Uncooked or cooked broccoli was hom

Uncooked or cooked broccoli was homogenized in a high-speed
blender (72705 ChefPrep™ 3 Cup, Hamilton Beach, NC, USA), and a
5 g sample was mixed with 40 ml acidic methanol/water (50:50, v/v,
pH 2). The mixture was placed in a water-bath shaker at 22 ± 1 °C for
1 h and then centrifuged at 10,000 × g (Sorvall RC-5B Refrigerated
Superspeed Centrifuge, Du Pont Instruments, Wilmington, DE, USA)
for 600 s. The supernatant was collected and the residues were extracted
by adding to 40ml acetone/water (70:30, v/v) followed by 1 h shaking
and then centrifuged at 10,000 × g for 600 s. The two supernatants
were combined and then acetone/water (70:30, v/v) was added to adjust
the extracted solution volume to 80 ml. The ORAC assay was done
following the analytical procedures of Huang, Ou, Hampsch-Woodill,
Flanagan, and Prior (2002). Briefly, 150 μl fluorescein (20 nM) was
added to a 96-well black plate, followed by 25 μl of each of the following
solutions: blank (sodium phosphate buffer), Trolox standard and diluted
sample extract (50 μl sample extracts were added to 10 ml sodium
phosphate buffer). The mixture was incubated at 37 °C for 1800 s in
Microplate Reader (Biotek Instruments, Winooski, VT, USA). After
incubation, 25 μl AAPH was added to all the wells. Fluorescence was
monitored using 485 nm excitation and 528 nm emissions at 120 s intervals
for 5 h in Microplate Reader. Trolox standard (6.25, 12.5, 25,
50, and 100 μM) was used to generate a standard calibration curve
and ORAC values were expressed as μM TE/g DW(TE=Trolox Equivalent).
Each treatmentwas replicated 3 times. Twelve broccoli samples of
5 g each were analyzed per replication. The results from the thirty-six
samples of each treatment were averaged and expressed as μM TE/g
DW.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ดิบ หรือสุกคะน้าถูก homogenized ในความเร็วสูงเครื่องปั่น (72705 ChefPrep™ 3 ถ้วย แฮมิลตันบีช NC, USA), และตัวอย่าง 5 กรัมถูกผสมกับ 40 มล.กรดเมทานอล/น้ำ (50: 50, v/vpH 2) ส่วนผสมถูกวางไว้ในที่อาบน้ำปั่นที่ 22 ± 1 ° C สำหรับ1 ชม.แล้ว จากที่ 10,000 × g (Refrigerated Sorvall RC-5Bความเร็วสูงเครื่องเหวี่ยง เครื่องมือ Du Pont วิลมิลตัน DE สหรัฐอเมริกา)สำหรับ 600 s Supernatant รวบรวม และถูกแยกตกโดยการเพิ่ม 40 มล.อะซีโตนน้ำ (70:30, v/v) ตาม ด้วยการเขย่า 1 ชมแล้ว จากที่ 10,000 × g สำหรับ 600 s Supernatants สองมารวมกันแล้ว น้ำอะซิโตน (70:30, v/v) ถูกปรับเสียงแยกโซลูชันเพื่อ 80 มล. ทำการ ORAC assayวิเคราะห์ขั้นตอนของหวง Ou, Hampsch-Woodillฟลานาแกน และก่อน (2002) สั้น ๆ 150 μl fluorescein (20 นาโนเมตร) ได้ลงแผ่น 96 หลุมดำ ตาม ด้วย μl 25 ของแต่ละต่อไปนี้โซลูชั่น: ว่างเปล่า (โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์), Trolox มาตรฐาน และเจือจางตัวอย่างสารสกัด 50 μl ตัวอย่างสารสกัดเพิ่มโซเดียม 10 มล.ฟอสเฟตบัฟเฟอร์) ส่วนผสมมี incubated ที่ 37 ° C สำหรับ 1800 s ในMicroplate Reader (เครื่องมือ Biotek, Winooski, VT สหรัฐอเมริกา) หลังจากว่าบ่อถูกบ่ม 25 μl AAPH เรืองแสงได้ตรวจสอบใช้กระตุ้น 485 nm และปล่อย nm 528 s 120 ช่วงเวลาสำหรับ 5 h ใน Microplate Reader มาตรฐาน Trolox (6.25, 12.5, 2550 และ 100 ไมครอน) ถูกใช้เพื่อสร้างเส้นโค้งมาตรฐานและค่า ORAC ถูกแสดงเป็น DW TE/g μ m (TE =เทียบเท่า Trolox)Treatmentwas แต่ละซ้ำ 3 ครั้ง ตัวอย่างผักชนิดหนึ่งสิบสอง5 กรัมมาวิเคราะห์ต่อการจำลองแบบ ผลที่ได้จากสามสิบหกตัวอย่างของการรักษาแต่ละเฉลี่ย และแสดงเป็นμ m TE/gDW

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ดิบหรือปรุงสุกผักชนิดหนึ่งที่ทำให้เป็นเนื้อเดียวกันในความเร็วสูง
ปั่น (72,705 ChefPrep ™ 3 ถ้วยแฮมิลตันบีช, NC, USA) และ
ตัวอย่าง 5 กรัมผสมกับเมทานอล 40 มล. เป็นกรด / น้ำ (50:50 v / V
พีเอช 2) ส่วนผสมที่ถูกวางไว้ในเครื่องปั่นน้ำอาบน้ำที่ 22 ± 1 ° C เป็นเวลา
1 ชั่วโมงและจากนั้นหมุนเหวี่ยงที่ 10,000 ×กรัม (Sorvall RC-5B แช่เย็น
Superspeed ปั่นเหวี่ยง Du Pont เครื่องดนตรี, Wilmington, DE, USA)
สำหรับ 600 S ใสถูกเก็บรวบรวมและสารตกค้างที่ถูกสกัด
ได้ด้วยการเพิ่ม 40ml อะซีโตน / น้ำ (70:30, v / v) ตามมาด้วยเวลา 1 ชั่วโมงสั่น
และหมุนเหวี่ยงที่ 10,000 ×กรัม 600 S แล้ว ทั้งสอง supernatants
นำมารวมกันแล้วอะซีโตน / น้ำ (70:30, v / v) ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อปรับ
ปริมาณสารสกัด 80 มล. การทดสอบ ORAC ได้กระทำ
ดังต่อไปนี้ขั้นตอนการวิเคราะห์ของหวาง Ou, Hampsch-Woodill,
ฟลานาแกนและก่อน (2002) สั้น ๆ , 150 ไมโครลิตร fluorescein (20 NM) ถูก
เพิ่มเข้าไปในแผ่น 96 หลุมดำตามด้วย 25 ไมโครลิตรของแต่ละดังต่อไปนี้
การแก้ปัญหา: ว่าง (โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์) มาตรฐาน Trolox และเจือจาง
สารสกัดจากตัวอย่าง (50 สารสกัดจากตัวอย่างไมโครลิตรถูกเพิ่ม 10 มล. โซเดียม
ฟอสเฟตบัฟเฟอร์) ส่วนผสมที่ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1800 วินาทีใน
ไมโครอ่าน (Biotek เครื่องดนตรี, นุ, VT, USA) หลังจาก
บ่ม 25 ไมโครลิตร AAPH ถูกบันทึกอยู่ในบ่อทุกบ่อ การเรืองแสงได้รับการ
ตรวจสอบโดยใช้ 485 กระตุ้นนาโนเมตรและ 528 นาโนเมตรปล่อยก๊าซเรือนกระจกในช่วงเวลา 120 วินาที
เป็นเวลา 5 ชั่วโมงในไมโครอ่าน Trolox มาตรฐาน (6.25, 12.5, 25,
50, และ 100 ไมครอน) ถูกนำมาใช้ในการสร้างเส้นโค้งการสอบเทียบมาตรฐาน
และค่า ORAC ถูกแสดงเป็นไมครอน TE / DW กรัม (TE = Trolox ที่เทียบเท่า)
แต่ละ treatmentwas จำลองแบบ 3 ครั้ง สิบสองตัวอย่างผักชนิดหนึ่งของ
5 กรัมแต่ละถูกนำมาวิเคราะห์ต่อการจำลองแบบ ผลจากสามสิบหก
ตัวอย่างของการรักษาแต่ละถูกเฉลี่ยและแสดงความเป็นไมครอน TE / g
DW

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ดิบหรือสุกบดผักชนิดหนึ่งในความเร็วสูงเครื่องปั่น ( 72705 chefprep ™ 3 ถ้วย , แฮมิลตันบีช , NC , USA ) และ5 กรัม ผสมกับกรดตัวอย่างเมทานอลต่อน้ำ 40 ml ( 50 , V / V ,พีเอช 2 ) ส่วนผสมจะถูกวางในน้ำร้อน Shaker ที่ 22 ± 1 ° C สำหรับ1 ชั่วโมง แล้วไฟฟ้าที่× 10000 G ( sorvall rc-5b แช่เย็นเครื่องปั่นเหวี่ยงความเร็ว du pont เครื่องมือ , Wilmington , DE , USA )600 S ได้ถูกเก็บรวบรวมและนำสารพิษตกค้าง สกัดโดยการเพิ่มน้ำ ( 70 : 30 ) 40ml / V / V ) ตามด้วย 1 ชั่วโมง สั่นและระดับที่ 10 ×กรัมสอง supernatants 600 Sอยู่รวมกันแล้ว ) / น้ำ ( 70 : 30 , v / v ) ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อปรับส่วนสารสกัดปริมาณ 80 ml ORAC ต่อเสร็จตามวิธีการวิเคราะห์ของ Huang , หรือ , woodill hampsch ,ฟลานาแกน และก่อนที่ ( 2002 ) ผมสั้น , 150 μี่ ( 20 nm ) คือเพิ่มเป็น 96 ดีจานดำ ตามด้วย 25 μ L ของแต่ละต่อไปนี้โซลูชั่น : ว่าง ( โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ) , สารมาตรฐานและเจือจางตัวอย่างสารสกัด ( 50 μ l ตัวอย่างสารสกัดเพิ่มโซเดียม 10 มล.ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ ) ส่วนผสมจะถูกบ่มที่ 37 ° C 1800 ในพื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย ( อ่าน biotek เครื่องมือ Winooski , VT , USA ) หลังจากระยะเวลา 25 μผม aaph ถูกเพิ่มเข้าไปใน Wells ทั้งหมด การ คือการตรวจสอบและการใช้ 485 nm และ 528 nm 120 S เป็นระยะ ๆ5 ชั่วโมงในการอ่านพื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย . สารมาตรฐาน ( 6.25 , 12.5 , 25 ,50 และ 100 μ M ) ถูกใช้เพื่อสร้างเส้นโค้งสอบเทียบมาตรฐานค่า ORAC และถูกแสดงเป็นμเอ็ม / g DW ( TE = สาร เทียบเท่า )แต่ละ treatmentwas ซ้ำ 3 ครั้ง ตัวอย่างของคะน้า สิบสอง5 กรัมแต่ละวิเคราะห์ต่อการทำซ้ำ ผลจาก 36ตัวอย่างของการรักษาแต่ละครั้ง ) และแสดงออกเป็นμเอ็ม / กรัมDW .