On the basis of alignment of different sequences
related to S. stercoralis, deposited in GenBank (accession
nos.: AB526297, AB526298, AB526299, AB526300), two sets
of primer pairs were designed for nested PCR using DNASIS
software (Hitachi, Tokyo, Japan) to enable amplification of a
509-bp target in the first PCR round and a 261-bp target in
the second PCR round in the mitochondrial cytochrome c oxidase
subunit 1 (cox1) gene. PCR reactions were performed
in 20 μL volumes containing 2 × red PCR premix (Ampliqon,
Odense, Denmark), 10 pmol of each primer and 4 μL of
DNA template for the first amplification round, and 1 μL of
1/40 diluted first-round PCR product for the second amplification
round. For the first amplification round, the primers cox
F (5′TGG TTT GGG TAC TAG TTG-3′) and cox R (5′-
GAT GAG CTC AAA CTA CAC A-3′) were used and for
the second amplification round, the primers CNF (5′-TTC
TAG TGT TGA TTT GGC T-3′) and CNR (5′-TTA CCA
CCA AAA CTA GGATC-3′) were used. Three negative controls
(distilled water) and one positive control (DNA extracted
from filariform larvae of S. stercoralis) were included in each
round.
บนพื้นฐานของการจัดตำแหน่งของลำดับที่แตกต่างกัน
ที่เกี่ยวข้องกับเอส stercoralis ฝากใน GenBank (ภาคยานุวัติ
Nos .: AB526297, AB526298, AB526299, AB526300) สองชุด
ของคู่ไพรเมอร์ได้รับการออกแบบสำหรับใช้ที่ซ้อนกัน PCR DNASIS
ซอฟแวร์ (ฮิตาชิกรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น ) เพื่อให้สามารถใช้เครื่องขยายเสียงของ
เป้าหมาย 509-BP ในรอบแรก PCR และเป้าหมายที่ 261 ความดันโลหิตใน
ครั้งที่สองในรอบ PCR ยล cytochrome c เด
subunit 1 (cox1) ยีน ปฏิกิริยา PCR ได้ดำเนินการ
ใน 20 เล่มไมโครลิตรมี 2 ×แดง PCR พรีมิกซ์ (Ampliqon,
Odense, เดนมาร์ก), 10 pmol ของแต่ละไพรเมอร์และ 4 ไมโครลิตรของ
แม่แบบดีเอ็นเอสำหรับรอบการขยายแรกและ 1 ไมโครลิตรของ
1/40 ปรับลดครั้งแรกในรอบ ผลิตภัณฑ์ PCR สำหรับการขยายตัวที่สอง
รอบ สำหรับรอบการขยายแรก, ไพรเมอร์ค็อกซ์
F (5'TGG TTT GGG TAC TAG TTG-3) และ Cox R (5'-
GAT GAG CTC AAA CTA CAC A-3 ') ถูกนำมาใช้และ
รอบเครื่องขยายเสียงที่สอง ไพรเมอร์ CNF (5'-TTC
TAG TGT TGA TTT GGC T-3) และ CNR (5'-TTA CCA
CCA AAA CTA GGATC-3 ') ถูกนำมาใช้ สามการควบคุมเชิงลบ
(น้ำกลั่น) และการควบคุมในเชิงบวกหนึ่ง (DNA ที่สกัด
จากตัวอ่อน filariform เอส stercoralis) ถูกรวมไว้ในแต่ละ
รอบ
การแปล กรุณารอสักครู่..
บนพื้นฐานของการเรียงตัวของลำดับต่าง ๆความสัมพันธ์กับเอส Strongyloides stercoralis ฝากเงินบริเวณ ( สูเลขที่ : ab526297 ab526298 ab526299 , , , , ab526300 ) 2 ชุดไพรเมอร์คู่ถูกออกแบบให้สามารถใช้ dnasis ซ้อนกันซอฟต์แวร์ ( ฮิตาชิ โตเกียว ประเทศญี่ปุ่น เพื่อให้เพิ่มปริมาณเป็น509 BP ในเป้าหมายแรก และเป้าหมายโดยรอบเป็น 261 BP ในรอบสองตัด PCR เอ็นไซม์ไซโตโครมซีออกซิเดสหน่วยย่อยที่ 1 ( cox1 ) ยีน ปฏิกิริยา PCR ได้ใน 20 μ L ปริมาณบรรจุ 2 × PCR ( ampliqon สีแดง , รวมOdense , เดนมาร์ก ) , 10 pmol ของแต่ละคู่ และ 4 μล.แม่แบบ DNA amplification ในรอบแรก และ 1 μล.1 / 40 ซึ่งรอบแรกสำหรับการเพิ่มปริมาณดีเอ็นเอผลิตภัณฑ์ 2รอบ สำหรับรอบ ( ครั้งแรกด้วย คอกซ์F ( 5 ’ tgg TTT GGG TAC แท็ก ttg-3 School ) และค็อกซ์ R ( 5 ’ -รับมุข CTC AAA CTA the A-3 นั้น ) ใช้สำหรับรอบ ( สอง บน CNF ( 5 ’ - บริษัท ทีทีซีแท็กรูปแบบ TGA TTT ggc t-3 School ) และ CNR ( 5 ’ - TTA CCACCA CTA AAA ggatc-3 School ) สถิติที่ใช้ 3 ควบคุมลบ( น้ำ ) และการควบคุม ( DNA ) บวกจากตัวอ่อนไฟลาริฟอร์ม S . Strongyloides stercoralis ) ถูกรวมอยู่ในแต่ละรอบ
การแปล กรุณารอสักครู่..