- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
RESULTS AND DISCUSSIONTo identify t
RESULTS AND DISCUSSION
To identify the isolates obtained from 3 different sectors of
the ‘Chilika’ lagoon each of them were tested for various
morphological, biochemicals, physiological and serological
characters. The results of morphological and biochemical
tests were presented in Table 1.The isolates are closely
related to Shigella dysenteriae, Streptococcus lactis,
Bacillus cereus, Klebsiella pneumoniae (Table 1 and
Table 2). In nutrient agar plates Shigella dysenteriae
appeared as thin, even and greyish colonies measuring
ca. 3-4 mm diameter. Streptococcus lactis colonies were
thin, even-growths on nutrient agar plates ranging ca. 2-3
mm diameter. In comparison, Bacillus cereus colonies
which were fermented on nutrient agar plates had
abundant, opaque, white waxy growths measuring ca. 3-4
mm diameter. Klebsiella pneumoniae colonies were
skimy-white, raised growths with ca. 2-4 mm diameter.
Each bacterial colony cultured on nutrient agar medium
was then subjected to Gram staining and thereafter
observed under light microscope. The shape and staining
property of the bacteria were recorded. Shigella
dysenteriae, Klebsiella pneumoniae and Bacillus cereus
were found to be rod-shaped bacteria whereas
Streptococcus lactis had a spherical (coccus) shape.
Streptococcus lactis and Bacillus cereus were found to be
Gram positive bacteria whereas Shigella dysenteriae and
Klebsiella pneumoniae was Gram negative.
Table 1: Morphological and biochemical tests for identification of the isolates
Test Organisms
Shigella
dysenteriae
Streptococcus
lactis
Bacillus cereus
Klebsiella
pneumoniae
Agar Plate Culture
Characteristics
Thin, even, grayish
growth
Thin, even
growth
Abundant, opaque,
white waxy growth
Slimy, white,
raised growth
Litmus Milk Reaction Alkaline Curd Peptoniz-ation Gas
Gram’s stain Rod (-) Cocci (+) Rod (+) Rod (-)
Capsule stain - + - +
Acid-Fast stain - - + -
Fermentation
Lactose - A - AG
Dexrose A A A AG
Sucrose A A A AG
H2S roduction - - - -
NO3 Reduction + - + -
Indole Production - - - -
MR Reaction + + - -
VP Reaction - - + +
Citrate Utilization - - - +
Urease Activity - - - +
Catalase Activity + - + +
Oxidase Activity - - - -
Gelatin Liquefaction - - + -
Starch Hydrolysis - - + -
DNase Test - - - -
Triple Sugar Iron Test Lactose Glucose Glucose Glucose
Cholesterol Hydrolysis - + - -
Arginine Dihydrolase - - - -
+ = Positive; - = Negative; A = Acid; AG = Acid and Gas
Table 2: Physiological tests for identified microorganisms
at optimum parameters
Test Organisms pH Temperature Salinity
Shigella dysenteriae 7-8 40 ฐC 9 %
Streptococcus lactis 7-9 40 ฐC 9 %
Bacillus cereus 7-9 45 ฐC 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 45 ฐC 9 %
In addition to morphological and biochemical
characterizations the isolated strains were also
characterized through different physiological factors such
as pH, temperature and salinity to observe their tolerance
capacity in the environmental stress conditions. The
identified bacterial species were tested for their
halotolerance nature on the basis of pH, temperature and
salinity. The optimal physiological conditions of isolated
strains are presented in Table 2. It was found that all
isolated strains survived in conditions at a varying pH 8 -
9, temperature regime 40 ฐC – 45 ฐC, and salinity ranging
8 – 9 %, thus indicating that these isolates were
halotolerant.
Antibiotic sensitivity tests were performed for each of the
four identified bacterial species. Those cells which were
completely inhibited and failed to resist the action of
antibiotics against them became sensitive to the
corresponding antibiotics. But partial inhibition happened
when somehow some mutant cells emerged and they
could successively resist the action of the antibiotics
against them (Johnson et al., 1995). In this study Shigella
dysenteriae was the only one that showed sensitivity to
streptomycin but the three remaining strains showed
resistance to streptomycin (Table 3). Multi-drug resistance
by Shigella sp. was not uncommon (Lien et al., 1994).
Although all the isolates showed resistance to neomycin
and chloramphenicol; they showed a wide range of
sensitivity to norfloxacin, tetracycline, ciprofloxacin,
ofloxacin and nitrofurantoin; albeit intermediate sensitivity
to nalidixic acid and amoxicillin.
It was interesting to note that in none of the extracted
samples from resistant strains plasmid DNA was
detectable in the agarose gel following electrophoresis
regardless of agarose concentrations in the gel (data not
shown). Perhaps, the observed antibiotic tolerance in
Table 3: Antibiotic sensitivity tests for identified microorganisms
Test antibiotic Antibiotic (:g/disc)
Zone of inhibition Diameter (mm)
SD SL BC KP
Norfloxacin 10 30(S) 25(S) 27(S) 27(S)
Tetracycline 30 19(S) 20(S) 22(S) 19(S)
Ciprofloxacin 10 35(S) 27(S) 33(S) 33(S)
Neomycin 30 − (R) − (R) − (R) − (R)
Nalidixic Acid 30 18(I) 18(I) 16(I) 16(I)
Ofloxacin 5 30(S) 30(S) 30(S) 28(S)
Chloramphenicol 10 − (R) − (R) − (R) − (R)
Nitrofurantoin 200 22(S) 20(S) 23(S) 23(S)
Streptomycin 25 28 (S) − (R) − (R) − (R)
Amoxicillin 25 14(I) 14(I) 15(I) 16(I)
SD = Shigella dysenteriae; SL = Streptococcus lactis; BC = Bacillus cereus; KP = Klebsiella pneumonia
S = Sensitive; R = Resistant; I = Intermediate
Table 4: Serological tests for identified microorganisms
Test Organisms
Gel Diffusion
Test
Tube
Agglutination Test
Shigella
dysenteriae
+ +
Streptococcus
lactis
+ +
Bacillus cereus + +
Klebsiella
pneumoniae
+ +
+ = Positive
such strains isolated from the brackish waters of the
‘Chilika’ lagoon is due to phosphorylation/acetylation
activity of enzymes encoded by gene loci borne on the
chromosomal DNA instead of on plasmids. It was not
uncommon to enteric bacteria among which the multi-drug
resistance regulatory chromosomal locus, mar is
widespread as was reported by Cohen et al., (1993).
Constitutive expression of mar-A leading to differential
expression of over 60 chromosomal genes in E. coli has
been reported by different investigators. According to
Barbosa and Levy (2000), such kind of expression
possibly conferred multiple antibiotic resistance on E. coli.
Another gene namely emr harboured on E. coli
chromosome has been identified that codes for protein
products of membrane translocase family and accounts
for multi-drug resistance (Lomovskaya et al., 1992).
All strains isolated from the brackish water samples of
‘Chilika’ lagoon revealed a strong antigenic character
basing on two different serological tests namely gel
diffusion test and tube agglutination test respectively
(Table 4). The present investigation strongly revealed that
these four promising marine bacterial strains hold
potential to be used for development of anti-pathogenic
agents in pharmacology and pharmaceutical industries.
Nevertheless, further validation is necessitated prior to exploiting these strains aiming at development of novel
and specific antibacterial compounds, antibiotics and
enzymes which could offer considerable pharmaceutical
value.
To identify the isolates obtained from 3 different sectors of
the ‘Chilika’ lagoon each of them were tested for various
morphological, biochemicals, physiological and serological
characters. The results of morphological and biochemical
tests were presented in Table 1.The isolates are closely
related to Shigella dysenteriae, Streptococcus lactis,
Bacillus cereus, Klebsiella pneumoniae (Table 1 and
Table 2). In nutrient agar plates Shigella dysenteriae
appeared as thin, even and greyish colonies measuring
ca. 3-4 mm diameter. Streptococcus lactis colonies were
thin, even-growths on nutrient agar plates ranging ca. 2-3
mm diameter. In comparison, Bacillus cereus colonies
which were fermented on nutrient agar plates had
abundant, opaque, white waxy growths measuring ca. 3-4
mm diameter. Klebsiella pneumoniae colonies were
skimy-white, raised growths with ca. 2-4 mm diameter.
Each bacterial colony cultured on nutrient agar medium
was then subjected to Gram staining and thereafter
observed under light microscope. The shape and staining
property of the bacteria were recorded. Shigella
dysenteriae, Klebsiella pneumoniae and Bacillus cereus
were found to be rod-shaped bacteria whereas
Streptococcus lactis had a spherical (coccus) shape.
Streptococcus lactis and Bacillus cereus were found to be
Gram positive bacteria whereas Shigella dysenteriae and
Klebsiella pneumoniae was Gram negative.
Table 1: Morphological and biochemical tests for identification of the isolates
Test Organisms
Shigella
dysenteriae
Streptococcus
lactis
Bacillus cereus
Klebsiella
pneumoniae
Agar Plate Culture
Characteristics
Thin, even, grayish
growth
Thin, even
growth
Abundant, opaque,
white waxy growth
Slimy, white,
raised growth
Litmus Milk Reaction Alkaline Curd Peptoniz-ation Gas
Gram’s stain Rod (-) Cocci (+) Rod (+) Rod (-)
Capsule stain - + - +
Acid-Fast stain - - + -
Fermentation
Lactose - A - AG
Dexrose A A A AG
Sucrose A A A AG
H2S roduction - - - -
NO3 Reduction + - + -
Indole Production - - - -
MR Reaction + + - -
VP Reaction - - + +
Citrate Utilization - - - +
Urease Activity - - - +
Catalase Activity + - + +
Oxidase Activity - - - -
Gelatin Liquefaction - - + -
Starch Hydrolysis - - + -
DNase Test - - - -
Triple Sugar Iron Test Lactose Glucose Glucose Glucose
Cholesterol Hydrolysis - + - -
Arginine Dihydrolase - - - -
+ = Positive; - = Negative; A = Acid; AG = Acid and Gas
Table 2: Physiological tests for identified microorganisms
at optimum parameters
Test Organisms pH Temperature Salinity
Shigella dysenteriae 7-8 40 ฐC 9 %
Streptococcus lactis 7-9 40 ฐC 9 %
Bacillus cereus 7-9 45 ฐC 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 45 ฐC 9 %
In addition to morphological and biochemical
characterizations the isolated strains were also
characterized through different physiological factors such
as pH, temperature and salinity to observe their tolerance
capacity in the environmental stress conditions. The
identified bacterial species were tested for their
halotolerance nature on the basis of pH, temperature and
salinity. The optimal physiological conditions of isolated
strains are presented in Table 2. It was found that all
isolated strains survived in conditions at a varying pH 8 -
9, temperature regime 40 ฐC – 45 ฐC, and salinity ranging
8 – 9 %, thus indicating that these isolates were
halotolerant.
Antibiotic sensitivity tests were performed for each of the
four identified bacterial species. Those cells which were
completely inhibited and failed to resist the action of
antibiotics against them became sensitive to the
corresponding antibiotics. But partial inhibition happened
when somehow some mutant cells emerged and they
could successively resist the action of the antibiotics
against them (Johnson et al., 1995). In this study Shigella
dysenteriae was the only one that showed sensitivity to
streptomycin but the three remaining strains showed
resistance to streptomycin (Table 3). Multi-drug resistance
by Shigella sp. was not uncommon (Lien et al., 1994).
Although all the isolates showed resistance to neomycin
and chloramphenicol; they showed a wide range of
sensitivity to norfloxacin, tetracycline, ciprofloxacin,
ofloxacin and nitrofurantoin; albeit intermediate sensitivity
to nalidixic acid and amoxicillin.
It was interesting to note that in none of the extracted
samples from resistant strains plasmid DNA was
detectable in the agarose gel following electrophoresis
regardless of agarose concentrations in the gel (data not
shown). Perhaps, the observed antibiotic tolerance in
Table 3: Antibiotic sensitivity tests for identified microorganisms
Test antibiotic Antibiotic (:g/disc)
Zone of inhibition Diameter (mm)
SD SL BC KP
Norfloxacin 10 30(S) 25(S) 27(S) 27(S)
Tetracycline 30 19(S) 20(S) 22(S) 19(S)
Ciprofloxacin 10 35(S) 27(S) 33(S) 33(S)
Neomycin 30 − (R) − (R) − (R) − (R)
Nalidixic Acid 30 18(I) 18(I) 16(I) 16(I)
Ofloxacin 5 30(S) 30(S) 30(S) 28(S)
Chloramphenicol 10 − (R) − (R) − (R) − (R)
Nitrofurantoin 200 22(S) 20(S) 23(S) 23(S)
Streptomycin 25 28 (S) − (R) − (R) − (R)
Amoxicillin 25 14(I) 14(I) 15(I) 16(I)
SD = Shigella dysenteriae; SL = Streptococcus lactis; BC = Bacillus cereus; KP = Klebsiella pneumonia
S = Sensitive; R = Resistant; I = Intermediate
Table 4: Serological tests for identified microorganisms
Test Organisms
Gel Diffusion
Test
Tube
Agglutination Test
Shigella
dysenteriae
+ +
Streptococcus
lactis
+ +
Bacillus cereus + +
Klebsiella
pneumoniae
+ +
+ = Positive
such strains isolated from the brackish waters of the
‘Chilika’ lagoon is due to phosphorylation/acetylation
activity of enzymes encoded by gene loci borne on the
chromosomal DNA instead of on plasmids. It was not
uncommon to enteric bacteria among which the multi-drug
resistance regulatory chromosomal locus, mar is
widespread as was reported by Cohen et al., (1993).
Constitutive expression of mar-A leading to differential
expression of over 60 chromosomal genes in E. coli has
been reported by different investigators. According to
Barbosa and Levy (2000), such kind of expression
possibly conferred multiple antibiotic resistance on E. coli.
Another gene namely emr harboured on E. coli
chromosome has been identified that codes for protein
products of membrane translocase family and accounts
for multi-drug resistance (Lomovskaya et al., 1992).
All strains isolated from the brackish water samples of
‘Chilika’ lagoon revealed a strong antigenic character
basing on two different serological tests namely gel
diffusion test and tube agglutination test respectively
(Table 4). The present investigation strongly revealed that
these four promising marine bacterial strains hold
potential to be used for development of anti-pathogenic
agents in pharmacology and pharmaceutical industries.
Nevertheless, further validation is necessitated prior to exploiting these strains aiming at development of novel
and specific antibacterial compounds, antibiotics and
enzymes which could offer considerable pharmaceutical
value.
0/5000
ผลและการสนทนาระบุแยกได้จาก 3 ภาคต่าง ๆ ของทะเลสาบ 'Chilika' แต่ละของพวกเขาถูกทดสอบต่าง ๆสัณฐาน biochemicals สรีรวิทยา และสภาวะอักขระ ผลกระทบ และชีวเคมีทดสอบได้แสดงในตาราง 1.การแยกอยู่อย่างใกล้ชิดที่เกี่ยวข้องกับ Shigella dysenteriae อุณหภูมิ lactisคัด cereus, Klebsiella pneumoniae (ตารางที่ 1 และตาราง 2) ใน agar ธาตุอาหารแผ่น Shigella dysenteriaeปรากฏตัวในฐานะอาณานิคมบาง แม้ และ greyish วัดca. เส้นผ่าศูนย์กลาง 3-4 mm อุณหภูมิ lactis อาณานิคมได้บาง แม้เจริญเติบโตบนแผ่นธาตุอาหาร agar ตั้งแต่ ca 2-3เส้นผ่านศูนย์กลางมม. ในการเปรียบเทียบ คัด cereus อาณานิคมซึ่งถูกหมักบนแผ่น agar ธาตุอาหารได้อุดมสมบูรณ์ ทึบ ขาวแว็กซี่เจริญเติบโตวัด ca 3-4เส้นผ่านศูนย์กลางมม. Klebsiella pneumoniae อาณานิคมได้เจริญเติบโตสี ขาว skimy ยกกับ ca 2-4 มม.เส้นผ่าศูนย์กลางโคโลแบคทีเรียแต่ละอ่างใน agar ธาตุอาหารปานกลางแล้วที่ต้อง การย้อมสีกรัม และหลังจากนั้นสังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง รูปร่าง และย้อมสีคุณสมบัติของแบคทีเรียถูกบันทึกไว้ Shigelladysenteriae, Klebsiella pneumoniae และคัด cereusพบเป็น แบคทีเรียรูปร่างร็อดในขณะLactis อุณหภูมิมีรูปทรงกลม (coccus)อุณหภูมิ lactis และคัด cereus พบจะแบคทีเรียกรัมบวกขณะ Shigella dysenteriae และKlebsiella pneumoniae เป็นกรัมลบตารางที่ 1: สัณฐาน และชีวเคมีทดสอบสำหรับรหัสของการแยกทดสอบสิ่งมีชีวิตShigelladysenteriaeอุณหภูมิlactisคัด cereusKlebsiellapneumoniaeวัฒนธรรมจาน agarลักษณะบาง แม้ เงินเจริญเติบโตบาง แม้แต่เจริญเติบโตอุดมสมบูรณ์ ทึบแสงเติบโตแว็กซี่สีขาวปลิ้นปล้อน สีขาวเจริญเติบโตยกขึ้นสารสีน้ำเงินนมปฏิกิริยาซีอิ้วด่าง Peptoniz ation ก๊าซกรัมของติดร็อด Cocci (+) ร็อด (-) (+) ร็อด (-)แคปซูลคราบ - + - +Acid-Fast คราบ - + -หมักAG แล็กโทส - A-Dexrose A เป็น AGA เป็นซูโครสเป็น AGไข่เน่า roduction----NO3 ลด + - + -ผลิตอินโดล----นายปฏิกิริยา ++ -ปฏิกิริยา VP - ++ใช้ประโยชน์ซิเตรต-- +กิจกรรมยู-- +กิจกรรม catalase + - ++Oxidase กิจกรรม----ตุ๋น Liquefaction - + -แป้งไฮโตรไลซ์ - + -DNase ทดสอบ----น้ำตาลสามเหล็กทดสอบแล็กโทสน้ำตาลกลูโคสน้ำตาลกลูโคสน้ำตาลกลูโคสไฮโตรไลซ์ไขมัน - + -อาร์จินีน Dihydrolase----+ =บวก - =ลบ A =กรด AG =กรดและก๊าซตารางที่ 2: ทดสอบสรีรวิทยาสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุที่พารามิเตอร์ที่เหมาะสมทดสอบค่า pH ชีวิตเค็มอุณหภูมิShigella dysenteriae 7-8 40 ฐC 9%อุณหภูมิ lactis 7-9 40 ฐC 9%คัด cereus 7-9 45 ฐC 8%Klebsiella pneumoniae 7-8 45 ฐC 9%สัณฐาน และชีวเคมีcharacterizations สายพันธุ์ที่แยกได้ยังลักษณะทางสรีรวิทยาปัจจัยต่าง ๆ เช่นค่า pH อุณหภูมิ และเค็มสังเกตยอมรับพวกเขากำลังการผลิตในสภาพแวดล้อมความเครียด ที่ทดสอบสายพันธุ์แบคทีเรียที่ระบุสำหรับการธรรมชาติ halotolerance ตามค่า pH อุณหภูมิ และเค็ม สภาวะสรีรวิทยาของแยกสายพันธุ์ที่แสดงในตารางที่ 2 พบว่าทั้งหมดสายพันธุ์แยกชีวิตรอดในสภาพที่มี pH ต่าง ๆ 8-ฐC ระบอบ 40 อุณหภูมิ 9 – 45 ฐC และเค็มตั้งแต่8-9% จึง บ่งชี้ว่า เหล่านี้แยกได้ทนเกลือเพื่อใช้ได้ดำเนินการทดสอบความไวของยาปฏิชีวนะสำหรับแต่ละ4 ระบุชนิดแบคทีเรีย เซลล์เหล่านั้นที่ถูกทั้งหมดห้าม และล้มเหลวในการต่อต้านการกระทำของยาปฏิชีวนะกับพวกเขาได้กลายเป็นความไวต่อการยาปฏิชีวนะสอดคล้องกัน แต่ยับยั้งบางส่วนเกิดขึ้นเมื่ออย่างใดบางเซลล์ที่กลายพันธุ์ปรากฏขึ้นและพวกเขาสามารถต่อต้านการกระทำของยาปฏิชีวนะติด ๆ กันจากนั้น (Johnson และ al., 1995) ในการศึกษานี้ Shigelladysenteriae เดียวเท่านั้นที่แสดงให้เห็นว่าความไวในการพบ streptomycin แต่สายพันธุ์ที่เหลือสามความต้านทานการ streptomycin (ตาราง 3) ต่อต้านยาเสพติดหลายโดย Shigella sp.ไม่ใช่ (เลียน et al., 1994)แม้ว่าทั้งหมดแยกได้พบว่าความต้านทานการนีโอมัยซินและ chloramphenicol พวกเขาพบความหลากหลายของความไวให้ norfloxacin เตตราไซคลีน ciprofloxacinofloxacin และ nitrofurantoin แม้ว่าความไวกลางกรดนาลิดิซิกและ amoxicillinก็น่าสนใจที่จะสังเกตว่า ของที่แยกตัวอย่างจากสายพันธุ์ทน plasmid DNA ได้อาสาใน agarose เจต่อ electrophoresisไม่ว่าความเข้มข้นของ agarose ในเจ (ข้อมูลไม่แสดง) บางที การสังเกตยาปฏิชีวนะยอมรับในตาราง 3: การทดสอบความไวของยาปฏิชีวนะสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุทดสอบยาปฏิชีวนะยาปฏิชีวนะ (: g/ส่วน ลด)โซนของยับยั้งเส้นผ่าศูนย์กลาง (mm)SD SL BC KPNorfloxacin 10 30 (S) 25 (S) 27 (S) 27 (S)เตตราไซคลีน 30 19 (S) 20 (S) 22 (S) 19 (S)Ciprofloxacin 10 35 (S) 27 (S) 33 (S) 33 (S)นีโอมัยซิน 30 − (R) (R) −−− (R) (R)กรดนาลิดิซิก 30 18(I) 18(I) 16(I) 16(I)Ofloxacin 5 30 (S) 30 (S) 30 (S) 28 (S)Chloramphenicol 10 − (R) (R) −−− (R) (R)Nitrofurantoin 200 22 (S) 20 (S) 23 (S) 23 (S)Streptomycin 25 28 (S) − (R) (R) −− (R)Amoxicillin 25 14(I) 14(I) 15(I) 16(I)SD = Shigella dysenteriae SL =อุณหภูมิ lactis BC =คัด cereus KP =โรค KlebsiellaS =สำคัญ R =ทน ฉัน =ระดับปานกลางตาราง 4: ทดสอบสภาวะสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุทดสอบสิ่งมีชีวิตเจลแพร่ทดสอบหลอดAgglutination ทดสอบShigelladysenteriae+ +อุณหภูมิlactis+ +คัด cereus ++Klebsiellapneumoniae+ ++ =บวกสายพันธุ์ดังกล่าวแยกต่างหากจากน้ำกร่อยของเป็นลากูน 'Chilika' จาก phosphorylation/acetylationกิจกรรมของเอนไซม์ที่ถูกเข้ารหัส โดยยีน loci แบกรับในการของโครโมโซม DNA แทนบน plasmids ไม่เพื่อแบคทีเรีย enteric ระหว่างยาหลายจะต่อต้านกฎระเบียบของโครโมโซมโลกัสโพล มี.ค.แพร่หลายเท่าที่มีรายงานโดยโคเฮนและ al., (1993)ค่าขึ้นของมาร์ A นำไปแตกต่างกันของยีนของโครโมโซม 60 กว่าใน E. coli ได้การรายงาน โดยแตกต่างกันนัก ตามที่Barbosa และอัตรา (2000), เช่นชนิดของนิพจน์อาจปรึกษาหลายต้านทานยาปฏิชีวนะใน E. coliยีนอื่นได้แก่ emr harboured ใน E. coliโครโมโซมมีการระบุที่รหัสสำหรับโปรตีนผลิตภัณฑ์ของเมมเบรน translocase ครอบครัวและบัญชีการต่อต้านยาเสพติดหลาย (Lomovskaya et al., 1992)ทุกสายพันธุ์ที่แยกต่างหากจากตัวอย่างน้ำกร่อยของลากูน 'Chilika' เปิดเผย antigenic อักขระอ้างอิงบนสองทดสอบสภาวะต่าง ๆ ได้แก่เจลอาบน้ำทดสอบ และหลอด agglutination ทดสอบตามลำดับ(ตาราง 4) การสอบสวนอยู่อย่างเปิดเผยที่ค้างเหล่านี้สี่สัญญาทะเลแบคทีเรียสายพันธุ์ศักยภาพที่จะใช้สำหรับพัฒนาป้องกันอุบัติตัวแทนในอุตสาหกรรมยาและเภสัชวิทยาอย่างไรก็ตาม เพิ่มเติมตรวจสอบเป็น necessitated ก่อน exploiting สายพันธุ์เหล่านี้มุ่งที่การพัฒนาของนวนิยายและสารต้านเชื้อแบคทีเรียเฉพาะ ยาปฏิชีวนะ และเอนไซม์ซึ่งอาจมียาจำนวนมากค่า
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์และการอภิปราย
เพื่อระบุสายพันธุ์ที่ได้รับจาก 3 ภาคที่แตกต่างกันของ
ทะเลสาบ 'Chilika' แต่ละของพวกเขาได้ผ่านการต่างๆ
สัณฐานวิทยาชีวเคมี, สรีรวิทยาและทางภูมิคุ้มกัน
ตัวอักษร ผลที่ได้จากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
การทดสอบได้แสดงในตารางที่ 1. แยกอย่างใกล้ชิด
ที่เกี่ยวข้องกับ Shigella dysenteriae, Streptococcus lactis,
Bacillus cereus, Klebsiella pneumoniae (ตารางที่ 1 และ
ตารางที่ 2) ในจานอาหารเลี้ยงเชื้อ Shigella dysenteriae
ปรากฏบางเป็นแม้และอาณานิคมเทาวัด
แคลิฟอร์เนีย 3-4 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง อาณานิคม Streptococcus lactis เป็น
บางแม้การเจริญเติบโต-บนจานอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารตั้งแต่แคลิฟอร์เนีย 2-3
มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง ในการเปรียบเทียบอาณานิคม Bacillus cereus
ซึ่งได้รับการหมักบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารที่มี
ความอุดมสมบูรณ์, ทึบแสง, การเจริญเติบโตขี้ผึ้งสีขาวแคลิฟอร์เนียวัด 3-4
มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง Klebsiella pneumoniae เป็นอาณานิคม
skimy สีขาว, การเจริญเติบโตขึ้นกับแคลิฟอร์เนีย 2-4 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง
แต่ละโคโลนีแบคทีเรียเลี้ยงบนอาหารวุ้นสารอาหาร
จากนั้นจึงนำการย้อมสีแกรมและหลังจากนั้น
สังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์ รูปร่างและการย้อมสี
ทรัพย์สินของแบคทีเรียที่ถูกบันทึกไว้ Shigella
dysenteriae, Klebsiella pneumoniae และ Bacillus cereus
พบว่ามีเชื้อแบคทีเรียรูปแท่งในขณะที่
Streptococcus lactis มีทรงกลม (coccus) รูปร่าง
Streptococcus lactis และ Bacillus cereus พบว่ามี
เชื้อแบคทีเรียแกรมบวกในขณะที่ dysenteriae Shigella และ
Klebsiella pneumoniae เป็นแกรมลบ
ตาราง 1: การทดสอบทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมีเพื่อระบุตัวตนของสายพันธุ์
ทดสอบชีวิต
Shigella
dysenteriae
Streptococcus
lactis
Bacillus cereus
Klebsiella
pneumoniae
วุ้นวัฒนธรรมจาน
ลักษณะ
บางแม้เทา
เจริญเติบโต
บางแม้
การเจริญเติบโต
อุดมสมบูรณ์, ทึบแสง,
การเจริญเติบโตขี้ผึ้งสีขาว
ลื่นไหลสีขาว
เพิ่มขึ้นการเจริญเติบโต
สารสีน้ำเงินนม ปฏิกิริยาอัลคาไลน์เต้าหู้ Peptoniz-ation ก๊าซ
คราบแกรมของร็อด (-) Cocci (+) คัน (+) ร็อด (-)
แคปซูลคราบ - + - +
กรดรวดเร็วเปื้อน - - + -
การหมัก
แลคโตส - - AG
Dexrose AAA AG
ซูโครส AAA AG
H2S roduction - - - -
ลด NO3 + - + -
ผลิตอินโดล - - - -
ปฏิกิริยา MR + - -
ปฏิกิริยา VP - - +
ซิเตรตใช้ - - - +
ยูรีเอสกิจกรรม - - - +
คากิจกรรม + - + +
Oxidase กิจกรรม - - - -
เจลาตินเหลว - - + -
ย่อยสลายแป้งมัน - - + -
DNase ทดสอบ - - - -
ทริปเปิน้ำตาลเหล็กทดสอบแลคโตสกลูโคสกลูโคสกลูโคส
คอเลสเตอรอลจองจำ - + - -
อาร์จินี Dihydrolase - - - -
+ = บวก; - = ลบ; = กรด; AG = กรดและก๊าซธรรมชาติ
ตารางที่ 2: การทดสอบทางสรีรวิทยาสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ในสภาวะที่เหมาะสมใน
การทดสอบที่มีชีวิตความเป็นกรดด่างอุณหภูมิความเค็ม
Shigella dysenteriae 7-8 40 ฐ C 9%
Streptococcus lactis 7-9 40 ฐ C 9%
Bacillus cereus ที่ 7-9 45 ฐ C 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 45 ฐ C 9%
นอกจากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
สอบของสายพันธุ์ที่แยกก็ยัง
โดดเด่นด้วยปัจจัยทางสรีรวิทยาที่แตกต่างกันเช่น
ค่า pH อุณหภูมิและความเค็มที่จะสังเกตเห็นความอดทนของพวกเขา
กำลังการผลิตในภาวะกดดันด้านสิ่งแวดล้อม
แบคทีเรียชนิดระบุผ่านการตรวจของพวกเขา
ธรรมชาติ halotolerance บนพื้นฐานของความเป็นกรดด่างอุณหภูมิและ
ความเค็ม สภาพร่างกายที่ดีที่สุดของการแยก
สายพันธุ์ถูกแสดงไว้ในตารางที่ 2 พบว่าทุก
สายพันธุ์ที่แยกอยู่รอดในสภาวะที่ค่า pH แตกต่างกันที่ 8 -
9 ระบอบอุณหภูมิ 40 ฐ C - 45 ฐ C, และความเค็มตั้งแต่
8 - 9% จึง แสดงให้เห็นว่าเชื้อเหล่านี้
ทนเกลือ
การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะได้ดำเนินการสำหรับแต่ละ
สี่ระบุสายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรีย เซลล์เหล่านั้นซึ่งเป็น
ยับยั้งอย่างสมบูรณ์และล้มเหลวในการต่อต้านการกระทำของ
ยาปฏิชีวนะกับพวกเขากลายเป็นความไวต่อ
ยาปฏิชีวนะที่เกี่ยวข้อง แต่การยับยั้งบางส่วนที่เกิดขึ้น
เมื่อใดบางเซลล์กลายพันธุ์โผล่ออกมาและพวกเขา
อย่างต่อเนื่องสามารถต้านทานการกระทำของยาปฏิชีวนะ
กับพวกเขา (จอห์นสัน et al., 1995) ในการศึกษานี้ Shigella
dysenteriae เป็นเพียงคนเดียวที่แสดงให้เห็นความไวต่อ
streptomycin แต่สามสายพันธุ์ที่เหลืออยู่แสดงให้เห็น
ความต้านทานต่อ streptomycin (ตารางที่ 3) ต้านทานหลายยาเสพติด
โดย Shigella SP ไม่ใช่เรื่องแปลก (ภาระและคณะ, 1994.)
แม้ว่าทุกไอโซเลทที่แสดงให้เห็นความต้านทานต่อ NEOMYCIN
และ chloramphenicol; พวกเขาแสดงให้เห็นความหลากหลายของ
ความไวต่อ norfloxacin, tetracycline, ciprofloxacin,
Ofloxacin และ nitrofurantoin; แม้จะเป็นสื่อกลางความไว
ต่อกรด nalidixic amoxicillin และ
มันน่าสนใจที่จะต้องทราบว่าในไม่มีการสกัด
ตัวอย่างจากสายพันธุ์ที่ทนพลาสมิดดีเอ็นเอที่
ตรวจพบในเจลอิเล็ก agarose ต่อไป
โดยไม่คำนึงถึงความเข้มข้นใน agarose เจล (ข้อมูลไม่
แสดง) บางทีอาจจะเป็นความอดทนยาปฏิชีวนะที่พบใน
ตารางที่ 3: การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ในการทดสอบยาปฏิชีวนะยาปฏิชีวนะ (: g / แผ่น)
โซนของการยับยั้งเส้นผ่าศูนย์กลาง (มม)
SD SL BC KP
Norfloxacin 10 30 (S) 25 (S) 27 (S) 27 (S)
Tetracycline 30 19 (S) 20 (S) 22 (S) 19 (S)
Ciprofloxacin 10 35 (S) 27 (S) 33 (S) 33 (S)
Neomycin 30 - (R) - (R) - (R) - (R)
Nalidixic กรด 30 18 (I) 18 (I) 16 (I) 16 (I)
Ofloxacin 5 30 (S) 30 (S) 30 (S) 28 (S)
Chloramphenicol 10 - (R ) - (R) - (R) - (R)
Nitrofurantoin 200 22 (S) 20 (S) 23 (S) 23 (S)
Streptomycin 25 28 (S) - (R) - (R) - () R
Amoxicillin 25 14 (I) 14 (I) 15 (I) 16 (I)
SD = Shigella dysenteriae; SL = Streptococcus lactis; BC = Bacillus cereus; KP = Klebsiella ปอดบวม
S = สำคัญ; R = ทน; I = กลาง
ตารางที่ 4: การทดสอบทางเซรุ่มวิทยาสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ทดสอบชีวิต
เจแพร่
ทดสอบ
หลอด
จับกลุ่ม
Shigella
dysenteriae
+
Streptococcus
lactis
+
Bacillus cereus +
Klebsiella
pneumoniae
+ +
+ = บวก
สายพันธุ์ดังกล่าวแยกออกจากน้ำกร่อยของ
'Chilika' ทะเลสาบที่เกิดจากการ phosphorylation / acetylation
กิจกรรมของเอนไซม์เข้ารหัสโดยยีน loci พัดพา
ดีเอ็นเอโครโมโซมแทนในพลาสมิด มันไม่ใช่
เรื่องแปลกที่จะแบคทีเรียในลำไส้ในระหว่างที่หลายยาเสพติด
ต้านทานทีโครโมโซมกฎระเบียบ มี.ค. เป็น
ที่แพร่หลายเท่าที่รายงานโดยโคเฮน et al., (1993)
การแสดงออกของ Constitutive มี.ค. ที่นำไปสู่ความแตกต่าง
การแสดงออกของยีนมากกว่า 60 โครโมโซมใน อีโคไลได้
รับรายงานจากผู้ตรวจสอบที่แตกต่างกัน ตามที่
แปและประกาศ (2000) ชนิดดังกล่าวในการแสดงออก
อาจจะมีการประชุมหลายต้านทานยาปฏิชีวนะในเชื้อ E. coli
ยีนคือ EMR เก็บงำในอีโคไลอีก
โครโมโซมได้รับการยืนยันว่ารหัสสำหรับโปรตีน
ผลิตภัณฑ์ของเมมเบรนครอบครัว translocase และบัญชี
สำหรับหลาย ต้านทานยาเสพติด (Lomovskaya et al., 1992)
สายพันธุ์ทั้งหมดที่แยกได้จากตัวอย่างน้ำกร่อยของ
ทะเลสาบ 'Chilika' เผยให้เห็นตัวละครที่แข็งแกร่งแอนติเจน
พิจารณาจากการทดสอบสองทางภูมิคุ้มกันที่แตกต่างกันคือเจล
ทดสอบการแพร่กระจายและท่อเกาะกลุ่มการทดสอบตามลำดับ
(ตารางที่ 4) การตรวจสอบในปัจจุบันอย่างมากเผยให้เห็นว่า
ทั้งสี่มีแนวโน้มที่แบคทีเรียทางทะเลถือ
ที่มีศักยภาพที่จะใช้สำหรับการพัฒนาของการต่อต้านเชื้อโรค
ตัวแทนเภสัชวิทยาและเภสัชกรรมอุตสาหกรรม
อย่างไรก็ตามการตรวจสอบเพิ่มเติมเพียงพอก่อนที่จะใช้ประโยชน์จากสายพันธุ์เหล่านี้เล็งไปที่การพัฒนาของนวนิยาย
และสารต้านเชื้อแบคทีเรียที่เฉพาะเจาะจง ยาปฏิชีวนะและ
เอนไซม์ที่สามารถให้ยามาก
ค่า
เพื่อระบุสายพันธุ์ที่ได้รับจาก 3 ภาคที่แตกต่างกันของ
ทะเลสาบ 'Chilika' แต่ละของพวกเขาได้ผ่านการต่างๆ
สัณฐานวิทยาชีวเคมี, สรีรวิทยาและทางภูมิคุ้มกัน
ตัวอักษร ผลที่ได้จากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
การทดสอบได้แสดงในตารางที่ 1. แยกอย่างใกล้ชิด
ที่เกี่ยวข้องกับ Shigella dysenteriae, Streptococcus lactis,
Bacillus cereus, Klebsiella pneumoniae (ตารางที่ 1 และ
ตารางที่ 2) ในจานอาหารเลี้ยงเชื้อ Shigella dysenteriae
ปรากฏบางเป็นแม้และอาณานิคมเทาวัด
แคลิฟอร์เนีย 3-4 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง อาณานิคม Streptococcus lactis เป็น
บางแม้การเจริญเติบโต-บนจานอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารตั้งแต่แคลิฟอร์เนีย 2-3
มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง ในการเปรียบเทียบอาณานิคม Bacillus cereus
ซึ่งได้รับการหมักบนจานอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารที่มี
ความอุดมสมบูรณ์, ทึบแสง, การเจริญเติบโตขี้ผึ้งสีขาวแคลิฟอร์เนียวัด 3-4
มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง Klebsiella pneumoniae เป็นอาณานิคม
skimy สีขาว, การเจริญเติบโตขึ้นกับแคลิฟอร์เนีย 2-4 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง
แต่ละโคโลนีแบคทีเรียเลี้ยงบนอาหารวุ้นสารอาหาร
จากนั้นจึงนำการย้อมสีแกรมและหลังจากนั้น
สังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์ รูปร่างและการย้อมสี
ทรัพย์สินของแบคทีเรียที่ถูกบันทึกไว้ Shigella
dysenteriae, Klebsiella pneumoniae และ Bacillus cereus
พบว่ามีเชื้อแบคทีเรียรูปแท่งในขณะที่
Streptococcus lactis มีทรงกลม (coccus) รูปร่าง
Streptococcus lactis และ Bacillus cereus พบว่ามี
เชื้อแบคทีเรียแกรมบวกในขณะที่ dysenteriae Shigella และ
Klebsiella pneumoniae เป็นแกรมลบ
ตาราง 1: การทดสอบทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมีเพื่อระบุตัวตนของสายพันธุ์
ทดสอบชีวิต
Shigella
dysenteriae
Streptococcus
lactis
Bacillus cereus
Klebsiella
pneumoniae
วุ้นวัฒนธรรมจาน
ลักษณะ
บางแม้เทา
เจริญเติบโต
บางแม้
การเจริญเติบโต
อุดมสมบูรณ์, ทึบแสง,
การเจริญเติบโตขี้ผึ้งสีขาว
ลื่นไหลสีขาว
เพิ่มขึ้นการเจริญเติบโต
สารสีน้ำเงินนม ปฏิกิริยาอัลคาไลน์เต้าหู้ Peptoniz-ation ก๊าซ
คราบแกรมของร็อด (-) Cocci (+) คัน (+) ร็อด (-)
แคปซูลคราบ - + - +
กรดรวดเร็วเปื้อน - - + -
การหมัก
แลคโตส - - AG
Dexrose AAA AG
ซูโครส AAA AG
H2S roduction - - - -
ลด NO3 + - + -
ผลิตอินโดล - - - -
ปฏิกิริยา MR + - -
ปฏิกิริยา VP - - +
ซิเตรตใช้ - - - +
ยูรีเอสกิจกรรม - - - +
คากิจกรรม + - + +
Oxidase กิจกรรม - - - -
เจลาตินเหลว - - + -
ย่อยสลายแป้งมัน - - + -
DNase ทดสอบ - - - -
ทริปเปิน้ำตาลเหล็กทดสอบแลคโตสกลูโคสกลูโคสกลูโคส
คอเลสเตอรอลจองจำ - + - -
อาร์จินี Dihydrolase - - - -
+ = บวก; - = ลบ; = กรด; AG = กรดและก๊าซธรรมชาติ
ตารางที่ 2: การทดสอบทางสรีรวิทยาสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ในสภาวะที่เหมาะสมใน
การทดสอบที่มีชีวิตความเป็นกรดด่างอุณหภูมิความเค็ม
Shigella dysenteriae 7-8 40 ฐ C 9%
Streptococcus lactis 7-9 40 ฐ C 9%
Bacillus cereus ที่ 7-9 45 ฐ C 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 45 ฐ C 9%
นอกจากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
สอบของสายพันธุ์ที่แยกก็ยัง
โดดเด่นด้วยปัจจัยทางสรีรวิทยาที่แตกต่างกันเช่น
ค่า pH อุณหภูมิและความเค็มที่จะสังเกตเห็นความอดทนของพวกเขา
กำลังการผลิตในภาวะกดดันด้านสิ่งแวดล้อม
แบคทีเรียชนิดระบุผ่านการตรวจของพวกเขา
ธรรมชาติ halotolerance บนพื้นฐานของความเป็นกรดด่างอุณหภูมิและ
ความเค็ม สภาพร่างกายที่ดีที่สุดของการแยก
สายพันธุ์ถูกแสดงไว้ในตารางที่ 2 พบว่าทุก
สายพันธุ์ที่แยกอยู่รอดในสภาวะที่ค่า pH แตกต่างกันที่ 8 -
9 ระบอบอุณหภูมิ 40 ฐ C - 45 ฐ C, และความเค็มตั้งแต่
8 - 9% จึง แสดงให้เห็นว่าเชื้อเหล่านี้
ทนเกลือ
การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะได้ดำเนินการสำหรับแต่ละ
สี่ระบุสายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรีย เซลล์เหล่านั้นซึ่งเป็น
ยับยั้งอย่างสมบูรณ์และล้มเหลวในการต่อต้านการกระทำของ
ยาปฏิชีวนะกับพวกเขากลายเป็นความไวต่อ
ยาปฏิชีวนะที่เกี่ยวข้อง แต่การยับยั้งบางส่วนที่เกิดขึ้น
เมื่อใดบางเซลล์กลายพันธุ์โผล่ออกมาและพวกเขา
อย่างต่อเนื่องสามารถต้านทานการกระทำของยาปฏิชีวนะ
กับพวกเขา (จอห์นสัน et al., 1995) ในการศึกษานี้ Shigella
dysenteriae เป็นเพียงคนเดียวที่แสดงให้เห็นความไวต่อ
streptomycin แต่สามสายพันธุ์ที่เหลืออยู่แสดงให้เห็น
ความต้านทานต่อ streptomycin (ตารางที่ 3) ต้านทานหลายยาเสพติด
โดย Shigella SP ไม่ใช่เรื่องแปลก (ภาระและคณะ, 1994.)
แม้ว่าทุกไอโซเลทที่แสดงให้เห็นความต้านทานต่อ NEOMYCIN
และ chloramphenicol; พวกเขาแสดงให้เห็นความหลากหลายของ
ความไวต่อ norfloxacin, tetracycline, ciprofloxacin,
Ofloxacin และ nitrofurantoin; แม้จะเป็นสื่อกลางความไว
ต่อกรด nalidixic amoxicillin และ
มันน่าสนใจที่จะต้องทราบว่าในไม่มีการสกัด
ตัวอย่างจากสายพันธุ์ที่ทนพลาสมิดดีเอ็นเอที่
ตรวจพบในเจลอิเล็ก agarose ต่อไป
โดยไม่คำนึงถึงความเข้มข้นใน agarose เจล (ข้อมูลไม่
แสดง) บางทีอาจจะเป็นความอดทนยาปฏิชีวนะที่พบใน
ตารางที่ 3: การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ในการทดสอบยาปฏิชีวนะยาปฏิชีวนะ (: g / แผ่น)
โซนของการยับยั้งเส้นผ่าศูนย์กลาง (มม)
SD SL BC KP
Norfloxacin 10 30 (S) 25 (S) 27 (S) 27 (S)
Tetracycline 30 19 (S) 20 (S) 22 (S) 19 (S)
Ciprofloxacin 10 35 (S) 27 (S) 33 (S) 33 (S)
Neomycin 30 - (R) - (R) - (R) - (R)
Nalidixic กรด 30 18 (I) 18 (I) 16 (I) 16 (I)
Ofloxacin 5 30 (S) 30 (S) 30 (S) 28 (S)
Chloramphenicol 10 - (R ) - (R) - (R) - (R)
Nitrofurantoin 200 22 (S) 20 (S) 23 (S) 23 (S)
Streptomycin 25 28 (S) - (R) - (R) - () R
Amoxicillin 25 14 (I) 14 (I) 15 (I) 16 (I)
SD = Shigella dysenteriae; SL = Streptococcus lactis; BC = Bacillus cereus; KP = Klebsiella ปอดบวม
S = สำคัญ; R = ทน; I = กลาง
ตารางที่ 4: การทดสอบทางเซรุ่มวิทยาสำหรับจุลินทรีย์ที่ระบุ
ทดสอบชีวิต
เจแพร่
ทดสอบ
หลอด
จับกลุ่ม
Shigella
dysenteriae
+
Streptococcus
lactis
+
Bacillus cereus +
Klebsiella
pneumoniae
+ +
+ = บวก
สายพันธุ์ดังกล่าวแยกออกจากน้ำกร่อยของ
'Chilika' ทะเลสาบที่เกิดจากการ phosphorylation / acetylation
กิจกรรมของเอนไซม์เข้ารหัสโดยยีน loci พัดพา
ดีเอ็นเอโครโมโซมแทนในพลาสมิด มันไม่ใช่
เรื่องแปลกที่จะแบคทีเรียในลำไส้ในระหว่างที่หลายยาเสพติด
ต้านทานทีโครโมโซมกฎระเบียบ มี.ค. เป็น
ที่แพร่หลายเท่าที่รายงานโดยโคเฮน et al., (1993)
การแสดงออกของ Constitutive มี.ค. ที่นำไปสู่ความแตกต่าง
การแสดงออกของยีนมากกว่า 60 โครโมโซมใน อีโคไลได้
รับรายงานจากผู้ตรวจสอบที่แตกต่างกัน ตามที่
แปและประกาศ (2000) ชนิดดังกล่าวในการแสดงออก
อาจจะมีการประชุมหลายต้านทานยาปฏิชีวนะในเชื้อ E. coli
ยีนคือ EMR เก็บงำในอีโคไลอีก
โครโมโซมได้รับการยืนยันว่ารหัสสำหรับโปรตีน
ผลิตภัณฑ์ของเมมเบรนครอบครัว translocase และบัญชี
สำหรับหลาย ต้านทานยาเสพติด (Lomovskaya et al., 1992)
สายพันธุ์ทั้งหมดที่แยกได้จากตัวอย่างน้ำกร่อยของ
ทะเลสาบ 'Chilika' เผยให้เห็นตัวละครที่แข็งแกร่งแอนติเจน
พิจารณาจากการทดสอบสองทางภูมิคุ้มกันที่แตกต่างกันคือเจล
ทดสอบการแพร่กระจายและท่อเกาะกลุ่มการทดสอบตามลำดับ
(ตารางที่ 4) การตรวจสอบในปัจจุบันอย่างมากเผยให้เห็นว่า
ทั้งสี่มีแนวโน้มที่แบคทีเรียทางทะเลถือ
ที่มีศักยภาพที่จะใช้สำหรับการพัฒนาของการต่อต้านเชื้อโรค
ตัวแทนเภสัชวิทยาและเภสัชกรรมอุตสาหกรรม
อย่างไรก็ตามการตรวจสอบเพิ่มเติมเพียงพอก่อนที่จะใช้ประโยชน์จากสายพันธุ์เหล่านี้เล็งไปที่การพัฒนาของนวนิยาย
และสารต้านเชื้อแบคทีเรียที่เฉพาะเจาะจง ยาปฏิชีวนะและ
เอนไซม์ที่สามารถให้ยามาก
ค่า
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลและการอภิปราย
ระบุสายพันธุ์ที่ได้จาก 3 ภาคที่แตกต่างกันของ
' chilika ' ลากูน แต่ละของพวกเขา ทดสอบต่าง ๆสารอัลลิซิน
, สรีรวิทยา และการศึกษาตัวละคร ผลของลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
การทดสอบถูกนำเสนอในตารางที่ 1 . สายพันธุ์อย่างใกล้ชิด
เกี่ยวข้องกับชิเกลลา dysenteriae Streptococcus lactis
, , Bacillus cereus ,Klebsiella pneumoniae ( ตารางที่ 1 และตารางที่ 2
) ในอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารแผ่นชิเกลลา dysenteriae
ปรากฏเป็นบางและแม้แต่อาณานิคม
ประมาณ 3-4 มม. เทาวัดเส้นผ่าศูนย์กลาง Streptococcus lactis อาณานิคมได้ถูก
บาง แม้การเจริญเติบโตบนแผ่นวุ้นสารอาหารตั้งแต่ประมาณ 2-3
มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ในการเปรียบเทียบ , Bacillus cereus อาณานิคม
ซึ่งถูกหมักในจานวุ้นสารอาหารได้
มากมาย , ขุ่นข้าวเหนียวขาวเจริญวัดประมาณ 3-4
มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง Klebsiella pneumoniae อาณานิคมได้ถูก
skimy สีขาว ยกเจริญด้วยประมาณ 2-4 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง .
เพาะเลี้ยงบนอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารแต่ละโคโลนีแบคทีเรียขนาดกลาง
จากนั้นภายใต้กรัม staining และหลังจากนั้น
ตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ รูปร่างและการย้อมสี
คุณสมบัติของแบคทีเรียถูกบันทึกไว้ dysenteriae ชิเกลลา
,Klebsiella pneumoniae และ Bacillus cereus
พบว่ามีแบคทีเรีย Streptococcus lactis
rod-shaped ในขณะที่มีทรงกลม ( รูปทรงกลม ) รูปร่าง และ Streptococcus lactis
Bacillus cereus พบว่ามีแบคทีเรียกรัมบวก ในขณะที่ชิเกลล่า
Klebsiella pneumoniae และ dysenteriae เป็นแกรมลบ ตารางที่ 1 : การทดสอบ
ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมีชนิดของสายพันธุ์
ทดสอบ สิ่งมีชีวิต
dysenteriae Streptococcus lactis ชิเกลล่า
Bacillus cereus Klebsiella pneumoniae agar plate culture
บางลักษณะ แม้กระทั่ง เทา
การเจริญเติบโตบาง แม้การเจริญเติบโตมากมาย
,
ข้าวเหนียวขาวขุ่น , การลื่น ขาวขึ้น
การปฏิกิริยาด่างเหมือนนมเต้าหู้ peptoniz ation แก๊ส
กรัมเป็นคราบ แกน ( - ) เชื้อ ( ) ( ) ( -- ) เหล็กแท่งแคปซูล - -
คราบกรดเร็วคราบ - - -
หมักแลคโตส - -
dexrose เอจีเป็นเป็น AG
ซูโครสเป็นเป็น h2s บริษัทเอจี
- - - -
- -
3 ลดการผลิตอินโดล - - - - - -
นายปฏิกิริยาของปฏิกิริยา - -
- -
- citrate ใช้ที่มีกิจกรรม - - -
-
โดยสามารถกิจกรรม กิจกรรม - - - - - - -
gelatin liquefaction ย่อยแป้ง - - -
- -
- - ตรวจหา ADNase ทดสอบน้ำตาลแลคโตส กลูโคสกลูโคสเหล็กสามการทดสอบกลูโคส
คอเลสเตอรอลละลาย - - -
อาร์ dihydrolase - - - -
= บวก - ลบ = = ; ; กรด ; กรดและแก๊ส AG = โต๊ะ 2
: การทดสอบทางสรีรวิทยาเพื่อระบุพารามิเตอร์ที่เหมาะสมที่จุลินทรีย์
ชิเกลลา อุณหภูมิ ความเค็ม pH ทดสอบสิ่งมีชีวิต dysenteriae 7-8 40 องศาเซลเซียส 9 %
Streptococcus lactis 7-9 40 องศาเซลเซียส 9 %
Bacillus cereus 7-9 45 องศา 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 %
9 45 องศาเซลเซียสนอกจากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
characterizations แยกสายพันธุ์มีลักษณะทางสรีรวิทยาและปัจจัยต่าง ๆ
เป็น pH , อุณหภูมิและความเค็ม เพื่อสังเกตความสามารถความอดทน
ในภาวะเครียดทางสิ่งแวดล้อม
ระบุแบคทีเรียสายพันธุ์ทดสอบธรรมชาติ
halotolerance ของพวกเขาบนพื้นฐานของค่า pH , อุณหภูมิและ
ความเค็มการศึกษาสภาวะที่เหมาะสมของแยก
สายพันธุ์แสดงในตารางที่ 2 พบว่าทุกสายพันธุ์ที่แยกได้ในเงื่อนไข
แตกต่าง pH 8 -
9 อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียส และ 45 องศาเซลเซียส และความเค็มตั้งแต่
8 – 9 เปอร์เซ็นต์ จึงแสดงให้เห็นว่าเหล่านี้สายพันธุ์เป็นเกลือ
.
การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะได้
4 ระบุ แบคทีเรียชนิด
ระบุสายพันธุ์ที่ได้จาก 3 ภาคที่แตกต่างกันของ
' chilika ' ลากูน แต่ละของพวกเขา ทดสอบต่าง ๆสารอัลลิซิน
, สรีรวิทยา และการศึกษาตัวละคร ผลของลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
การทดสอบถูกนำเสนอในตารางที่ 1 . สายพันธุ์อย่างใกล้ชิด
เกี่ยวข้องกับชิเกลลา dysenteriae Streptococcus lactis
, , Bacillus cereus ,Klebsiella pneumoniae ( ตารางที่ 1 และตารางที่ 2
) ในอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารแผ่นชิเกลลา dysenteriae
ปรากฏเป็นบางและแม้แต่อาณานิคม
ประมาณ 3-4 มม. เทาวัดเส้นผ่าศูนย์กลาง Streptococcus lactis อาณานิคมได้ถูก
บาง แม้การเจริญเติบโตบนแผ่นวุ้นสารอาหารตั้งแต่ประมาณ 2-3
มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ในการเปรียบเทียบ , Bacillus cereus อาณานิคม
ซึ่งถูกหมักในจานวุ้นสารอาหารได้
มากมาย , ขุ่นข้าวเหนียวขาวเจริญวัดประมาณ 3-4
มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง Klebsiella pneumoniae อาณานิคมได้ถูก
skimy สีขาว ยกเจริญด้วยประมาณ 2-4 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง .
เพาะเลี้ยงบนอาหารเลี้ยงเชื้อสารอาหารแต่ละโคโลนีแบคทีเรียขนาดกลาง
จากนั้นภายใต้กรัม staining และหลังจากนั้น
ตรวจสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์ รูปร่างและการย้อมสี
คุณสมบัติของแบคทีเรียถูกบันทึกไว้ dysenteriae ชิเกลลา
,Klebsiella pneumoniae และ Bacillus cereus
พบว่ามีแบคทีเรีย Streptococcus lactis
rod-shaped ในขณะที่มีทรงกลม ( รูปทรงกลม ) รูปร่าง และ Streptococcus lactis
Bacillus cereus พบว่ามีแบคทีเรียกรัมบวก ในขณะที่ชิเกลล่า
Klebsiella pneumoniae และ dysenteriae เป็นแกรมลบ ตารางที่ 1 : การทดสอบ
ลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมีชนิดของสายพันธุ์
ทดสอบ สิ่งมีชีวิต
dysenteriae Streptococcus lactis ชิเกลล่า
Bacillus cereus Klebsiella pneumoniae agar plate culture
บางลักษณะ แม้กระทั่ง เทา
การเจริญเติบโตบาง แม้การเจริญเติบโตมากมาย
,
ข้าวเหนียวขาวขุ่น , การลื่น ขาวขึ้น
การปฏิกิริยาด่างเหมือนนมเต้าหู้ peptoniz ation แก๊ส
กรัมเป็นคราบ แกน ( - ) เชื้อ ( ) ( ) ( -- ) เหล็กแท่งแคปซูล - -
คราบกรดเร็วคราบ - - -
หมักแลคโตส - -
dexrose เอจีเป็นเป็น AG
ซูโครสเป็นเป็น h2s บริษัทเอจี
- - - -
- -
3 ลดการผลิตอินโดล - - - - - -
นายปฏิกิริยาของปฏิกิริยา - -
- -
- citrate ใช้ที่มีกิจกรรม - - -
-
โดยสามารถกิจกรรม กิจกรรม - - - - - - -
gelatin liquefaction ย่อยแป้ง - - -
- -
- - ตรวจหา ADNase ทดสอบน้ำตาลแลคโตส กลูโคสกลูโคสเหล็กสามการทดสอบกลูโคส
คอเลสเตอรอลละลาย - - -
อาร์ dihydrolase - - - -
= บวก - ลบ = = ; ; กรด ; กรดและแก๊ส AG = โต๊ะ 2
: การทดสอบทางสรีรวิทยาเพื่อระบุพารามิเตอร์ที่เหมาะสมที่จุลินทรีย์
ชิเกลลา อุณหภูมิ ความเค็ม pH ทดสอบสิ่งมีชีวิต dysenteriae 7-8 40 องศาเซลเซียส 9 %
Streptococcus lactis 7-9 40 องศาเซลเซียส 9 %
Bacillus cereus 7-9 45 องศา 8 %
Klebsiella pneumoniae 7-8 %
9 45 องศาเซลเซียสนอกจากลักษณะทางสัณฐานวิทยาและชีวเคมี
characterizations แยกสายพันธุ์มีลักษณะทางสรีรวิทยาและปัจจัยต่าง ๆ
เป็น pH , อุณหภูมิและความเค็ม เพื่อสังเกตความสามารถความอดทน
ในภาวะเครียดทางสิ่งแวดล้อม
ระบุแบคทีเรียสายพันธุ์ทดสอบธรรมชาติ
halotolerance ของพวกเขาบนพื้นฐานของค่า pH , อุณหภูมิและ
ความเค็มการศึกษาสภาวะที่เหมาะสมของแยก
สายพันธุ์แสดงในตารางที่ 2 พบว่าทุกสายพันธุ์ที่แยกได้ในเงื่อนไข
แตกต่าง pH 8 -
9 อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียส และ 45 องศาเซลเซียส และความเค็มตั้งแต่
8 – 9 เปอร์เซ็นต์ จึงแสดงให้เห็นว่าเหล่านี้สายพันธุ์เป็นเกลือ
.
การทดสอบความไวต่อยาปฏิชีวนะได้
4 ระบุ แบคทีเรียชนิด
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- have been ding
- ใช้งานได้จริง
- ตึกนี้ พ่อเป็นคนออกแบบ
- Our group can't see Customer Testimonial
- 美样东西要用时间。可是我爱你呢我一天 我也可以爱你。可是你爱我的话用一年的时间你
- พีระมิดแดง (Red Pyramid) สร้างโดยฟาโรห์ส
- เพื่อความสะดวกในการใช้ชีวิตประจำวัน
- yes, please
- Be ethical, honest, well-intentioned, an
- สุดท้ายนี้
- Shall we get to it, the two of us?
- เมนูรักสุขภาพ
- What's wrong with Jim today ?
- และมีสิ่งที่อันตรายมากๆรอพวกเขาอยู่
- this is something that can be fixed and
- โกรธฉันไช่ใหม
- I will see you tomorrow too
- Why do not you trust me?
- ฉันไม่สวย
- ข้าว กินแล้วล่ะ
- Ethnic Food
- Was
- โปรแกรมจะเรียงประโยคให้ฉันได้ทันที to wa
- dark hours
