in a graph. The point plotted for each pair of samples should lie on or close to a 1:1 straight line in the graph.

Source: (1) Rankine, I.R. and Fairhurst, T.H. (1999) Field Handbook: Oil Palm Series Volume 3 – Mature. (Oil Palm Series), 2nd. ed. PPI/ PPIC and 4T Consultants (4T), Singapore, 135p. (2) Fairhurst, T. (1998) Nutrient Deficiency Symptoms and Disorders in Oil Palm (Elaeis guineensis Jacq. ). Pocket Guide. PPI, Singapore, 31p.

Table A1. Critical nutrient concentration ranges of frond #17 in young palms (6 years).

Table A2. Critical nutrient concentration ranges of frond #17 in older palms (6 years).

Element
N (%) P (%) K (%)
Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%)
B (mg kg-1) Cu (mg kg-1) Zn (mg kg-1)


Deficiency
80


Element
N (%) P (%) K (%)
Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%)
B (mg kg-1) Cu (mg kg-1) Zn (mg kg-1)


Deficiency
80

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3 ใบ (frond)สุ่มตัวอย่างวัตถุประสงค์เพื่อกำหนดสถานะโภชนาการของแผ่นพับจาก frond #9 บนปาล์ม immature frond #17 บนปาล์มผู้ใหญ่ให้ความช่วยเหลือ ด้วยการจัดทำโครงการปุ๋ยประจำปีมาตรฐานFrond ที่เหมาะสมได้ถูกความในปาล์มแต่ละชุดปั๊มหมึกในแต่ละเขตข้อมูลที่สุ่มตัวอย่างใบเสนอตัวอย่างคอมโพสิต รวมถึงวัสดุใบไม้จากปาล์มแต่ละชุดปั๊มหมึกไว้สำหรับ nominanted แต่ละฟิลด์สำหรับเก็บตัวอย่างใบไม้สุ่มตัวอย่างใบไม้ต้องปฏิบัติตามขั้นตอนอย่างระมัดระวังมากเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของตัวอย่างใช้ frond #17 ให้เปรียบเทียบในปี และเปรียบเทียบผลลัพธ์มีระดับขึ้นสำคัญธาตุอาหาร (ตาราง A1 และ A2)มีวิเคราะห์ตัวอย่างใบสำหรับ N, P, K, Mg, Ca, B, Cu, Zn สารอาหารอื่น ๆ อาจจะรวมไว้สำหรับปาล์มที่ปลูกในดินบางชนิดสุ่มตัวอย่างใบไม้จะดำเนินเมื่อแต่ละปีแต่สุ่มตัวอย่างประจำเดือนของกี่ชุดปั๊มหมึกจะต้องกำหนดความผันผวนตามฤดูกาลในลีฟระดับธาตุอาหารขั้นตอนการFrond #17 ตัวอย่างจากปาล์มชุดปั๊มหมึกมันอ้างอิงในฟิลด์บางส่วน หรือทั้งหมดในหน่วยสุ่มใบ (ชุดปั๊มหมึก) และเตรียมพร้อมสำหรับการวิเคราะห์ความสะอาดเป็นสำคัญในทุกขั้นตอนเพื่อป้องกันการปนเปื้อนของตัวอย่างตัวอย่างที่เก็บรวบรวมระหว่าง 06.30 น.เที่ยง 12.00 น.1 ค้นหาปาล์มชุดปั๊มหมึก และมั่นใจว่า แต่ละในเงื่อนไขสุขภาพ ชุดปั๊มหมึกเครื่องระบบ (ทุกสิบภูมิในทุก ๆ แถวที่สิบ) จะส่งผลในตัวอย่าง 1%2 ความผิดปกติและอาการที่ปรากฏ(สำหรับ N, P, K, Mg บี และ Cu) ระบุใน ชุดปั๊มหมึกปาล์มจะถูกบันทึกที่สุ่มตัวอย่าง บันทึกระหว่างส่วน petiole (PCS) และอัตราการผลิต frond ถ้าจำเป็น (ภาคผนวก 6)3 อยู่ โดยนับจาก frond เปิดเต็มแรกของคราวน์ (frond #1) และเอาเคียวหรือสิ่ว frond #17 (ดู Ng et al. ไดรฟ์ข้อมูลนี้)4 frond ถูกตัดเป็นสามส่วนเท่ากันโดยประมาณ คำแนะนำและส่วนฐานมีปฏิเสธ และวางไว้ในกองซ้อน frond5 สิบสองแผ่นพับเลือก และลบออกจากแต่ละ frond แผ่นพับ 6 ถูกตัดจากด้านข้างแต่ละจุดของ frond ส่วนกลาง ให้แน่ใจว่า แผ่นพับ 12 ประกอบด้วยสามตั้งแต่ด้านบนและจากอันดับต่ำลงจากแต่ละด้านของ rachis สาม6 ตัวอย่างอุปกรณ์จากแต่ละเขต (หรือเล็กถ้าจำเป็น) จะใส่กันในถุงพลาสติกมันใหญ่ แผ่นพับเกี่ยวกับ 500 รวบรวมสำหรับแต่ละฟิลด์ 30 ฮา (เช่น 30 ฮา x 136 ปาล์มฮา-1 x 1% สุ่มตัวอย่างจุด x 12 แผ่นพับ)7 ตัวอย่างแล้วส่งทรัพย์ห้องปฏิบัติการหรือตัวอย่างการเตรียมห้องสำหรับเตรียมสอบเพิ่มเติมแผ่นพับ 8 รวม และตัดการรักษา midsection 20 – 30 ซม.9 ไม่จำเป็นต้องล้างใบ10 ซี่โครงตัวกลางของแต่ละส่วนอุปกรณ์ถูกเอาออก และละทิ้ง11 เหลือส่วนของแผ่นพับ (lamina) มี แล้วตัดเป็นขนาดเล็กชิ้น 2 ซม.ยาว และวางไว้บนถาดอลูมิเนียมจะแห้ง12 ตัวอย่างต้องสามารถ labelled ที่ทุกขั้นตอนของกระบวนการอย่างชัดเจน13 แผ่นพับจะแห้งในช่วยพัดลมเตาอบภาย ใน 48 ชั่วโมง (65 ºC) หรือ 24 ชั่วโมง (105 ºC) ลีฟ N เข้มข้นจะลดลงอุณหภูมิในเตาอบเกินกว่า 105 ºC14 หลังแห้ง แผ่นพับที่อยู่ในถุงพลาสติกมัน15 ตัวอย่างถูกแบ่งออกเป็นสอง ครึ่งหนึ่งจะถูกเก็บไว้เป็นสำเนาสำรอง และสำหรับอ้างอิงในอนาคต (เก็บไว้ในเย็น แห้ง) และครึ่งหนึ่งมีส่งวิเคราะห์16 แนะนำตัวอย่างใบไม้ที่ เป็นพื้นดินที่ทรัพย์สินก่อนที่จะส่งการวิเคราะห์ ทำให้ลดเวลา (และต้นทุน) สำหรับการวิเคราะห์ และให้การ อสังหาริมทรัพย์เพื่อดำเนินการสำคัญข้าม-การตรวจสอบในห้องปฏิบัติการวิเคราะห์คุณภาพโดยปกติจะดำเนินการสุ่มตัวอย่างใบออกปีละครั้ง สุ่มตัวอย่างบ่อยขึ้นอาจต้องตรวจสอบพื้นที่เฉพาะ หรือ การตรวจสอบปัญหาทางโภชนาการโดยเฉพาะควรจะทำการสุ่มตัวอย่างใบ ในเวลาเดียวกันทุกปี และใน ระหว่างรอบระยะเวลาที่น้ำมาก หรือแห้งมากไม่ เสร็จขั้นตอนการสุ่มตัวอย่างในเวลาอันสั้นที่สุดใบสำคัญแน่นอนระดับธาตุอาหารแสดงไว้ในตาราง A1 และ A2หมายเหตุ ปี frond วิเคราะห์ควรอินเตอร์ preted ร่วมกับข้อมูลการวิเคราะห์ดิน การตรวจสอบฟิลด์ และเปรียบเทียบกับผลลัพธ์จากปีก่อนหน้านี้ ใช้ฐานข้อมูลลักษณะทางเหมาะสมจะช่วยให้การจัดเก็บข้อมูลมีประสิทธิภาพมากขึ้นและการวิเคราะห์แนวโน้ม ตัวอย่างฟิลด์ชุดปั๊มหมึกกี่ช่วงประจำเดือนเพื่อกำหนดขนาดของความผันผวนตามฤดูกาลในลีฟระดับธาตุอาหาร Frond #9 ใช้สำหรับการวิเคราะห์ใบในปาล์มเล็ก แต่ผลอาจจะยากที่จะแปล ปฏิบัติตามปกติคือการ หน่วงสุ่มจนกว่า frond #17 สามารถใช้ (เช่นอย่างน้อย 4 ปีหลังปลูก) ตัวอย่างควรดำเนินการอย่างน้อยสามเดือนหลังจากการใส่ปุ๋ยเพื่อให้ผลการสุ่มตัวอย่างใบจะไม่ได้รับผลกระทบจาก ปุ๋ยที่ใช้ล่าสุด ใน 3 ปีแรกหลังปลูก ใช้ปุ๋ยอาจทำได้ที่ช่วงบ่อย และอาจไม่ ดังนั้น มีระยะเวลา 3 เดือนใด ๆ ซึ่งการใช้ปุ๋ยไม่ เนื่องจากต้นทุนปุ๋ยดังกล่าวส่วนใหญ่ของต้นทุนรวมที่จำเป็นต้องตรวจสอบว่า ห้องปฏิบัติการดำเนินการใบวิเคราะห์ความน่าเชื่อถือได้ บริการห้องปฏิบัติการต้องมีการตรวจสอบแต่ละปี โดยการส่งตัวอย่างตรวจสอบข้าม สำหรับวัตถุประสงค์นี้ เตรียมตัวอย่างขนาดใหญ่จำนวนมากให้วัสดุใบไม้พื้นดินแห้งจาก frond #17 และเก็บในเย็น แห้ง ส่งตัวอย่างย่อย 5 กับแต่ละสเตทคอนติดขัด ตัวอย่างห้าเหล่านี้จะใช้ในการทดสอบสำหรับความผันผวนการวิเคราะห์ภาย ในชุดงาน และ ช่วงเวลา ถ้าห้องปฏิบัติการวิเคราะห์แสดงไม่สามารถยอมรับการเปลี่ยนแปลงภายในชุดงานตัวอย่าง หรือ ระหว่างปี การวิเคราะห์ต้องทำซ้ำ สองข้ามเครื่องได้รวม 5 – 10 เหมือนกันจัดเป็นคู่ตัวอย่างที่ มีส่งมอบแต่ละตัวอย่าง พล็อตผลลัพธ์เป็นกราฟ จุดที่พล็อตในแต่ละคู่อย่างควรอยู่บน หรือใกล้ กับเส้นตรง 1:1 ในกราฟSource: (1) Rankine, I.R. and Fairhurst, T.H. (1999) Field Handbook: Oil Palm Series Volume 3 – Mature. (Oil Palm Series), 2nd. ed. PPI/ PPIC and 4T Consultants (4T), Singapore, 135p. (2) Fairhurst, T. (1998) Nutrient Deficiency Symptoms and Disorders in Oil Palm (Elaeis guineensis Jacq. ). Pocket Guide. PPI, Singapore, 31p. Table A1. Critical nutrient concentration ranges of frond #17 in young palms (6 years). Table A2. Critical nutrient concentration ranges of frond #17 in older palms (6 years). ElementN (%) P (%) K (%)Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%)B (mg kg-1) Cu (mg kg-1) Zn (mg kg-1) Deficiency<2.50<0.15<1.00<0.20<0.30<0.20<0.25<8<3<10 Optimum2.6 - 2.90.16 - 0.191.1 - 1.30.3 - 0.450.5 - 0.70.25 - 0.400.5 - 0.715 - 255 - 812 - 18 Excess>3.1>0.25>1.8>0.7>0.7>0.6>1.0>40>15>80 ElementN (%) P (%) K (%)Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%)B (mg kg-1) Cu (mg kg-1) Zn (mg kg-1) Deficiency<2.30<0.14<0.75<0.20<0.25<0.20<0.25<8<3<10 Optimum2.4 - 2.80.15 - 0.180.9 - 1.20.25 - 0.400.50 - 0.750.25 - 0.350.5 - 0.715 - 255 - 812 - 18 Excess>3.0>0.25>1.6>0.7>1.0>0.6>1.0>40>15>80

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3 ใบ (เฟิน) สุ่มตัวอย่างวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาภาวะโภชนาการของแผ่นพับจากเฟิน# 9 บนฝ่ามือที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะและเฟิน # 17 บนฝ่ามือผู้ใหญ่ให้ความช่วยเหลือกับการจัดทำโปรแกรมปุ๋ยประจำปี. มาตรฐานเฟินที่เหมาะสมเป็นตัวอย่างอย่างถูกต้องในแต่ละปาล์ม LSU ใน แต่ละเขตเสนอชื่อเข้าชิงสำหรับการสุ่มตัวอย่างใบ. ตัวอย่างประกอบรวมทั้งวัสดุใบจากแต่ละปาล์ม LSU มีไว้สำหรับแต่ละเขต nominanted สำหรับการสุ่มตัวอย่างใบ. การสุ่มตัวอย่างใบจะต้องปฏิบัติตามขั้นตอนอย่างระมัดระวังเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของตัวอย่าง. เฟิน # 17 จะใช้ในการอนุญาตให้มีปีต่อ การเปรียบเทียบที่ทุบทุกสถิติและเปรียบเทียบกับผลการจัดตั้งระดับสารอาหารที่สำคัญ (ตาราง A1 และ A2). ตัวอย่างใบมีการวิเคราะห์สำหรับ N, P, K, Mg, Ca, B, Cu, Zn สารอาหารอื่น ๆ อาจรวมสำหรับต้นปาล์มที่ปลูกในดินประเภทโดยเฉพาะอย่างยิ่ง. สุ่มตัวอย่างใบจะดำเนินการออกมาอีกครั้งในแต่ละปี แต่การสุ่มตัวอย่างรายเดือนของเขตข้อมูล LSU ไม่กี่จำเป็นต้องมีการตรวจสอบความผันผวนตามฤดูกาลในใบระดับสารอาหาร. ขั้นตอนการเฟิน # 17 ตัวอย่างจากการอ้างอิงป้าย ฝ่ามือ LSU ในบางส่วนหรือทุกสาขาในหน่วยเก็บตัวอย่างใบ (LSU) และเตรียมความพร้อมสำหรับการวิเคราะห์. การรักษาความสะอาดเป็นสิ่งสำคัญในทุกขั้นตอนเพื่อป้องกันการปนเปื้อนของตัวอย่าง. เก็บตัวอย่างระหว่าง 06:30 และ 12.00 น. 1 ค้นหาปาล์ม LSU และให้แน่ใจว่าแต่ละคนเป็น ในสภาพที่มีสุขภาพดี ระบบการทำเครื่องหมาย LSU (ต้นไม้ทุกสิบในทุกแถวที่สิบ) จะส่งผลให้กลุ่มตัวอย่าง 1%. 2 ผิดปกติและอาการขาด(สำหรับ N, P, K, Mg, B และทองแดง) ระบุไว้ในฝ่ามือLSU มีการบันทึกไว้ในการสุ่มตัวอย่าง บันทึกก้านใบ cross-section (PCS) และอัตราการผลิตเฟินถ้าต้องการ (ภาคผนวก 6). 3 เฟิน # 17 ตั้งอยู่โดยการนับจากครั้งแรกที่เปิดเต็มเฟินในใจกลางของพระมหากษัตริย์ (เฟิน # 1) และลบออกด้วยเคียว หรือสิ่ว (ดูอึ้ง et al., หนังสือเล่มนี้). 4 เฟินที่ถูกตัดออกเป็นสามส่วนเท่ากันโดยประมาณ เคล็ดลับและส่วนฐานจะถูกยกเลิกและวางไว้ในกองเฟิน. 5 สิบสองแผ่นพับจะถูกเลือกและลบออกจากเฟินแต่ละ หกแผ่นพับจะถูกตัดออกจากแต่ละด้านที่จุดกลางของส่วนเฟิน ตรวจสอบให้แน่ใจว่า 12 แผ่นพับประกอบด้วยสามจากการจัดอันดับบนและสามจากระดับที่ลดลงจากแต่ละด้านของขนนก. 6 กลุ่มตัวอย่างใบจากแต่ละเขต (หรือพื้นที่ขนาดเล็กถ้าจำเป็น) จะใส่กันในขนาดใหญ่ถุงพลาสติกที่มีข้อความ ประมาณ 500 แผ่นพับจะถูกเก็บรวบรวมสำหรับเขตข้อมูลวันที่ 30 ฮ่าแต่ละ (เช่น 30 ฮ่า x 136 ฝ่ามือฮ่า-1 x 1% จุดเก็บตัวอย่าง x 12 แผ่นพับ) 7 กลุ่มตัวอย่างจะถูกส่งไปยังห้องปฏิบัติการที่ดินหรือตัวอย่างห้องพักเตรียมความพร้อมสำหรับการเตรียมการต่อไป. 8 แผ่นพับมีการรวมและตัดจะเก็บ 20-30 ซม. ลำตัว. 9 มันไม่จำเป็นที่จะล้างใบ! 10 ซี่โครงกลางของแต่ละส่วนใบจะถูกลบออกและทิ้ง. 11 ส่วนที่เหลืออยู่ของแผ่นพับ (แผ่น) แล้ว ตัดเป็นชิ้นเล็ก ๆ 2 เซนติเมตรยาวและวางไว้บนถาดอลูมิเนียมที่จะแห้ง. 12 กลุ่มตัวอย่างจะต้องมีการระบุไว้อย่างชัดเจนในทุกขั้นตอนของกระบวนการ. 13 แผ่นพับจะแห้งในเตาอบพัดลมช่วยเป็นเวลา 48 ชั่วโมง (65 องศาเซลเซียส) หรือ 24 ชั่วโมง (105 องศาเซลเซียส) ความเข้มข้นยังไม่มีใบจะลดลงถ้าอุณหภูมิในเตาอบที่ 105 องศาเซลเซียสเกิน! 14 หลังจากการอบแห้งแผ่นพับที่มีอยู่ในถุงพลาสติกที่มีข้อความ. 15 ตัวอย่างแบ่งออกเป็นสอง ครึ่งหนึ่งจะถูกเก็บไว้เป็นสำรองข้อมูลและการอ้างอิงในอนาคต (เก็บไว้ในที่แห้งและเย็น) และอีกครึ่งหนึ่งจะถูกส่งสำหรับการวิเคราะห์. 16 ขอแนะนำว่าตัวอย่างใบเป็นพื้นดินที่คฤหาสน์ก่อนที่พวกเขาจะถูกส่งสำหรับการวิเคราะห์ ซึ่งจะช่วยลดเวลาการประมวลผล (และค่าใช้จ่าย) สำหรับการวิเคราะห์และช่วยให้ที่ดินที่จะดำเนินการตรวจสอบที่สำคัญข้ามกับคุณภาพการตรวจวิเคราะห์. สุ่มตัวอย่างใบจะดำเนินการมักจะออกมาอีกครั้งในแต่ละปี การสุ่มตัวอย่างบ่อยมากขึ้นอาจจำเป็นต้องใช้ในการตรวจสอบพื้นที่ที่เฉพาะเจาะจงหรือการตรวจสอบปัญหาทางโภชนาการโดยเฉพาะอย่างยิ่ง. สุ่มตัวอย่างใบควรจะทำในเวลาเดียวกันในแต่ละปีและในช่วงระยะเวลาไม่เปียกมากหรือแห้งมาก ทำตามขั้นตอนการสุ่มตัวอย่างในเวลาที่สั้นที่สุด. ใบที่สำคัญเบื้องต้นระดับสารอาหารที่จะได้รับในตารางที่ A1 และ A2. หมายเหตุประจำปีวิเคราะห์เฟินควรจะ preted ระหว่างร่วมกับการวิเคราะห์ข้อมูลดินการตรวจสอบภาคสนามและเมื่อเทียบกับผลที่ได้จากปีก่อนหน้า การใช้ฐานข้อมูลทางการเกษตรที่เหมาะสมจะช่วยให้การจัดเก็บข้อมูลที่มีประสิทธิภาพมากขึ้นและการวิเคราะห์แนวโน้ม. ตัวอย่างสาขา LSU ไม่กี่ช่วงเวลารายเดือนในการกำหนดขนาดของความผันผวนตามฤดูกาลในใบระดับสารอาหาร. เฟิน # 9 ถูกนำมาใช้สำหรับการวิเคราะห์ใบปาล์มหนุ่ม แต่ผลที่อาจจะยากที่จะตีความ การปฏิบัติตามปกติคือการชะลอการเก็บตัวอย่างจนกระทั่งเฟิน # 17 สามารถนำมาใช้ (เช่นอย่างน้อยสี่ปีหลังปลูก). ตัวอย่างจะต้องดำเนินการอย่างน้อยสามเดือนหลังจากที่ใส่ปุ๋ยเพื่อให้ผลการเก็บตัวอย่างใบจะไม่ได้รับผลกระทบจากปุ๋ยนำไปใช้เมื่อเร็ว ๆ นี้ ในช่วงสามปีแรกหลังการปลูกใส่ปุ๋ยอาจจะทำในช่วงเวลาที่พบบ่อยและอาจไม่ได้ดังนั้นใด ๆ งวดสามเดือนในระหว่างที่ไม่ใส่ปุ๋ยได้ถูกนำมาใช้. เนื่องจากค่าใช้จ่ายปุ๋ยดังกล่าวเป็นส่วนหนึ่งของค่าใช้จ่ายในเขตข้อมูลผลรวม มันเป็นสิ่งสำคัญเพื่อตรวจสอบว่าห้องปฏิบัติการการดำเนินการวิเคราะห์ใบมีความน่าเชื่อถือ ห้องปฏิบัติการบริการจะต้องตรวจสอบในแต่ละปีโดยการส่งตัวอย่างข้ามการตรวจสอบ เพื่อจุดประสงค์นี้เตรียมความพร้อมตัวอย่างกลุ่มที่มีขนาดใหญ่เป็นเนื้อเดียวกันของวัสดุใบพื้นดินแห้งจากเฟิน # 17 และเก็บในที่แห้งและเย็น ส่งห้าตัวอย่างย่อยกับแต่ละอสังหาริมทรัพย์ consign- ment ตัวอย่างเหล่านี้ห้าจะไปใช้ในการทดสอบความแปรปรวนในการวิเคราะห์ภายในชุดและเมื่อเวลาผ่านไป หากวิเคราะห์ในห้องปฏิบัติการแสดงการเปลี่ยนแปลงที่ยอมรับไม่ได้ที่อยู่ในชุดของตัวอย่างหรือระหว่างปีที่ผ่านมาการวิเคราะห์จะต้องทำซ้ำ. ข้ามการตรวจสอบที่สองคือการรวม 5-10 ตัวอย่างคู่ที่เหมือนกันฝากขายตัวอย่าง พล็อตผลในกราฟ พล็อตจุดสำหรับคู่ของกลุ่มตัวอย่างแต่ละคนควรอยู่บนหรือใกล้เคียงกับ 1: 1 เส้นตรงในกราฟ. ที่มา: (1) แรน, IR และ Fairhurst, TH (1999) สนามคู่มือ: ซีรีส์ปาล์มน้ำมันเล่ม 3 - ผู้ใหญ่ (น้ำมันปาล์มซีรีส์) 2 เอ็ด PPI / 4T PPIC และที่ปรึกษา (4T), สิงคโปร์, 135p (2) Fairhurst, T. (1998) อาการขาดสารอาหารและความผิดปกติในปาล์มน้ำมัน (Elaeis guineensis Jacq.) คู่มือท่องเที่ยว PPI, สิงคโปร์, 31p. ตาราง A1 ช่วงความเข้มข้นของสารอาหารที่สำคัญของเฟิน # 17 ในฝ่ามือหนุ่ม (6ปี). ตาราง A2 ช่วงความเข้มข้นของสารอาหารที่สำคัญของเฟิน # 17 ในปาล์มเก่า (6ปี). ธาตุN (%) P (%) K (%) Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%) B (มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม -1) Cu (มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1) Zn (มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1) การขาด<2.50 <0.15 <1.00 <0.20 <0.30 <0.20 <0.25 <8 <3 <10 เหมาะสม2.6-2.9 0.16-0.19 1.1-1.3 0.3 - 0.45 0.5-0.7 0.25-0.40 0.5-0.7 15 - 25 5 - 8 12 - 18 ส่วนเกิน> 3.1> 0.25> 1.8> 0.7> 0.7> 0.6> 1.0> 40> 15> 80 ธาตุN (%) P (%) K (%) Mg (%) Ca (%) S (%) Cl (%) B (มกกก-1) Cu (มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1) Zn (มิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1) การขาด<2.30 <0.14 <0.75 <0.20 < 0.25 <0.20 <0.25 <8 <3 <10 เหมาะสม2.4-2.8 0.15-0.18 0.9-1.2 0.25-0.40 0.50-0.75 0.25-0.35 0.5-0.7 15 - 25 5 - 8 12 - 18 ส่วนเกิน> 3.0> 0.25> 1.6> 0.7> 1.0> 0.6> 1.0> 40> 15> 80

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 ใบ ( ใบ )
)




ว่ามีภาวะโภชนาการของใบปลิวจากใบอ่อน และใบ# 9 บนฝ่ามือ# 17 ผู้ใหญ่ ปาล์มเพื่อช่วยในการเตรียมการของปีรายการมาตรฐานปุ๋ย



ใบที่เหมาะสมได้อย่างถูกต้อง ตัวอย่างในแต่ละ LSU ปาล์มในแต่ละเขตเสนอชื่อ ตัวอย่างใบ

ตัวอย่างประกอบรวมทั้งใบวัสดุจากแต่ละ LSU ปาล์ม ให้แต่ละเขต nominanted สำหรับ 2 ใบ

ใบตัวอย่างต้องทำตามขั้นตอนอย่างระมัดระวังเพื่อหลีกเลี่ยงการปนเปื้อนของตัวอย่าง

ใบ# 17 ถูกใช้เพื่อให้ปีต่อปี การเปรียบเทียบและการเปรียบเทียบผลลัพธ์กับสร้างวิกฤตระดับธาตุอาหาร ( ตาราง A1 และ A2 ) .

ตัวอย่างใบวิเคราะห์สำหรับ N , P , K , Mg , Ca , B , ทองแดง , สังกะสีสารอาหารอื่น ๆอาจรวมปาล์มที่ปลูกในดินโดยเฉพาะ

ใบตัวอย่างน้ำปีละครั้ง แต่รายเดือนจำนวนกี่เขตข้อมูลจะต้องตรวจสอบ LSU ตามฤดูกาลของระดับธาตุอาหารในใบ



ใบขั้นตอน# 17 คือตัวอย่างจากป้ายอ้างอิง LSU ปาล์มในบางส่วนหรือทั้งหมดในทุ่งนา ใบตัวอย่างหน่วย ( LSU ) และเตรียมไว้สำหรับการวิเคราะห์ .

ความสะอาดเป็นสิ่งจำเป็นที่ทุกขั้นตอนเพื่อป้องกันการปนเปื้อนของตัวอย่าง

รวบรวมตัวอย่างระหว่าง 6.30 น. และ 12.00 น.

1 ค้นหา LSU ปาล์มและให้แน่ใจว่า แต่ละอยู่ในสภาพที่แข็งแรง LSU ระบบเครื่องหมาย ( ทุกสิบต้นไม้ทุกแถวที่สิบ ) จะมีผลใน 1 % ตัวอย่าง ความผิดปกติและอาการขาด

2 ( N , P , K , Mg , B และ Cu ใน

) ระบุเป็นบันทึกที่ LSU ฝ่ามือคน บันทึกตัดก้านใบ ( ชิ้น ) และทางใบอัตราการผลิต ถ้าจำเป็น ( ภาคผนวก 6 )
3 ใบ# 17 ตั้งอยู่ โดยนับจากใบเปิดเต็มตัวครั้งแรกในศูนย์กลางของมงกุฎ ( ใบ# 1 ) และลบออกด้วยเคียวหรือสิ่ว ( ดู NG et al . ,
4 เล่ม ) ส่วนทางใบที่ตัดเป็น 3 ส่วนประมาณเท่ากับ