Preparation of chitosan solutions w

Preparation of chitosan solutions was according to the method
of Jiang and Li (2001). Chitosan (MW: 50–190 kDa, degree of
deacetylation ≥75%) was purchased from Sigma-Aldrich Corp (St.
Louis, MO, USA). To prepare 500 mL of 0, 0.5, 1.0 and 2.0% (w/v) chitosan solution, accurate weight of 0, 2.5, 5.0 and 10.0 g of chitosan
was dispersed in 50 mL of galacial acetic acid, respectively, before
400 mL of ddH2O was added to dissolve further the chitosan. Then,
the solution was added with 1 mL Tween 80 to improve the wettability. The pH of the solution was adjusted to pH 6.0 with 1 M NaOH
and the solution made up to 500 mL.
2.3. Treatment
Guavas were randomly distributed into four groups of 100 fruit
per group. Fruit of group 1, group 2, group 3 and group 4 were
dipped into solutions of 0 (control), 0.5, 1.0 and 2.0% chitosan for
1 min, respectively. Fruit were allowed to dry for 30 min at room
temperature and placed into unsealed plastic bags (0.04 mm thick)
and each bag contained 5 individual fruit with 20 bags per group,
and then stored in four incubators (Sanyo MIR 553 Model, Gunma,
Japan) held at 11
◦
C (with 90–95% RH) for progressive assessments.
As storage at 11
◦
C showed the best quality of guava fruit pulp (data
unpublished), the temperature was chosen to be used in this study.
All assessments were conducted with three replicates.
2.4. Measurement of fruit firmness, weight loss, chlorophyll and
MDA contents
Firmness of pulp was measured using a handheld penetrometer
(FT-327; UC Fruit Firmness Tester, Milano, Italy), equipped with
an 8-mm plunger tip, at the equator of fruit where a section of
rind (4 × 4 cm and ≈1 cm deep) had been removed and results were
expressed in (kg cm
−2
). Three readings were taken for each guava.
Weight loss was calculated by the following formula:
(A − B)/A × 100, where A is the fruit weight just before storage and
B is the fruit weight after special storage period.
Chlorophyll content was determined by the method of Sheen
(1973). Peel tissue (0.5 g) was homogenized with 85% acetone, and
absorbance of the extract in a final volume of 5 mL was recorded at
644 and 663 nm by using a spectrophotometer (UV755B, Shanghai,
China).
MDA content was measured according to Liu et al. (2006). Fruit
pulp (2.0 g) was homogenized in 6 mL of 10% trichloroacetic acid
and then centrifuged for 15 min at 10,000 × g. The supernatant
phase was collected and 2 mL was mixed with 6 mL of 0.6% thiobarbituric acid. The mixture was heated to 100
◦
C for 20 min, quickly
cooled and centrifuged at 10,000 × g for 10 min. The supernatant
was collected and used to measure absorbance at 450, 532 and
600 nm. The MDA concentration was calculated according to the
formula: 6.45 × (A532− A600) − 0.56 × A450. Each assessment was
repeated three times.
2.5. Measurements of SSC, TA and vitamin C content in pulp
The soluble solids content (SSC) in pulp was measured using a
hand refractometer (10481 S/N, USA).
Titratable acidity (TA) in pulp was assayed based on the method
of Bassetto et al. (2005). Briefly, 10 g of puree was diluted with
90 mL of water, titrated with 0.1 N NaOH to pH 8.1 and expressed
as a percentage of citric acid.
For vitamin C analysis, pulp tissue (2 g) was well homogenized
with 20 mL of 6% metaphosphoric acid in 2 M acetic acid and centrifuged for 10 min at 13,000 × g and 4
◦
C. The vitamin C content
in the supernatant was determined by the dinitrophenylhydrazine
method of Terada et al. (1978).
2.6. Measurement of enzyme activity
In each treatment, 10 g flesh from 10 fruit was collected and
homogenized in 25 mL of ice-cold extraction buffer and 0.5 g
polyvinyl polypyrrolidone (PVPP) with a Kinematica tissue grinder
(Crl-6010, Kriens-LU, Switzerland). For CAT and SOD assays, the
extraction buffer was 50 mM sodium phosphate (pH 7.8). For
POD, 100 mM sodium phosphate buffer (pH 6.4) was used. The
homogenate was centrifuged at 27,000 ×g for 50 min at 4
◦
C and
the resulting supernatants were used directly for assay

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การเตรียมไคโตซานโซลูชั่นได้ตามวิธีการเจียงและ Li (2001) ไคโตซาน (MW: 50 – 190 kDa ระดับของdeacetylation ≥75%) ถูกซื้อจากซิก Aldrich Corp (เซนต์Louis, MO สหรัฐอเมริกา) เตรียม 500 mL ของ 0, 0.5, 1.0 และ 2.0% (w/v) ไคโตซานโซลู ชั่น น้ำหนักถูกต้อง 0, 2.5, 5.0 และ 10.0 g ของไคโตซานมีกระจายอยู่ใน 50 มิลลิลิตรของกรดน้ำส้ม galacial ตามลำดับ ก่อนมล. 400 ของ ddH2O มีเพิ่มการละลายไคโตซานเพิ่มเติม แล้วโซลูชันถูกเพิ่ม ด้วย 1 mL Tween 80 เพื่อปรับปรุงความสามารถการเปียกได้ PH ของโซลูชันที่ปรับค่า pH 6.0 มี 1 M NaOHและการแก้ปัญหาทำถึง 500 mL2.3 การรักษาGuavas ถูกสุ่มกระจายเป็น 4 กลุ่มผลไม้ 100สำหรับแต่ละกลุ่ม มีผลไม้ของกลุ่ม 1 กลุ่ม 2 กลุ่ม 3 และกลุ่ม 4สอดเข้าไปในโซลูชั่น (ควบคุม) 0, 0.5, 1.0 และ 2.0% ไคโตซานสำหรับ1 นาที ตามลำดับ ผลไม้ได้รับอนุญาตให้แห้งสำหรับห้อง 30 นาทีอุณหภูมิ และอยู่ในถุงพลาสติก unsealed (0.04 มิลลิเมตรหนา)และแต่ละถุงประกอบด้วยผลไม้แต่ละ 5 กับ 20 ถุงต่อกลุ่มแล้ว เก็บไว้ในผลิตและสี่ (รุ่น Sanyo มีร์ 553 กุนมะญี่ปุ่นจัดขึ้นที่ 11◦C (มี 90-95% RH) การประเมินผลแบบก้าวหน้าเป็นการจัดเก็บที่ 11◦C แสดงให้เห็นว่าคุณภาพของเยื่อผลไม้ฝรั่ง (ข้อมูลยกเลิกประกาศ), อุณหภูมิที่เลือกที่จะใช้ในการศึกษานี้ประเมินทั้งหมดได้ดำเนิน ด้วยเหมือนกับสาม2.4 การวัดน้ำหนัก คลอโรฟิลล์ ผลไม้ไอซ์ และเนื้อหา MDAไอซ์ของเยื่อถูกวัดโดยใช้ penetrometer มือถือ(FT-327 UC ผลไม้ไอซ์ Tester มิลาโน อิตาลี), พร้อมกับจมูก 8 มม.มีคำแนะนำ ที่เส้นศูนย์สูตรของผลไม้ซึ่งส่วนของแคบ (4 × 4 ซม.และ ≈1 ซม.ลึก) ได้ถูกเอาออก และก็แสดงใน (กก.ซม.−2). การพิจารณาที่ถ่ายสำหรับฝรั่งแต่ละน้ำหนักที่คำนวณตามสูตรต่อไปนี้:(เป็น− B) /A × 100 ซึ่งเป็นน้ำหนักผลไม้ก่อนเก็บ และB คือ น้ำหนักผลไม้หลังจากรอบระยะเวลาการจัดเก็บพิเศษคลอโรฟิลล์เนื้อหาถูกกำหนด โดยวิธีการชีน(1973) เนื้อเยื่อเปลือก (0.5 กรัม) ถูก homogenized เป็นกลุ่มกับ 85% อะซิโตน และabsorbance ของสารสกัดในปริมาตรสุดท้ายของ 5 mL เป็นบันทึกที่644 และ 663 nm โดยเครื่องทดสอบกรดด่าง (UV755B เซี่ยงไฮ้ประเทศจีน)เนื้อหา MDA ถูกวัดตามหลิว et al. (2006) ผลไม้เยื่อ (2.0 g) ถูก homogenized เป็นกลุ่มใน 6 mL ของกรด trichloroacetic 10%และ centrifuged แล้ว ใน 15 นาทีที่ 10000 × g Supernatantขั้นตอนรวบรวม และ 2 mL ถูกผสมกับ mL 6 ของกรด thiobarbituric 0.6% ส่วนผสมที่อุณหภูมิ 100◦C สำหรับ 20 นาที ได้อย่างรวดเร็วเย็น ๆ และ centrifuged ที่ซื้อ 10000 กรัมสำหรับ 10 นาที Supernatantรวบรวม และใช้ในการวัด absorbance ที่ 450, 532 และ600 nm ความเข้มข้นของ MDA ถูกคำนวณตามการสูตร: 6.45 −× (A532− A600) 0.56 × A450 ถูกประเมินแต่ละทำซ้ำ 3 ครั้ง2.5 การประเมินเนื้อหา SSC, TA และวิตามิน C ในเยื่อกระดาษเนื้อหาของแข็งละลายน้ำ (SSC) ในเยื่อถูกวัดโดยใช้แบบมือ refractometer (10481 S/N สหรัฐอเมริกา)ว่า titratable (TA) ในเยื่อถูก assayed ตามวิธีการของ Bassetto et al. (2005) สั้น ๆ 10 กรัมของ puree ที่ผสมกับ90 mL น้ำ titrated ด้วย 0.1 N NaOH กับ pH 8.1 และแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของกรดซิตริกสำหรับการวิเคราะห์วิตามินซี เนื้อเยื่อเยื่อ (2 กรัม) ถูกดี homogenized เป็นกลุ่มมีปริมาณของกรด metaphosphoric 6% กรดอะซิติก 2 เมตร 20 mL และ centrifuged สำหรับ 10 นาทีซื้อ 13000 g และ 4◦C. วิตามินซีเนื้อหาใน supernatant ที่กำหนด โดย dinitrophenylhydrazineวิธีของ Terada et al. (1978)2.6 การวัดกิจกรรมของเอนไซม์ในแต่ละทรีทเม้นต์ เนื้อ 10 กรัมจาก 10 ผลไม้รวบรวม และhomogenized เป็นกลุ่ม 25 mL สกัดฉ่ำบัฟเฟอร์และ 0.5 gpolypyrrolidone (PVPP) โพลีไวนิล ด้วยเครื่องบดเนื้อเยื่อเป็น Kinematica(Crl-6010, Kriens LU สวิตเซอร์แลนด์) สำหรับแมวและสด assays การแยกบัฟเฟอร์ฟอสเฟตโซเดียม 50 มม. (pH 7.8) สำหรับใช้ POD, 100 มม.โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 6.4) ที่homogenate ถูก centrifuged ที่ 27000 × g ใน 50 นาทีที่ 4◦C และใช้ supernatants ได้โดยตรงสำหรับการทดสอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การเตรียมความพร้อมของโซลูชั่นไคโตซานเป็นไปตามวิธีการ
ของเจียงและหลี่ (2001) ไคโตซาน (MW: 50-190 กิโลดาลตันระดับของ
เบสิก≥75%) ซื้อมาจาก บริษัท Sigma-Aldrich Corp (เซนต์
Louis, MO, USA) เพื่อเตรียมความพร้อม 500 มิลลิลิตร 0, 0.5, 1.0 และ 2.0% (w / v) การแก้ปัญหาไคโตซานที่มีน้ำหนักที่ถูกต้องของ 0, 2.5, 5.0 และ 10.0 กรัมของไคโตซานที่
กำลังระบาดใน 50 มิลลิลิตรของกรดอะซิติก galacial ตามลำดับก่อน
400 มิลลิลิตร ddH2O ถูกเพิ่มเข้ามาในการละลายต่อไคโตซาน แล้ว
แก้ปัญหาที่ถูกเพิ่มเข้ามาด้วย 1 มิลลิลิตรทวีน 80 เพื่อปรับปรุงเปียก ค่า pH ของการแก้ปัญหาที่ได้รับการปรับเปลี่ยนให้มีค่า pH 6.0 ที่มี 1 M NaOH
และการแก้ไขปัญหาที่เกิดขึ้นได้ถึง 500 มิลลิลิตร
2.3 การรักษา
ฝรั่งถูกกระจายแบบสุ่มออกเป็นสี่กลุ่มของผลไม้ 100
ต่อกลุ่ม ผลของกลุ่มที่ 1 กลุ่มที่ 2 กลุ่มที่ 3 และกลุ่มที่ 4 ได้รับการ
จุ่มลงไปในการแก้ปัญหาที่เป็น 0 (ควบคุม), 0.5, 1.0 และ 2.0% ไคโตซานเพื่อ
1 นาทีตามลำดับ ผลไม้ที่ได้รับอนุญาตให้แห้งเป็นเวลา 30 นาทีที่ห้อง
อุณหภูมิและวางลงในถุงพลาสติกปิดผนึก (0.04 มมหนา)
และแต่ละถุงมี 5 ผลไม้บุคคลที่มี 20 ถุงต่อกลุ่ม
แล้วเก็บไว้ในตู้อบสี่ (Sanyo MIR 553 รุ่น, กุมมะ
ประเทศญี่ปุ่น ) จัดขึ้นที่ 11
◦
C (มี 90-95% RH) สำหรับการประเมินความก้าวหน้า
ในขณะที่การจัดเก็บข้อมูลที่ 11
◦
C พบว่ามีคุณภาพดีที่สุดของเนื้อผลไม้ฝรั่ง (ข้อมูล
ไม่ได้) อุณหภูมิในการได้รับเลือกให้นำไปใช้ในการศึกษาครั้งนี้
การประเมินทั้งหมด ได้รับการดำเนินการกับสามซ้ำ
2.4 การวัดความแน่นเนื้อผลไม้ลดน้ำหนักคลอโรฟิลและ
เนื้อหา MDA
ความแน่นเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้ Penetrometer มือถือ
(FT-327; UC ผลไม้กระชับ Tester, มิลาน, อิตาลี) พร้อมกับ
ปลายลูกสูบ 8 มิลลิเมตรที่เส้นศูนย์สูตรของผลไม้ ที่ส่วนของ
เปลือก (4 × 4 เซนติเมตรและ≈1เซนติเมตรลึก) ที่ถูกถอดออกและผลที่ได้
แสดงใน (กกเซนติเมตร
-2
) อ่านสามถูกนำสำหรับแต่ละฝรั่ง
การสูญเสียน้ำหนักที่คำนวณได้จากสูตรต่อไปนี้
(A - B) / × 100 ที่มีน้ำหนักผลไม้ก่อนการจัดเก็บและ
B เป็นน้ำหนักผลหลังการเก็บรักษาเป็นพิเศษในช่วงเวลา
เนื้อหาคลอโรฟิลเป็น ที่กำหนดโดยวิธีการของชีน
(1973) เปลือกเนื้อเยื่อ (0.5 กรัม) ถูกหดหายกับ 85% อะซีโตนและ
การดูดกลืนแสงของสารสกัดในปริมาณสุดท้ายของ 5 มิลลิลิตรถูกบันทึกไว้ที่
644 และ 663 นาโนเมตรโดยใช้ spectrophotometer (UV755B เซี่ยงไฮ้
จีน)
ปริมาณ MDA วัดตาม หลิวและคณะ (2006) ผลไม้
เยื่อกระดาษ (2.0 กรัม) ถูกหดหายใน 6 มิลลิลิตรของกรดไตรคลอโร 10%
และจากนั้นปั่น 15 นาทีที่ 10,000 ×กรัม ใส
ขั้นตอนการเก็บรวบรวมและ 2 มิลลิลิตรผสมกับกรด thiobarbituric 6 มิลลิลิตร 0.6% ส่วนผสมที่ถูกความร้อนถึง 100
◦
C เป็นเวลา 20 นาทีได้อย่างรวดเร็ว
และการระบายความร้อนหมุนเหวี่ยงที่ 10,000 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที ใส
ถูกเก็บรวบรวมและนำมาใช้ในการวัดการดูดกลืนแสงที่ 450, 532 และ
600 นาโนเมตร ความเข้มข้นของภาคตะวันออกเฉียงเหนือที่คำนวณตาม
สูตร: 6.45 × (A532- A600) - 0.56 × A450 การประเมินแต่ละคนถูก
ทำซ้ำสามครั้ง
2.5 วัด SSC, TA และวิตามินซีเนื้อหาในเยื่อ
ปริมาณของแข็งที่ละลายเนื้อหา (SSC) ในเยื่อถูกวัดโดยใช้
เครื่องวัดมือ (10481 S / N, ประเทศสหรัฐอเมริกา)
ปริมาณกรด (TA) ในเยื่อกระดาษได้รับการวิเคราะห์ตามวิธี
ของ Bassetto และคณะ (2005) สั้น ๆ , 10 กรัมน้ำซุปข้นถูกเจือจางด้วย
90 มิลลิลิตรของน้ำปรับขนาด 0.1 ยังไม่มี NaOH จะมีค่า pH 8.1 และแสดง
เป็นร้อยละของกรดซิตริก
สำหรับการวิเคราะห์วิตามินซีเนื้อเยื่อเยื่อกระดาษ (2 กรัม) ก็หดหายดี
กับ 20 มิลลิลิตร 6 % กรด metaphosphoric ใน 2 เมตรกรดอะซิติกและปั่น 10 นาทีที่ 13,000 ×กรัมและ 4
◦
ซี ปริมาณวิตามินซี
ในสารละลายถูกกำหนดโดย Dinitrophenylhydrazine
วิธีการ Terada และคณะ (1978)
2.6 การวัดกิจกรรมของเอนไซม์
ในการรักษาแต่ละครั้ง 10 กรัมเนื้อจาก 10 ผลไม้ถูกเก็บรวบรวมและ
หดหายใน 25 มิลลิลิตรเย็นบัฟเฟอร์สกัดและ 0.5 กรัม
โพลีไวนิล polypyrrolidone (PVPP) กับเครื่องบดเนื้อเยื่อ Kinematica
(Crl-6010, Kriens-LU, วิตเซอร์แลนด์ ) สำหรับกสทและ SOD ตรวจ,
สารสกัดคือ 50 มิลลิโซเดียมฟอสเฟต (pH 7.8) สำหรับ
POD 100 มิลลิบัฟเฟอร์โซเดียมฟอสเฟต (pH 6.4) ถูกนำมาใช้
homogenate ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 27,000 × g นาน 50 นาทีที่ 4
◦
C และ
supernatants ผลถูกนำมาใช้โดยตรงเพื่อทดสอบ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การเตรียมไคโซลูชั่นได้ตามวิธีการ
เจียงและ Li ( 2001 ) ไคโตซาน ( 3 : 50 – 190 กิโล องศาตลอด
≥ 75% ) ซื้อมาจากซิกม่า Aldrich CORP ( St .
หลุยส์ โม สหรัฐอเมริกา ) เตรียม 500 มล. 0 , 0.5 , 1.0 และ 2.0 เปอร์เซ็นต์ ( w / v ) สารละลายไคโตแซนน้ำหนักที่ถูกต้องของ 0 , 2.5 , 5.0 และ 10.0 กรัมของไคโตซาน
ถูกกระจายออกไปใน galacial 50 มิลลิลิตร ตามลำดับ ก่อนที่
กรดอะซิติก400 มิลลิลิตร เติม ddh2o ละลายต่อไคโตซาน งั้น
โซลูชั่นเพิ่มด้วย 1 ml Tween 80 เพื่อพัฒนาสาร . pH ของสารละลายที่ปรับ pH ด้วย 1 M NaOH
และโซลูชั่นที่สร้างขึ้น 500 มล.
2.3 ฝรั่งรักษา
สุ่มกระจายออกเป็น 4 กลุ่ม กลุ่มละ 100 ผลไม้
. ผลของกลุ่มที่ 1 กลุ่มที่ 2 กลุ่มที่ 3 และกลุ่มที่ 4 คือ ,
จุ่มลงในสารละลายของ 0 ( control ) , 0.5 , 1.0 และ 2.0 เปอร์เซ็นต์ ไคโตซานสำหรับ
1 นาที ตามลำดับ ผลไม้ที่ได้รับอนุญาตให้แห้งประมาณ 30 นาที ที่อุณหภูมิห้อง และ ใส่ในถุงพลาสติกได้

( หนา 0.04 mm ) และแต่ละถุงบรรจุ 5 ผลไม้แต่ละ 20 ถุงต่อกลุ่ม
แล้วเก็บไว้ใน 4 ตู้ ( ซันโย Mir กับนางแบบกัน
, ญี่ปุ่น ) จัดขึ้นที่ 11

◦C ( 90 - 95% RH ) เพื่อประเมินความก้าวหน้า เป็นกระเป๋าที่ 11

◦
C มีคุณภาพที่ดีที่สุดของเยื่อไม้ฝรั่ง ( ข้อมูล
พิมพ์ ) , อุณหภูมิที่เลือกใช้ในการศึกษานี้ มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมิน
ทั้งหมด 3 ซ้ำ .
2.4 . การวัดความแน่นเนื้อ ผลไม้ลดน้ําหนัก , คลอโรฟิลล์และ

( เนื้อหาเนื้อเยื่อถูกวัดโดยใช้วัสดุพกพา ( ft-327
;UC ผลไม้แน่น Tester , มิลาน , อิตาลี ) , การติดตั้ง
เป็น 8-mm ลูกสูบปลายที่เส้นศูนย์สูตรของผลไม้ซึ่งเป็นส่วนของเปลือก (
4 × 4 ซม. และ 1 ซม. ลึก≈ ) ได้ถูกลบออก และผลลัพธ์ที่ได้แสดงไว้ใน ( ก )

− 2
) สามอ่านถ่ายแต่ละฝรั่ง
การสูญเสียน้ำหนักที่คำนวณได้จากสูตรต่อไปนี้ :
( −× B ) / 100 ซึ่งเป็นผลไม้น้ำหนัก ก่อนที่กระเป๋าและ
B คือ น้ำหนักผลหลังจากระยะเวลาการจัดเก็บพิเศษ .
คลอโรฟิลล์ถูกกำหนดโดยวิธีการของ Sheen
( 1973 ) เนื้อเยื่อเปลือก ( 0.5 g ) บดกับ 85% Acetone และ
ดูดกลืนสารสกัดในปริมาณขั้นสุดท้าย 5 ml เท่ากับ
และ 421 nm โดยใช้ Spectrophotometer (
จีน uv755b เซี่ยงไฮ้ )
2 เนื้อหาได้ตาม Liu et al . ( 2006 ) เยื่อไม้
( 20 g ) บดใน 6 ml 10% กรดไตรคลอโรอะซิติก
แล้วระดับ 15 นาทีที่ 10 ×กรัม ระยะสูง
รวบรวม 2 มิลลิลิตรผสมกับ 6 ml 0.6% เท่ากับกรด ส่วนผสมจะถูกอุ่นให้◦ 100

C นาน 20 นาที เร็ว
เย็นไฟฟ้าที่ 10 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที และน่าน
ถูกเก็บรวบรวมและใช้วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 450 และ
600 นาโนเมตรความเข้มข้นน้ำตาลถูกคำนวณตามสูตรเคมี : 6.45
× ( a532 −−× a600 ) ( a450 . แต่ละประเมินซ้ำ 3 ครั้งถูก
.
2.5 การวัดของ SSC , TA และวิตามินซีในเนื้อ
ปริมาณของแข็งที่ละลายน้ำได้ ( SSC ) เยื่อกระดาษ คือการวัดโดยใช้
มือรีแฟรกโตมิเตอร์ ( 10481 s / n , USA ) .
ปริมาณกรด ( TA ) ในเนื้อซีรั่มตามวิธี
ของ bassetto et al . ( 2005 )สั้น ๆ , 10 กรัม มะขามป้อม เจือจางด้วย
90 มล. ของน้ำตลอดเวลา 0.1 N NaOH กับ pH 8.1 และแสดงเป็นร้อยละของกรดซิตริก
.
สำหรับวิตามินซี การวิเคราะห์เนื้อเยื่อเยื่อ ( 2 กรัม ) เป็นโฮโม
20 ml 6 % เมตทาฟอสฟอริกแอซิดกรดอะซิติกและระดับ 2 เมตร 10 นาทีที่ 13 , 000 × g และ 4
◦
C วิตามินซี
ในน่านถูกกำหนดโดย dinitrophenylhydrazine
วิธีของเทราดะ et al . ( 1978 ) .
2.6 การวัดกิจกรรมของเอนไซม์
ในการรักษาแต่ละ 10 กรัม เนื้อจาก 10 ผลไม้ที่ถูกเก็บรวบรวมและบดใน 25 มล.
เย็นใช้สารและ 0.5 g
ไวนิล polypyrrolidone ( pvpp ) กับ kinematica เยื่อบด
( crl-6010 ครีน , ลู่ , สวิตเซอร์แลนด์ ) สำหรับแมวและ SOD ) ,
การสกัดโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.8 50 มม. ) สำหรับ
ฝัก100 มิลลิเมตรโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 6.4 ) คือใช้
อนคือระดับที่ 27 , 000 ×กรัม 50 นาทีที่ 4

C
◦และเป็นผล supernatants ถูกใช้โดยตรงสำหรับการทดสอบ