Plant materialHands of mature green

Plant material
Hands of mature green banana (Musa spp., AAA group cultivar
‘Brazil’) were obtained from a local farm in Guangzhou. Hands were
cut into fingers, and dipped for 3 min in 0.1% Sportak® (a.i. prochloraz,
Bayer) fungicide solution to control postharvest diseases, and
then allowed to air-dry. Fruit were selected for freedom from visual
defects and uniformity of shape, colour and size.
0925-5214/$ – see front matter © 2009 Elsevier B.V. All rights reserved.
doi:10.1016/j.postharvbio.2009.11.006
H. Zhang et al. / Postharvest Biology and Technology 55 (2010) 154–159 155
2.2. Treatments
2.2.1. Preliminary experiments
Preliminary small-scale experiments were conducted to determine
relative effects of various treatment durations and temperatures
with cold air or ice-water on the green life of harvested
banana fruit. Thirty fruit were placed into a low temperaturecontrolled
cabinet (−5 ◦C; 125 L; fan forced air circulation) for 1.5,
3 or 4.5 h. For ice-water treatment, 30 banana fruit were dipped
into 50 L of ice-water (ratio of ice to water = 6:4) for 0.5, 1 or 2 h.
After treatments with cold air or ice-water, fruit were removed
from the temperature-controlled cabinet or ice-water, allowed to
stabilize for 3 h at room temperature (∼25 ◦C), and packed into
0.03 mm thick low density polyethylene bags (LDPE; 3 fruit per
bag), and then stored at 20 ◦C. Fruit without cold shock treatment
were controls. During storage, green life was evaluated according
to changes of firmness and colour. Results (data not shown) showed
that immersion in ice-water for 1 h gave greatest extension in green
life of banana fruit. Thus, this treatment was used in subsequent
experiments.
2.2.2. Effects of cold shock treatments on biochemical and
physiological changes
In this experiment, banana fruit were immersed in ice-water for
1 h as above. Fruit interior temperatures were logged by a computer
and thermocouples system. After cold shock treatment, fruit were
allowed to equilibrate for 3 h at room temperature, and then packed
into 0.03 mm thick LDPE bags (3 fruit per bag). Thereafter, fruit
were held at 20 ◦C and sampled for biochemical and physiological
analyses at 5, 10, 15, 20 and 25 d of storage.
2.2.3. Cold shock and ethylene treatments
Cold shock treatment was conducted as above. After this treatment,
banana fruit were treated with 100 L L−1 ethylene in sealed
jars for 24 h at 24 ◦C. Thereafter, fruit were held at 20 ◦C and 90% relative
humidity (RH) to evaluate shelf-life and analyze physiological
and biochemical changes at 3, 5 and 7 d of storage.
2.3. Ethylene production and respiration rate
Three fruit were sealed inside a 4.2 L glass jar for 2 h at 20 ◦C.
One milliliter aliquots of headspace gas were withdrawn from
the jars and injected into a gas chromatograph (GC-9A; Shimadzu,
Kyoto, Japan). Carbon dioxide (CO2) concentrations were
determined using a thermal conductivity detector (TCD) and a
Poropak N column (Shimadzu). Ethylene concentrations were measured
using a flame ionisation detector (FID) and an HP-PLOT Q
capillary column (Agilent Technologies, USA). Rates of ethylene
production and respiration were expressed on a fresh weight (FW)
basis.
2.4. Fruit firmness
Peel tissues from one side of banana fingers were removed
and pulp firmness measurements taken at three different points
using a penetrometer (Model GY-1, Hangzhou Scientific Instruments,
Hangzhou, China) fitted with a 3.5 mm diameter flat probe.
Penetration force was recorded as N for the flat probe area.
2.5. Chlorophyll content
Peel discs were removed with a cork borer (10 mm diameter)
from one side of banana fingers. Twenty discs were ground with
liquid nitrogen, extracted for 30 min with 20 mL of 80% acetone
(v/v) in the dark, and then centrifuged at 3000 × g for 10 min.
The supernatant was used to determine the chlorophyll content
spectrophotometrically according to the method of Lichtenthaler
(1987).
2.6. Contents of total soluble sugar, starch and pectins
Starch content in the pulp was measured according to the
method described by Azelmat et al. (2006), and total soluble
sugar was determined using the anthrone method (Yemm and
Willis, 1954). Water soluble pectin (WSP) and acid soluble pectin
(ASP) were extracted according to the method of Cheng et al.
(2008). Uronic acid concentrations in WSP and ASP fractions were
measured by the m-hydroxydiphenyl method (Blumenkrantz
and Asboe-Hansen, 1973) using galacturonic acid (GA)
standards.
2.7. Extraction and assay of cell wall degrading enzymes
Five grams of pulp from banana fruit was homogenized with
20 mL of 50 mM sodium acetate buffer (pH 4.5) containing 7.5%
(w/v) NaCl and 0.5 g of polyvinylpyrrolidone (insoluble) at 4 ◦C.
The homogenate was centrifuged at 10,000 × g for 20 min and the
supernatant used for assaying the activities of polygalacturonase
(PG) and CMCase (cellulase).
To measure PG activity, the supernatant was dialyzed overnight
in 50 mM sodium acetate buffer (pH 4.5). The reaction mixture

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุโรงงานมือของผู้ใหญ่สีเขียวกล้วย (Musa โอ cultivar กลุ่ม AAA'บราซิล') ได้รับมาจากฟาร์มท้องถิ่นในการ มือได้ตัดเป็นนิ้วมือ และจุ่มลงใน 3 นาทีใน 0.1% Sportak ® (a.i. prochlorazไบเออร์) แก้ปัญหาเชื้อราเพื่อควบคุมโรคหลังการเก็บเกี่ยว และแล้ว อนุญาตให้ air-dry ผลไม้เลือกเสรีภาพจากภาพข้อบกพร่องและความรื่นรมย์ของรูปร่าง สี และขนาด0925-5214 / $ – ดูหน้าเรื่อง © 2009 Elsevier b.v สงวนลิขสิทธิ์ทั้งหมดdoi:10.1016/j.postharvbio.2009.11.006H. Zhang et al. / หลังการเก็บเกี่ยววิชาชีววิทยาและเทคโนโลยี 55 (2010) 154-159 1552.2 การรักษา2.2.1. เบื้องต้นทดลองได้ดำเนินการทดลองเบื้องต้นระบุเพื่อกำหนดสัมพันธ์ผลกระทบของการรักษาระยะเวลาและอุณหภูมิต่าง ๆมีอากาศเย็นหรือน้ำแข็งในชีวิตสีเขียวเก็บเกี่ยวกล้วยผลไม้ ผลไม้สามสิบถูกวางลงใน temperaturecontrolled ต่ำตู้ (−5 ◦C; 125 L ระบายอากาศพัดลมบังคับ) 1.53 หรือ 4.5 h สำหรับน้ำแข็ง ผลไม้กล้วย 30 ได้สอดเป็นน้ำแข็งน้ำ 50 ลิตร (อัตราส่วนของน้ำแข็งน้ำ = 6:4) 0.5, 1 หรือ 2 hหลังจากรักษากับอากาศเย็นหรือน้ำแข็ง ผลไม้ถูกเอาออกจากน้ำแข็งหรือตู้ควบคุมอุณหภูมิ สามารถมุ่งสำหรับ h 3 ที่อุณหภูมิห้อง (∼25 ◦C), และบรรจุลงใน0.03 มม.ความหนาแน่นต่ำหนาถุงพลาสติก (LDPE ผลไม้ 3 ต่อกระเป๋า), และจากนั้น เก็บที่ 20 ◦C ผลไม้ไม่ช็อคเย็นรักษาควบคุมได้ ระหว่างการเก็บรักษา ชีวิตสีเขียวที่ถูกประเมินตามการเปลี่ยนแปลงของสีและความสม่ำเสมอ แสดงให้เห็นว่าผลลัพธ์ (ข้อมูลไม่แสดง)ที่แช่ในน้ำแข็งสำหรับ 1 h ให้ขยายมากที่สุดเป็นสีเขียวชีวิตของผลไม้กล้วย ดังนั้น นี้ถูกใช้ในเวลาต่อมาการทดลอง2.2.2. ผลของการรักษาช็อคเย็นชีวเคมี และการเปลี่ยนแปลงสรีรวิทยาในการทดลองนี้ กล้วยผลไม้แช่อยู่ในน้ำแข็งสำหรับh 1 ด้านบน อุณหภูมิภายในของผลไม้เข้าสู่ระบบคอมพิวเตอร์และระบบเทอร์โมคัปเปิล หลังจากรักษาช็อคเย็น ผลไม้ได้อนุญาตการ equilibrate สำหรับ h 3 ที่อุณหภูมิห้อง และบรรจุแล้วเป็น 0.03 มม. หนา LDPE ถุง (3 ผลไม้ต่อถุง) หลัง ผลไม้ณ 20 ◦C และความชีวเคมี และสรีรวิทยาวิเคราะห์ที่ 5, 10, 15, 20 และ 25 d เก็บ2.2.3 การเย็นรักษาช็อคและเอทิลีนรักษาช็อคน้ำเย็นได้ดำเนินการดังกล่าว หลังจากการรักษานี้ผลไม้กล้วยได้รับเอทิลีน L−1 100 L ในปิดผนึกขวดสำหรับ 24 ชมที่ 24 ◦C หลัง ผลไม้ถูกจัดขึ้นที่ 20 ◦C และ 90% ญาติความชื้น (RH) การประเมินอายุการเก็บ และวิเคราะห์สรีรวิทยาและการเปลี่ยนแปลงชีวเคมีใน d 3, 5 และ 7 ของการจัดเก็บ2.3. อัตราการหายใจและการผลิตเอทิลีนผลไม้สามถูกปิดผนึกอยู่ภายในขวดแก้ว 4.2 L สำหรับ h 2 ที่ 20 ◦CAliquots milliliter หนึ่งของ headspace ก๊าซถูกถอนจากขวด และฉีดเป็น chromatograph ก๊าซ (GC-9A Shimadzuเกียวโต ญี่ปุ่น) มีความเข้มข้นของก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์ (CO2)กำหนดโดยใช้เครื่องตรวจจับการนำความร้อน (TCD) และการPoropak N คอลัมน์ (Shimadzu) มีวัดความเข้มข้นของเอทิลีนใช้ตรวจจับ ionisation เปลวไฟ (FID) และ Q มีพล็อต HPคอลัมน์เส้นเลือดฝอย (Agilent เทคโนโลยี สหรัฐอเมริกา) ราคาของเอทิลีนผลิตและการหายใจถูกแสดงในน้ำหนักสด (FW)พื้นฐาน2.4. ผลไม้ไอซ์เนื้อเยื่อเปลือกจากด้านหนึ่งของกล้วยนิ้วมือออกและเยื่อไอซ์วัดที่สามใช้ penetrometer (รุ่น GY-1 หางเครื่องมือวิทยาศาสตร์หางโจว จีน) อาบเป็น 3.5 มม.เส้นผ่าศูนย์กลางแบนโพรบเจาะกองทัพถูกบันทึกเป็น N การตั้งโพรบแบน2.5. เนื้อหาคลอโรฟิลล์เปลือกดิสก์ถูกเอาออก ด้วย borer คอร์ก (เส้นผ่าศูนย์กลาง 10 มม.)จากด้านหนึ่งของนิ้วมือกล้วย ดิสก์ที่ยี่สิบได้พื้นดินด้วยไนโตรเจนเหลว สกัดใน 30 นาทีมีปริมาณ 20 mL ของ 80% อะซิโตน(v/v) ในมืด และ centrifuged แล้ว ที่ 3000 × g สำหรับ 10 นาทีSupernatant ถูกใช้เพื่อกำหนดเนื้อหาคลอโรฟิลล์spectrophotometrically ตามวิธีของ Lichtenthaler(1987)2.6. เนื้อหารวมละลายน้ำตาล แป้ง และ pectinsมีวัดเนื้อหาแป้งในเนื้อเยื่อตามวิธีที่อธิบายไว้ โดย Azelmat et al. (2006), และทั้งหมดที่ละลายน้ำน้ำตาลถูกกำหนดโดยใช้วิธี anthrone (Yemm และWillis, 1954) น้ำละลายเพกทิน (WSP) และเพกทินละลายน้ำกรด(ASP) ได้แยกตามวิธีการของ Cheng et al(2008) . Uronic มีความเข้มข้นกรดในส่วน WSP และ ASPวัด โดยวิธี m hydroxydiphenyl (Blumenkrantzและ Asboe- แฮนเซ่น 1973) โดยใช้กรด galacturonic (GA)มาตรฐาน2.7 การสกัดและวิเคราะห์ของผนังเซลล์ลดเอนไซม์5 กรัมของเยื่อกระดาษจากกล้วยผลไม้ถูก homogenized เป็นกลุ่มด้วยปริมาณ 20 mL 50 mM โซเดียม acetate บัฟเฟอร์ (pH 4.5) มี 7.5%(w/v) NaCl และ 0.5 g ของ polyvinylpyrrolidone (ละลาย) ที่ 4 ◦CHomogenate ถูก centrifuged ที่ 10000 × g สำหรับ 20 นาทีและใช้สำหรับ assaying กิจกรรมของ polygalacturonase supernatant(PG) และ CMCase (cellulase)การวัดกิจกรรม PG, supernatant ถูก dialyzed ค้างคืนใน 50 mM โซเดียม acetate บัฟเฟอร์ (pH 4.5) ส่วนผสมของปฏิกิริยา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุจากพืชมือของกล้วยสีเขียวผู้ใหญ่ (Musa spp. พันธุ์กลุ่ม AAA 'บราซิล') ที่ได้รับจากฟาร์มท้องถิ่นในกว่างโจว มือที่ถูกตัดเป็นนิ้วมือและจุ่มลงเป็นเวลา 3 นาทีใน 0.1% Sportak® (ไอ prochloraz, ไบเออร์) การแก้ปัญหาสารเคมีในการควบคุมโรคหลังการเก็บเกี่ยวและได้รับอนุญาตให้แห้ง ผลไม้ที่ได้รับการแต่งตั้งให้เป็นอิสระจากการมองเห็นข้อบกพร่องและความสม่ำเสมอของสีรูปร่างและขนาด. 0925-5214 / $ - เห็นว่าด้านหน้า© 2009 Elsevier BV สงวนลิขสิทธิ์. ดอย: 10.1016 / j.postharvbio.2009.11.006 เอช Zhang et al, / หลังการเก็บเกี่ยวชีววิทยาและเทคโนโลยี 55 (2010) 154-159 155 2.2 การรักษา2.2.1 การทดลองเบื้องต้นเบื้องต้นการทดลองขนาดเล็กได้ดำเนินการเพื่อตรวจสอบผลกระทบความสัมพันธ์ของระยะเวลาการรักษาที่หลากหลายและอุณหภูมิที่มีอากาศเย็นหรือน้ำแข็งน้ำในชีวิตสีเขียวของการเก็บเกี่ยวผลไม้กล้วย สามสิบผลไม้ที่ถูกวางไว้เป็น temperaturecontrolled ต่ำคณะรัฐมนตรี(-5 ◦C; L 125; แฟนบังคับให้การไหลเวียนของอากาศ) 1.5, 3 หรือ 4.5 ชั่วโมง สำหรับการรักษาน้ำแข็งน้ำ 30 ผลไม้กล้วยถูกจุ่มลงใน50 ลิตรน้ำแข็งน้ำ (อัตราส่วนของน้ำแข็งลงไปในน้ำ = 6: 4). 0.5, 1 หรือ 2 ชั่วโมงหลังการรักษาที่มีอากาศเย็นหรือน้ำแข็งน้ำผลไม้ที่ถูกตัดออกจากตู้ควบคุมอุณหภูมิหรือน้ำแข็งน้ำที่ได้รับอนุญาตให้มีเสถียรภาพเป็นเวลา 3 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง (~25 ◦C) และบรรจุลง 0.03 มมความหนาแน่นต่ำถุงพลาสติกชนิดหนา (LDPE 3 ผลไม้ต่อถุง) และเก็บไว้แล้วที่ 20 ◦C โดยไม่ต้องรักษาผลไม้ช็อตเย็นมีการควบคุม ระหว่างการเก็บรักษาชีวิตสีเขียวที่ถูกประเมินตามการเปลี่ยนแปลงของความแน่นและสี ผล (ไม่ได้แสดงข้อมูล) พบว่าการแช่ในน้ำแข็งน้ำเป็นเวลา1 ชั่วโมงให้ขยายสีเขียวที่ยิ่งใหญ่ที่สุดในชีวิตของผลไม้กล้วย ดังนั้นการรักษานี้ถูกนำมาใช้ในภายหลังการทดลอง. 2.2.2 ผลของการรักษาช็อกเย็นบนทางชีวเคมีและการเปลี่ยนแปลงทางสรีรวิทยาในการทดลองนี้ผลไม้กล้วยถูกแช่อยู่ในน้ำแข็งน้ำ1 ชั่วโมงข้างต้น อุณหภูมิภายในผลไม้ที่ถูกบันทึกไว้โดยคอมพิวเตอร์ของระบบและเทอร์โม หลังจากการรักษาช็อกเย็นผลไม้ที่ได้รับการอนุญาตให้สมดุลเวลา 3 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องและแล้วบรรจุลงในถุง0.03 มิลลิเมตรหนา LDPE (3 ผลไม้ต่อถุง) หลังจากนั้นผลไม้ที่ถูกจัดขึ้นที่ 20 ◦Cและตัวอย่างสำหรับทางชีวเคมีและสรีรวิทยาการวิเคราะห์ที่5, 10, 15, 20 และ 25 วันของการจัดเก็บ. 2.2.3 ช็อตเย็นและการรักษาเอทิลีนการรักษาช็อกเย็นได้ดำเนินการดังกล่าวข้างต้น หลังจากการรักษานี้ผลไม้กล้วยได้รับการรักษาด้วย 100 LL-1 เอทิลีนในการปิดผนึกขวดเป็นเวลา24 ชั่วโมงวันที่ 24 ◦C หลังจากนั้นผลไม้ที่ถูกจัดขึ้นที่ 20 ◦Cและ 90% เมื่อเทียบความชื้น(RH) เพื่อประเมินอายุการเก็บรักษาและการวิเคราะห์ทางสรีรวิทยาการเปลี่ยนแปลงและชีวเคมีที่3, 5 และ 7 วันของการจัดเก็บ. 2.3 การผลิตเอทิลีนและอัตราการหายใจสามผลไม้ที่ถูกปิดผนึกอยู่ภายในขวดแก้ว 4.2 ลิตรเป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่ 20 ◦C. หนึ่ง aliquots มิลลิลิตรของก๊าซ headspace ถูกถอนออกจากขวดและฉีดเข้าไปในchromatograph ก๊าซ (GC-9A; Shimadzu, เกียวโตประเทศญี่ปุ่น ) ก๊าซคาร์บอนไดออกไซด์ (CO2) ระดับความเข้มข้นที่ได้รับการพิจารณาโดยใช้เครื่องตรวจจับการนำความร้อน(TCD) และคอลัมน์Poropak N (Shimadzu) ความเข้มข้นของเอทิลีนถูกวัดโดยใช้เครื่องตรวจจับเปลวไฟ Ionisation (FID) และพล็อต HP-Q คอลัมน์ฝอย (Agilent Technologies, สหรัฐอเมริกา) เอทิลีนอัตราการผลิตและการหายใจที่ถูกแสดงบนน้ำหนักสด (FW) พื้นฐาน. 2.4 ความแน่นเนื้อเนื้อเยื่อลอกจากด้านหนึ่งของนิ้วมือกล้วยถูกถอดออกและการวัดความแน่นเนื้อเยื่อกระดาษถ่ายที่สามจุดที่แตกต่างกันโดยใช้Penetrometer (ที่รุ่น GY-1, หางโจวเครื่องมือวิทยาศาสตร์, หางโจว, จีน) พอดีกับที่ 3.5 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลางสอบสวนแบน. แรงเจาะเป็น บันทึกเป็นไม่มีสำหรับพื้นที่สอบสวนแบน. 2.5 คลอโรฟิลเนื้อหาแผ่นเปลือกที่ถูกถอดออกด้วยหนอนเจาะไม้ก๊อก (10 มิลลิเมตร) จากด้านหนึ่งของนิ้วมือกล้วย ยี่สิบแผ่นมาบดด้วยไนโตรเจนเหลวสกัดเป็นเวลา 30 นาทีกับ 20 มลของอะซีโตน 80% (v / v) ในที่มืดและปั่นแล้วที่ 3000 ×กรัมเป็นเวลา 10 นาที. สารละลายถูกใช้ในการตรวจสอบเนื้อหาของคลอโรฟิลspectrophotometrically ตาม วิธีการของ Lichtenthaler (1987). 2.6 เนื้อหาของน้ำตาลที่ละลายได้ทั้งหมดแป้งและ pectins เนื้อหาแป้งในเยื่อวัดตามวิธีการอธิบายโดย Azelmat et al, (2006) และที่ละลายได้ทั้งหมดน้ำตาลถูกกำหนดโดยใช้วิธีanthrone (Yemm และวิลลิส, 1954) เพคตินที่ละลายในน้ำ (WSP) และกรดเพคตินที่ละลายน้ำได้(ASP) ถูกสกัดตามวิธีการของเฉิงและอัล. (2008) ความเข้มข้นของกรด Uronic ใน WSP และเศษส่วน ASP ถูกวัดโดยวิธีมhydroxydiphenyl (Blumenkrantz และ Asboe-Hansen, 1973) โดยใช้กรดกาแลค (GA) มาตรฐาน. 2.7 การสกัดและการทดสอบของผนังเซลล์เอนไซม์ย่อยสลายห้ากรัมของเยื่อกระดาษจากผลไม้กล้วยทำให้เป็นเนื้อเดียวกันกับ20 มล 50 มิลลิโซเดียมบัฟเฟอร์อะซิเตท (pH 4.5) ที่มี 7.5% (w / v) โซเดียมคลอไรด์และ 0.5 กรัม polyvinylpyrrolidone (ที่ไม่ละลายน้ำ) วันที่ 4 ◦ ซีhomogenate ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 10,000 ×กรัมเป็นเวลา 20 นาทีและสารละลายที่ใช้สำหรับassaying กิจกรรมของ polygalacturonase (PG) และ CMCase (เซลลูเลส). การวัดกิจกรรม PG, ใสถูก dialyzed ค้างคืนใน50 มิลลิโซเดียมอะซิเตตบัฟเฟอร์ (pH 4.5) ผสมปฏิกิริยา