to prevent growth of mesophilic str

to prevent growth of mesophilic strains (Gould, 1999). If this, or an
equivalent heat treatment, is not applied then a controlling factor or
a combination of controlling factors would be required to ensure the
safety of any food that is capable of supporting the growth of
C. botulinum. Failure to control growth of C. botulinum can lead to
foods becoming toxic before off-odours or textural changes are
detected by the consumer (Miller, Call, & Whiting, 1993). For
example, Taylor, Cann, and Welch (1990) found that toxins were
produced in fish before they were judged as unacceptable. As the
heat treatment given to the chicken in this casewould not have been
severe enough to give sufficient inactivation of C. botulinum spores
and HPP does not inactivate spores,weexamined the effects of some
other control measures. These were; the addition of 2% lactate, the
use of oxygen-permeable packaging and the use of a protective
culture that had been isolated from naturally contaminated cooked
chicken. Other measures that may be used to control nonproteolytic
C. botulinum include storage at 3.5% sodium chloride, reduction in aw below
0.97 or a combination of these (Food Standards Agency, 2008).
However, in HPP cooked chicken these control measuresmay not be
practical or desirable from a quality or marketing point of view.
This study confirms that C. botulinum will multiply in pressuretreated
cooked chicken if no control measures are put in place.
Toxin testing was not carried out, but it is likely that toxin would
have been produced in samples where C. botulinum proliferated
over this storage time. Similar or lower inoculum levels have led to
toxin production after storage periods of less than two weeks in
various substrates (Notermans, 1993). However, Taylor et al. (1990)
found that type E strains showed poor toxin production when
stored at 8
C, so perhaps it should not be assumed that toxins were
produced by all strains under the storage conditions used here.
It should be noted that in these studies we used sterilised
chicken to prevent interference from the endogenous microbiota. If
the natural microbiota had been left intact there may have been
competing microorganisms present that could have inhibited or
delayed the growth of C. botulinum. The possibility that endogenous
microbiota may also create conditions suitable for growth of
C. botulinum in the oxygen-permeable pouches should also be
considered. However, in a previous study the only microorganism
that survived HPP in cooked chicken and multiplied during storage
was W. viridescens (Patterson et al., 2010).
The use of oxygen permeable packaging resulted in no increase
in C. botulinum over the course of the 91 day storage period. This
would suggest that oxygen-permeable packaging would be a useful
tool to reduce the risk of botulism from HPP cooked chicken.
However, oxygen permeable packaging on its own is not recommended
as a control measure, as the presence of oxygen can not be
relied on. There may be anaerobic spots in the package or the food
may be sufficiently reduced to support growth and toxin production
(Peck, 1997). Therefore oxygen permeable packaging should
only be used as an additional measure in conjunction with other
control measures.
The control of germination and growth of C. botulinum by the
addition of 2% sodium lactate observed here concurs with earlier
publications, albeit in different substrates and without HPP.
Houtsma, Heuvelink, Duferenne, and Notermans (1994) found that
lactate inhibited the germination and growth of C. botulinum in a
model system. Other studies showed that sodium lactate was
effective against C. botulinum and that the effects were not attributable
to sodium ion levels or an aw lowering effect (Shelef, 1994).
Sodium lactate has the added advantage that it is effective against
other pathogens (Shelef, 1994; Thompson et al., 2008). In addition,
HPP was found to work synergistically with sodium lactate in
cooked chicken to reduce numbers of L. monocytogenes (Patterson,
Mackle, & Linton, 2011).
Fig. 1. Clostridium botulinum counts in HPP cooked chicken (pre-sterilised by irradiation)
during storage at 8
C. --- total count in vacuum packs, –,– spore count in
vacuum packs, -:- total count in oxygen-permeable packs, –6– spore count in oxygen-
permeable packs, -A- total count in vacuum packs with 2% sodium lactate added,
–>– spore count in vacuum packs with 2% sodium lactate added. Error bars
represent  standard deviation.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เพื่อป้องกันการเจริญเติบโตของสายพันธุ์ mesophilic (Gould, 1999) ถ้า หรือมีเทียบเท่าความร้อน ไม่มีใช้ แล้วการควบคุมปัจจัย หรือจะต้องควบคุมปัจจัยต่าง ๆ เพื่อให้การความปลอดภัยของอาหารที่สามารถสนับสนุนการเติบโตของท๊อกซ์ C. ความล้มเหลวในการควบคุมการเจริญเติบโตของ C. ท๊อกซ์สามารถนำไปอาหารเป็นพิษก่อนปิดกลิ่นหรือเปลี่ยนแปลง texturalพบผู้บริโภค (มิลเลอร์ โทร และฟอกสี ขาว 1993) สำหรับตัวอย่าง เทย์เลอร์ Cann และ Welch (1990) พบว่า มีสารพิษผลิตในปลาก่อนจะถูกตัดสินยอมรับเป็น เป็นการไม่ได้รับความร้อนให้กับไก่ใน casewould นี้รุนแรงมากพอที่จะให้จำนวนสปอร์ C. botulinum ฤทธิ์เพียงพอและ HPP ไม่ยกเลิกเรียกรา weexamined ลักษณะพิเศษบางอย่างมาตรการควบคุมอื่น ๆ เหล่านี้ได้ นอกเหนือจาก 2% แลคเตท การใช้บรรจุออกซิเจนได้และใช้ป้องกันตัววัฒนธรรมที่แยกได้จากธรรมชาติมีการปนเปื้อนอาหารไก่ มาตรการอื่น ๆ ที่อาจใช้เพื่อควบคุม nonproteolyticC. botulinum รวมเก็บ < 3 C การลดค่า pHด้านล่าง 5.0 เพิ่ม > 3.5% โซเดียมคลอไรด์ การลดลงขอ ด้านล่าง0.97 หรือชุดของเหล่านี้ (อาหารมาตรฐานหน่วยงาน 2008)อย่างไรก็ตาม ใน HPP สุกไก่ measuresmay ตัวควบคุมเหล่านี้ไม่ปฏิบัติ หรือชจากคุณภาพหรือมองการค้าการตลาดการศึกษานี้ยืนยันว่า C. botulinum จะคูณใน pressuretreatedไก่สุกหากไม่มีมาตรการควบคุมที่เก็บไว้การทดสอบสารพิษไม่ดำเนินการ แต่มีโอกาสที่สารพิษจะได้รับการผลิตในตัวอย่างที่ C. ท๊อกซ์ proliferatedช่วงนี้เก็บเวลา มีนำ inoculum คล้าย หรือต่ำกว่าระดับผลิตสารพิษหลังจากรอบระยะเวลาในการเก็บน้อยกว่าสองสัปดาห์ในพื้นผิวต่าง ๆ (Notermans, 1993) อย่างไรก็ตาม Taylor et al. (1990)พบว่า สายพันธุ์ชนิด E พบพิษต่ำผลิตเมื่อเก็บไว้ที่ 8 C ดังนั้นบางทีควรไม่สามารถสันนิษฐานว่า สารพิษได้ผลิต โดยทุกสายพันธุ์ภายใต้เงื่อนไขเก็บที่ใช้ที่นี่ควรสังเกตว่า ในการศึกษานี้ เราใช้ sterilisedไก่เพื่อป้องกันการรบกวนจากจุลินทรีย์ภายนอก ถ้าจุลินทรีย์ธรรมชาติได้รับการปล่อยให้เหมือนเดิมอาจมีการแข่งขันจุลินทรีย์อยู่อาจมียับยั้ง หรือล่าช้าของการเติบโตของ C. botulinum ความเป็นไปได้ที่ภายนอกจุลินทรีย์อาจสร้างเงื่อนไขเหมาะสำหรับการเจริญเติบโตของC. botulinum ในกระเป๋าและอุปกรณ์สำหรับออกซิเจนยังควรถือว่า อย่างไรก็ตาม ในการศึกษาก่อนหน้านี้จุลินทรีย์เท่านั้นที่รอดชีวิต HPP ในไก่สุก และคูณระหว่างการเก็บรักษามีปู viridescens (ต et al. 2010)ส่งผลให้เกิดการใช้บรรจุภัณฑ์และอุปกรณ์สำหรับออกซิเจนเพิ่มขึ้นไม่มีในท๊อกซ์ C. ของระยะเวลาเก็บข้อมูลวันที่ 91 นี้แนะนำว่า บรรจุออกซิเจนที่ได้จะเป็นประโยชน์เครื่องมือลดความเสี่ยงของ botulism ไก่สุก HPPอย่างไรก็ตาม บรรจุภัณฑ์และอุปกรณ์สำหรับออกซิเจนในตัวเองไม่แนะนำเป็นการควบคุม เป็นของออกซิเจนไม่สามารถเชื่อถือ อาจมีจุดที่ใช้ในแพคเกจหรืออาหารอาจลดลงเพียงพอเพื่อสนับสนุนการเจริญเติบโตและผลิตสารพิษ(เป็ก 1997) ดังนั้น ออกซิเจนบรรจุภัณฑ์ได้ควรเฉพาะเป็นการเพิ่มเติมในการร่วมกันมาตรการควบคุมควบคุมการงอกและเจริญเติบโตของ C. ท๊อกซ์โดยการของโรงแรม 2% โซเดียมแลคเตทสังเกตนี่ concurs กับก่อนหน้านี้สิ่งพิมพ์ แม้ว่า ในพื้นผิวต่าง ๆ และ ไม่ HPPHoutsma, Heuvelink, Duferenne และ Notermans (1994) พบว่าแลคเตทยับยั้งการงอกและการเจริญเติบโตของ C. botulinum ในการแบบจำลองระบบ การศึกษาอื่น ๆ แสดงให้เห็นได้ว่าโซเดียมแลคเตทมีผลต่อ C. botulinum และผลไม่ได้แบ่งปันระดับโซเดียมไอออนหรือขอ ลดผล (Shelef, 1994)โซเดียมแลคเตทมีประโยชน์เพิ่มที่มีประสิทธิภาพกับเชื้อโรคอื่น ๆ (Shelef, 1994 Thompson et al. 2008) นอกจากนี้พบการทำงานสัมพันธ์ร่วมกับโซเดียมแลคเตทใน HPPอาหารไก่จะลดจำนวนของ L. monocytogenes (ตMackle, & Linton, 2011)รูปที่ 1 เชื้อ clostridium botulinum นับใน HPP สุกไก่ (sterilised ก่อน โดยวิธีการฉายรังสี)ระหว่างการเก็บรักษาที่อุณหภูมิ c 8---รวมจำนวนในสูญญากาศแพ็ค, – – จำนวนสปอร์ในสูญญากาศแพ็ค, -: -นับรวมชุดและอุปกรณ์สำหรับออกซิเจน –6 – สปอร์จำนวนออกซิเจน-ชุดและอุปกรณ์สำหรับ, --รวมนับในแพ็คสูญญากาศกับโรงแรม 2% โซเดียมแลคเตทเพิ่มหลัก – สปอร์จำนวนชุดดูดกับโรงแรม 2% โซเดียมแลคเตทเพิ่ม แถบข้อผิดพลาดแทนส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

เพื่อป้องกันการเจริญเติบโตของสายพันธุ์ mesophilic (โกลด์, 1999) ถ้าเรื่องนี้หรือ
การรักษาความร้อนเทียบเท่าไม่ได้ใช้แล้วปัจจัยในการควบคุมหรือการ
รวมกันของปัจจัยการควบคุมจะต้องให้แน่ใจว่ามี
ความปลอดภัยของอาหารใด ๆ ที่มีความสามารถในการสนับสนุนการเจริญเติบโตของ
ซี botulinum ความล้มเหลวในการควบคุมการเจริญเติบโตของ C. botulinum สามารถนำไปสู่
​​อาหารที่กลายเป็นพิษก่อนที่กลิ่นไม่พึงประสงค์ออกหรือการเปลี่ยนแปลงเนื้อสัมผัสจะถูก
ตรวจพบโดยผู้บริโภค (มิลเลอร์โทร & ไวทิง 1993) สำหรับ
ตัวอย่างเช่นเทย์เลอร์คานน์และเวลช์ (1990) พบว่าสารพิษที่ถูก
ผลิตในปลาก่อนที่จะถูกตัดสินว่าเป็นที่ยอมรับไม่ได้ ในฐานะที่เป็น
การรักษาความร้อนมอบให้กับไก่ในนี้ casewould ไม่ได้รับ
รุนแรงพอที่จะให้พลังที่เพียงพอของสปอร์ C. botulinum
และ HPP ไม่ยับยั้งสปอร์ weexamined ผลกระทบของบาง
มาตรการควบคุมอื่น ๆ เหล่านี้; นอกเหนือจาก 2% แลคเตทที่
ใช้บรรจุภัณฑ์ออกซิเจนดูดซึมและการใช้ป้องกัน
วัฒนธรรมที่ได้รับการแยกออกจากการปนเปื้อนตามธรรมชาติที่ปรุงสุก
ไก่ มาตรการอื่น ๆ ที่อาจจะใช้ในการควบคุม nonproteolytic
ซี botulinum รวมถึงการเก็บรักษาที่ <3 องศาเซลเซียสลดลงในค่า pH
ด้านล่าง 5.0 นอกเหนือจาก> โซเดียมคลอไรด์ 3.5% ลดลงในอัด้านล่าง
0.97 หรือการรวมกันของเหล่านี้ (สำนักงานมาตรฐานอาหาร, 2008) ได้.
ไก่อย่างไรก็ตามใน HPP สุกเหล่านี้ควบคุม measuresmay ไม่เป็น
จริงหรือเป็นที่น่าพอใจจากการที่มีคุณภาพหรือการตลาดมุมมอง.
การศึกษาครั้งนี้ยืนยันว่า C. botulinum จะคูณใน pressuretreated
ไก่ปรุงสุกหากไม่มีมาตรการควบคุมที่จะวางในตำแหน่ง.
การทดสอบสารพิษไม่ได้ดำเนินการ แต่ก็มีโอกาสที่สารพิษจะ
ได้รับการผลิตในตัวอย่างที่ C. botulinum แพร่กระจายออกไป
ในช่วงเวลาการจัดเก็บนี้ ที่คล้ายกันหรือต่ำกว่าระดับหัวเชื้อได้นำไปสู่
​​การผลิตสารพิษหลังจากระยะเวลาการจัดเก็บน้อยกว่าสองสัปดาห์ใน
พื้นผิวต่างๆ (Notermans, 1993) อย่างไรก็ตามเทย์เลอร์, et al (1990)
พบว่าสายพันธุ์ชนิด E แสดงให้เห็นว่าการผลิตสารพิษที่ดีเมื่อ
เก็บไว้ที่ 8 องศาเซลเซียสดังนั้นบางทีมันไม่ควรจะคิดว่าสารพิษที่ถูก
ผลิตโดยทุกสายพันธุ์ภายใต้เงื่อนไขการจัดเก็บข้อมูลที่ใช้ที่นี่.
มันควรจะตั้งข้อสังเกตว่าในการศึกษาเหล่านี้ที่เราใช้ ผ่านการฆ่าเชื้อ
ไก่เพื่อป้องกันการรบกวนจากภายนอก microbiota หาก
microbiota ธรรมชาติถูกทิ้งไว้เหมือนเดิมอาจมี
เชื้อจุลินทรีย์ในปัจจุบันที่อาจมีการยับยั้งหรือการแข่งขัน
ล่าช้าการเจริญเติบโตของ C. botulinum ความเป็นไปได้ว่าภายนอก
microbiota อาจจะสร้างสภาวะที่เหมาะสมสำหรับการเจริญเติบโตของ
ซี botulinum ในถุงออกซิเจนซึมเข้าไปได้ก็ควรที่จะ
พิจารณา อย่างไรก็ตามในการศึกษาก่อนหน้านี้จุลินทรีย์เท่านั้น
ที่รอดชีวิต HPP ในไก่ปรุงสุกและคูณระหว่างการเก็บรักษา
เป็น W. viridescens (แพตเตอร์สัน et al., 2010).
การใช้บรรจุภัณฑ์ที่สามารถดูดซึมออกซิเจนเพิ่มขึ้นส่งผลให้ไม่มี
ใน C. botulinum มากกว่าหลักสูตรของ ระยะเวลาการจัดเก็บ 91 วัน นี้
จะชี้ให้เห็นว่าบรรจุภัณฑ์ออกซิเจนซึมผ่านได้จะเป็นประโยชน์
เครื่องมือในการลดความเสี่ยงของโรคจากไก่ปรุงสุก HPP ได้.
อย่างไรก็ตามออกซิเจนบรรจุภัณฑ์ซึมเข้าไปในตัวเองไม่แนะนำ
เป็นมาตรการควบคุมการปรากฏตัวของออกซิเจนไม่สามารถ
เป็นที่พึ่ง . อาจจะมีจุดที่ไม่ใช้ออกซิเจนในแพคเกจหรืออาหารที่
อาจจะลดลงพอที่จะรองรับการเติบโตและการผลิตสารพิษ
(Peck, 1997) ดังนั้นบรรจุภัณฑ์ดูดซึมออกซิเจนควร
ถูกนำมาใช้เป็นเพียงมาตรการเพิ่มเติมในการร่วมกับคนอื่น ๆ
มาตรการควบคุม.
การควบคุมการงอกและการเจริญเติบโตของ C. botulinum โดย
นอกเหนือจากการให้น้ำนมโซเดียม 2% สังเกตเห็นพ้องกับที่นี่ก่อนหน้านี้
สิ่งพิมพ์แม้ว่าในพื้นผิวที่แตกต่างกันและไม่มี HPP.
Houtsma, Heuvelink, Duferenne และ Notermans (1994) พบว่า
การให้น้ำนมยับยั้งการงอกและการเจริญเติบโตของ C. botulinum ใน
แบบจำลองระบบ การศึกษาอื่น ๆ แสดงให้เห็นว่าการให้น้ำนมโซเดียมเป็น
ที่มีประสิทธิภาพต่อ C. botulinum และว่าผลกระทบที่ไม่ได้ส่วนที่
ให้อยู่ในระดับไอออนโซเดียมหรือ AW ลดผลกระทบ (Shelef, 1994).
โซเดียมน้ำนมเพิ่มความได้เปรียบว่ามันมีประสิทธิภาพต่อ
โรคอื่น ๆ (Shelef, ปี 1994. ธ อมป์สัน, et al, 2008) นอกจากนี้
HPP พบว่าทำงานร่วมกับโซเดียมแลคเตทใน
ไก่ปรุงสุกเพื่อลดตัวเลขของ L. monocytogenes (แพตเตอร์สัน
Mackle และลินตัน 2011).
รูป 1. นับเชื้อ Clostridium botulinum ในไก่ปรุงสุก HPP (ก่อนการฆ่าเชื้อด้วยการฉายรังสี)
ในระหว่างการเก็บรักษาที่ 8 องศาเซลเซียส --- นับรวมในแพ็คสูญญากาศ - - นับสปอร์ใน
แพ็คสูญญากาศ -: - นับรวมในแพ็คออกซิเจนซึมผ่าน -6- นับสปอร์ในออกซิเจน
ชุดดูดซึม -A- นับรวมในแพ็คสูญญากาศที่มี 2 % โซเดียมน้ำนมเพิ่ม
-> - นับสปอร์ในแพ็คสูญญากาศกับ 2% โซเดียมน้ำนมเพิ่ม แถบข้อผิดพลาด
แทน? ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน.