2. Materials andmethods2.1. Materia

2. Materials andmethods
2.1. Materials
Fresh whole cucumbers, obtained directly from organic farming at commercial maturity, were transported to the laboratory 24 h within harvesting and coating experiments were carried out on the same day. Cucumbers were selected for uniform size and color, and without mechanical damage. Then, the fruitwaswashed in sodiumhypochlorite solution (1% v/v) and left for 2 h in a safe cabinet to dry. A total of 500 fruit was used for conducting all experiments.
Z. multiflora essential oil (100% pure) containing thymol (51.2%), pcymene (13.8%), carvacrol (11.26%), linalool (6.83%) and γ-terpinene (4.46%) together with other minor compounds, was obtained from Magnolia Co, Iran and its quality parameterswere described in a technicalreport issued by the supplier.
All the standards and chemicals were supplied by Sigma-Aldrich Co. (St. Louis,MO, USA). These included chitosan (CS) ofmediummolecular weight (deacetylation degree of 75–85%, CAS 9012-76-4), tween 80 (CAS 9005-65-6), TPP (CAS 7758-29-4; ≥98% purity), acetic acid glacial (CAS 64-19-7; ≥99% purity) and sodium hydroxide (CAS 1310-73-2;
≥97% purity).
2.2. Preparation of nanochitosan-based coating solution
ZEO-loaded CSNPs and CSNPs were prepared by a method comprising oil-in-water emulsion and ionic gelation, according to author's previous report (Mohammadi et al., 2015b). A weight ratio of CS to ZEO of 1:0.25 was used in the present study.
2.3. Cucumber coatings
Two coating solutions (T1 & T2) were prepared by dispersing 0.15% (w/v) of CSNPs or ZEO@CSNPs in distilled water to reach a final concentration of 1500 ppm and kept at 4 °C.
Selected cucumberswere dipped in one of two coating solutions (T1 or T2) for 2 min. A total of 250 cucumbers were coated and dried on a nylon filter to drain the excess liquid. Cucumbers immersed in distilled water for 2 min served as controls. Next, the fruits were placed into polypropylene trays (∼5 cucumbers per tray) and stored at optimum temperature of 10 ± 1 °C with 90–95% RH (Gross, Wang, & Saltveit, 2004; Martin-Belloso & Fortuny, 2011) for 21 days. Samples were withdrawn every 3 days for physicochemical and microbiological evaluation.
2.4. Physicochemical analysis
2.4.1. Respiration rate
In order to measure the respiration rate, a closed system was used (Eshghi et al., 2014). At each sample time during storage, three replicates of five fruit per treatment were placed in an airtight chest, and a
CO2 sensor (Testo AG-435-2, Germany) was used to monitor CO2 concentration. The sensor was programmed to collect CO2 concentration at 1-min intervals for 60 min. Respiration rate was measured from the regression slope of CO2 concentration versus time data and expressed as mL CO2/kg/h.
2.4.2. Weight loss
Theweight loss of fresh cucumbers in each treatment during storage was measured by monitoring the weight of the 40 fruit at different intervals. The weight loss was calculated as a percentage of the initial weight (Meng, Li, Liu, & Tian, 2008).
2.4.3. Firmness
Firmness texturewas eval control and coating sampleswere puncturedwith a 7mmdiameter ball probe at a speed of 12 mm/s at their geometric center, and the results were expressed as N/mm (Chien, Sheu, & Lin, 2007).
2.4.4. Fruit skin color
The lightness (L*), redness (a*) and yellowness (b*) color system was used to evaluate the skin color by a colorimeter (Minolta CR 300 Series, Minolta Camera Co., Ltd., Osaka, Japan). The measurements were taken on white standard backgrounds. All measurements were performed in triplicate. Total color difference (ΔE) was calculated using the following equation:
ΔE ¼ ðL−L0Þ2 þ að −a0Þ2 þ bð −b0Þ2 h i1=2 ð1Þ
where L⁎, a⁎ and b⁎ are the color parameter values of the samples and L0 *, a0 * and b0 * are the color parameter values of the sample (Maftoonazad and Ramaswamy, 2005).
2.4.5. Fungal decay
Fungal decay was performed according to the method of Feng and Zheng (2007). Cucumbers were examined for the presence of visible fungal infection, and the results were expressed as the percentage of fruit infected at different times (Feng & Zheng, 2007).
2.5. Microbiological analysis
The microbiological characteristics of a 10 g sample were obtained following homogenization in 90 mL 0.1% peptone water. Other decimal dilutions were prepared from a 10−1 dilution and each was spread-plated (0.1 mL) as follows: plate count agar (PCA) for total aerobic bacteria (incubated at 35 °C for 48 h); and sabouraud dextrose agar (SDA) with chloramphenicol for yeasts and molds (incubated at 25 °C for 5 days). Quadruplicate counts were averaged for graphic
presentation.

2. Materials andmethods
2.1. Materials
Fresh whole cucumbers, obtained directly from organic farming at commercial maturity, were transported to the laboratory 24 h within harvesting and coating experiments were carried out on the same day. Cucumbers were selected for uniform size and color, and without mechanical damage. Then, the fruitwaswashed in sodiumhypochlorite solution (1% v/v) and left for 2 h in a safe cabinet to dry. A total of 500 fruit was used for conducting all experiments.
Z. multiflora essential oil (100% pure) containing thymol (51.2%), pcymene (13.8%), carvacrol (11.26%), linalool (6.83%) and γ-terpinene (4.46%) together with other minor compounds, was obtained from Magnolia Co, Iran and its quality parameterswere described in a technicalreport issued by the supplier.
 All the standards and chemicals were supplied by Sigma-Aldrich Co. (St. Louis,MO, USA). These included chitosan (CS) ofmediummolecular weight (deacetylation degree of 75–85%, CAS 9012-76-4), tween 80 (CAS 9005-65-6), TPP (CAS 7758-29-4; ≥98% purity), acetic acid glacial (CAS 64-19-7; ≥99% purity) and sodium hydroxide (CAS 1310-73-2;
≥97% purity).
2.2. Preparation of nanochitosan-based coating solution
ZEO-loaded CSNPs and CSNPs were prepared by a method comprising oil-in-water emulsion and ionic gelation, according to author's previous report (Mohammadi et al., 2015b). A weight ratio of CS to ZEO of 1:0.25 was used in the present study.
2.3. Cucumber coatings
Two coating solutions (T1 & T2) were prepared by dispersing 0.15% (w/v) of CSNPs or ZEO@CSNPs in distilled water to reach a final concentration of 1500 ppm and kept at 4 °C.
 Selected cucumberswere dipped in one of two coating solutions (T1 or T2) for 2 min. A total of 250 cucumbers were coated and dried on a nylon filter to drain the excess liquid. Cucumbers immersed in distilled water for 2 min served as controls. Next, the fruits were placed into polypropylene trays (∼5 cucumbers per tray) and stored at optimum temperature of 10 ± 1 °C with 90–95% RH (Gross, Wang, & Saltveit, 2004; Martin-Belloso & Fortuny, 2011) for 21 days. Samples were withdrawn every 3 days for physicochemical and microbiological evaluation.
2.4. Physicochemical analysis
2.4.1. Respiration rate
In order to measure the respiration rate, a closed system was used (Eshghi et al., 2014). At each sample time during storage, three replicates of five fruit per treatment were placed in an airtight chest, and a
CO2 sensor (Testo AG-435-2, Germany) was used to monitor CO2 concentration. The sensor was programmed to collect CO2 concentration at 1-min intervals for 60 min. Respiration rate was measured from the regression slope of CO2 concentration versus time data and expressed as mL CO2/kg/h.
2.4.2. Weight loss
Theweight loss of fresh cucumbers in each treatment during storage was measured by monitoring the weight of the 40 fruit at different intervals. The weight loss was calculated as a percentage of the initial weight (Meng, Li, Liu, & Tian, 2008).
2.4.3. Firmness
Firmness texturewas eval control and coating sampleswere puncturedwith a 7mmdiameter ball probe at a speed of 12 mm/s at their geometric center, and the results were expressed as N/mm (Chien, Sheu, & Lin, 2007).
2.4.4. Fruit skin color
The lightness (L*), redness (a*) and yellowness (b*) color system was used to evaluate the skin color by a colorimeter (Minolta CR 300 Series, Minolta Camera Co., Ltd., Osaka, Japan). The measurements were taken on white standard backgrounds. All measurements were performed in triplicate. Total color difference (ΔE) was calculated using the following equation:
ΔE ¼ ðL−L0Þ2 þ að −a0Þ2 þ bð −b0Þ2 h i1=2 ð1Þ
where L⁎, a⁎ and b⁎ are the color parameter values of the samples and L0 *, a0 * and b0 * are the color parameter values of the sample (Maftoonazad and Ramaswamy, 2005).
2.4.5. Fungal decay
Fungal decay was performed according to the method of Feng and Zheng (2007). Cucumbers were examined for the presence of visible fungal infection, and the results were expressed as the percentage of fruit infected at different times (Feng & Zheng, 2007).
2.5. Microbiological analysis
The microbiological characteristics of a 10 g sample were obtained following homogenization in 90 mL 0.1% peptone water. Other decimal dilutions were prepared from a 10−1 dilution and each was spread-plated (0.1 mL) as follows: plate count agar (PCA) for total aerobic bacteria (incubated at 35 °C for 48 h); and sabouraud dextrose agar (SDA) with chloramphenicol for yeasts and molds (incubated at 25 °C for 5 days). Quadruplicate counts were averaged for graphic
presentation.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุ andmethods2.1. วัสดุแตงกวาทั้งสด ได้โดยตรงจากเกษตรอินทรีย์เมื่อครบกำหนดทางการค้า ถูกส่งไปห้องปฏิบัติการตลอด 24 ชั่วโมงในการเก็บเกี่ยว และเคลือบทดลองดำเนินการในวันเดียว แตงกวาได้เลือกขนาดและสี และไม่ มีความเสียหายทางกล แล้ว fruitwaswashed ในโซลูชัน sodiumhypochlorite (1% v/v) และซ้ายสำหรับ h 2 ในตู้เซฟให้แห้ง ทั้งหมดผลไม้ 500 ถูกใช้สำหรับการดำเนินการทดลองทั้งหมดZ. multiflora น้ำมัน (แท้ 100%) ที่ประกอบด้วย thymol (51.2%), pcymene (13.8%), carvacrol (ค้ำ 11.26%), linalool (6.83%) และγ-terpinene (4.46%) ร่วมกับสารอื่น ๆ เล็กน้อย ได้รับจาก บริษัทแมกโนเลีย อิหร่าน และของคุณภาพ parameterswere ที่อธิบายไว้ใน technicalreport ที่ออก โดยผู้ผลิต ได้มาตรฐานและสารเคมีได้มาจาก บริษัท Sigma Aldrich (เซนต์หลุยส์ MO สหรัฐอเมริกา) เหล่านี้รวมน้ำหนัก ofmediummolecular ไคโตซาน (CS) (deacetylation องศา 75 – 85%, CAS 9012-76-4), 80 (CAS 9005-65-6), TPP (CAS 7758-29-4; ≥98% ความบริสุทธิ์), กรดอะซิติกน้ำแข็ง (CAS 64-19-7; ≥99% บริสุทธิ์) และโซเดียมไฮดรอกไซด์ (CAS 1310-73-2 โลก≥97% ความบริสุทธิ์)2.2. เตรียมของใช้ nanochitosan เคลือบโหลด ZEO CSNPs และ CSNPs ถูกจัดทำ โดยวิธีอิมัลชันน้ำในน้ำมันห้องและไอออน gelation ตามรายงานก่อนหน้านี้ของผู้เขียน (มูฮัมมาดี et al. 2015b) อัตราส่วนน้ำหนักของ CS ไปเจอร์ของ 1:0.25 มาใช้ในการศึกษา2.3. แตงกวาเคลือบโซลูชั่นเคลือบสอง (T1 และ T2) โดยสลาย 0.15% (w/v) CSNPs หรือ ZEO@CSNPs ในน้ำกลั่นถึงเข้มข้นสุดท้าย 1500 ppm และเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส เลือก cucumberswere จุ่มลงในหนึ่งสองเคลือบโซลูชั่น (T1 หรือ T2) 2 นาที ทั้งหมด 250 แตงกวาถูกเคลือบ และแห้งตัวกรองไนล่อนเพื่อระบายของเหลวส่วนเกิน แตงกวาที่แช่อยู่ในน้ำกลั่นสำหรับ 2 นาทีทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม ถัดไป ผลไม้ถูกวางลงในถาดโพรพิลีน (∼5 แตงกวาต่อถาด) และเก็บไว้ที่อุณหภูมิที่เหมาะสมของ 10 ± 1 ° C 90 – 95% RH (รวม วัง & Saltveit, 2004 Martin-Belloso & Fortuny, 2011) 21 วัน ตัวอย่างที่ถูกถอนทุก 3 วันสำหรับการประเมินผลทางเคมีกายภาพ และจุลินทรีย์2.4. ปริมาณวิเคราะห์2.4.1 การหายใจอัตราเพื่อวัดอัตราการหายใจ ระบบปิดรับใช้ (Eshghi et al. 2014) เวลาแต่ละตัวอย่างระหว่างการเก็บรักษา เหมือนกับสามห้าผลไม้ต่อการรักษาไว้ในหน้าอกสุญญากาศ และเซนเซอร์ CO2 (Testo AG-435-2 เยอรมนี) ถูกใช้เพื่อตรวจสอบความเข้มข้นของ CO2 เซนเซอร์โปรแกรมเก็บ CO2 ความเข้มข้นในช่วงเวลา 1 นาที 60 นาทีอัตราการหายใจโดยวัดจากความลาดเอียงถดถอยของความเข้มข้นของ CO2 เมื่อเทียบกับข้อมูลเวลา และแสดงเป็น mL CO2/กิโลกรัม ต่อชั่วโมง2.4.2. ลดน้ำหนักสูญเสีย Theweight แตงกวาสดในแต่ละการรักษาระหว่างการเก็บรักษาโดยวัดจากการตรวจสอบน้ำหนักของผลไม้ 40 ในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน มีคำนวณการสูญเสียน้ำหนักเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักเริ่มต้น (ง หลี่ หลิว และ เทียน 2008)2.4.3. แน่นควบคุม eval texturewas แน่นและเคลือบ sampleswere puncturedwith 7mmdiameter ลูกโพรบที่ความเร็ว 12 mm/s ที่จุดศูนย์กลางของพวกเขา และผลลัพธ์ถูกแสดงเป็น N/mm (เจียน Sheu, & Lin, 2007)2.4.4. ผลไม้ผิวสีความสว่าง (L *), แดง (เป็น *) และใช้ yellowness (b *) ระบบสีเพื่อประเมินสีผิว โดยเครื่องทดสอบกรดด่าง (Minolta CR 300 ชุด Minolta กล้อง Co., Ltd. โอซาก้า ญี่ปุ่น) การวัดถูกถ่ายบนพื้นหลังสีขาวที่มาตรฐาน การประเมินทั้งหมดถูกดำเนินการในลข้อ ความแตกต่างสีรวม (ΔE) คำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้:ΔE ¼ ðL −L0Þ2 þ að −a0Þ2 þ b ð −b0Þ2 h i1 = 2 ð1ÞL⁎, a⁎ และ b⁎ ค่าพารามิเตอร์สีของตัวอย่างและ L0 *, a0 * และ b0 * คือค่าพารามิเตอร์สีของตัวอย่าง (Maftoonazad และ Ramaswamy, 2005)2.4.5. เชื้อราผุเชื้อราผุได้ดำเนินการตามวิธีการของฮและเจิ้ง (2007) แตงกวาถูก examined ของติดเชื้อราที่มองเห็นได้ และผลลัพธ์ถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของผลไม้เชื้อต่างเวลา (Feng และเจิ้ง 2007)2.5. จุลชีววิทยาลักษณะทางจุลชีววิทยาของตัวอย่าง 10 กรัมได้รับต่อ homogenization น้ำ 90 มิลลิลิตร 0.1% peptone วจัดเจือจางทศนิยมอื่น ๆ จากการเจือจาง 10−1 และแต่ละอย่างก็ชุบแพร่กระจาย (0.1 มล.) เป็นดังนี้: อาหารเหลว (PCA) สำหรับแบคทีเรียแอโรบิกรวม (รับการกกที่ 35 ° C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง); และวุ้น sabouraud เดกซ์โทรส (SDA) กับคคัสสำหรับยีสต์และรา (รับการกกที่ 25 ° C 5 วัน) Quadruplicate นับได้เฉลี่ยสำหรับกราฟิกที่นำเสนอ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุ andmethods
2.1 วัสดุ
แตงกวาสดทั้งที่ได้รับโดยตรงจากการทำเกษตรอินทรีย์ที่ครบกําหนดในเชิงพาณิชย์ถูกส่งไปยังห้องปฏิบัติการภายใน 24 ชั่วโมงการเก็บเกี่ยวและการเคลือบทดลองดำเนินการในวันเดียวกัน แตงกวาถูกเลือกสำหรับขนาดสม่ำเสมอและสีและไม่มีความเสียหายทางกล จากนั้น fruitwaswashed ในสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรท์ (1% v / v) และด้านซ้ายเป็นเวลา 2 ชั่วโมงในตู้ปลอดภัยให้แห้ง รวม 500 ผลไม้ที่ใช้สำหรับการดำเนินการทดลองทั้งหมด.
ซี Multiflora น้ำมันหอมระเหย (บริสุทธิ์ 100%) ที่มีไทมอล (51.2%) pcymene (13.8%) carvacrol (11.26%) linalool (6.83%) และγ-terpinene (4.46%) ร่วมกับสารประกอบเล็ก ๆ น้อย ๆ อื่น ๆ ที่ได้รับจากแมกโนเลีย Co, อิหร่านและคุณภาพ parameterswere อธิบายไว้ใน technicalreport ที่ออกโดยผู้จัดจำหน่าย.
ทุกมาตรฐานและสารเคมีที่ถูกจัดทำโดย บริษัท Sigma-Aldrich จำกัด ( St. Louis, มิสซูรี, สหรัฐอเมริกา) เหล่านี้รวมถึงไคโตซาน (CS) ofmediummolecular น้ำหนัก (ปริญญาสิกของ 75-85%, CAS 9012-76-4) Tween 80 (CAS 9005-65-6) TPP (CAS 7758-29-4; ≥98% บริสุทธิ์) กรดอะซิติกน้ำแข็ง (CAS 64-19-7; ≥99% บริสุทธิ์) และโซเดียมไฮดรอกไซ (CAS 1310-73-2;
≥97% บริสุทธิ์).
2.2 การเตรียมความพร้อมของการแก้ปัญหาการเคลือบ nanochitosan ตาม
CSNPs ZEO โหลดและ CSNPs ถูกจัดทำขึ้นโดยวิธีการประกอบอิมัลชันชนิดน้ำมันในน้ำและเจไอออนิกตามรายงานก่อนหน้านี้ผู้เขียน (มูฮัม et al., 2015b) อัตราส่วนน้ำหนักของลูกค้าที่จะเซโอ 1: 0.25 ถูกนำมาใช้ในการศึกษาในปัจจุบัน.
2.3 เคลือบแตงกวา
สองโซลูชั่นเคลือบ (T1 และ T2) ได้รับการจัดทำขึ้นโดยการกระจายตัว 0.15% (w / v) CSNPs หรือ ZEO @ CSNPs ในน้ำกลั่นที่จะเข้าถึงความเข้มข้นสุดท้ายของ 1500 ppm และเก็บไว้ที่ 4 องศาเซลเซียส.
cucumberswere เลือกจุ่มลงในหนึ่ง ของสองโซลูชั่นเคลือบ (T1 หรือ T2) เป็นเวลา 2 นาที รวม 250 แตงกวาเคลือบและแห้งในตัวกรองไนล่อนเพื่อระบายสภาพคล่องส่วนเกิน แตงกวาแช่อยู่ในน้ำกลั่นเป็นเวลา 2 นาทีทำหน้าที่เป็นตัวควบคุม ถัดไป, ผลไม้ที่ถูกวางลงในถาดโพรพิลีน (~5 แตงกวาต่อถาด) และเก็บไว้ที่อุณหภูมิที่เหมาะสม 10 ± 1 ° C มี 90-95% RH (gross วังและ Saltveit 2004; Martin-Belloso & Fortuny 2011 ) สำหรับ 21 วัน ตัวอย่างที่ถูกถอนออกทุก 3 วันสำหรับทางเคมีกายภาพและการประเมินผลทางจุลชีววิทยา.
2.4 การวิเคราะห์ทางเคมีกายภาพ
2.4.1 อัตราการหายใจ
เพื่อวัดอัตราการหายใจ, ระบบปิดได้ถูกใช้ (Eshghi et al., 2014) ในแต่ละช่วงเวลาตัวอย่างระหว่างการเก็บรักษาซ้ำสามในห้าของผลไม้ต่อการรักษาถูกวางไว้ในหน้าอกสุญญากาศและ
เซ็นเซอร์ CO2 (Testo AG-435-2, เยอรมนี) ถูกใช้ในการตรวจสอบความเข้มข้นของ CO2 เซ็นเซอร์เป็นโปรแกรมที่จะเก็บความเข้มข้นของ CO2 ในช่วงเวลา 1 นาที 60 นาที อัตราการหายใจวัดจากความลาดชันการถดถอยของความเข้มข้นของ CO2 เมื่อเทียบกับเวลาและข้อมูลที่แสดงเป็นมล CO2 / กก. / ชม.
2.4.2 การสูญเสียน้ำหนัก
การสูญเสีย Theweight แตงกวาสดในการรักษาแต่ละระหว่างการเก็บรักษาโดยวัดจากการตรวจสอบน้ำหนักของ 40 ผลไม้ในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน การสูญเสียน้ำหนักที่คำนวณเป็นเปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักเริ่มต้น (เม้งหลี่, หลิวและ Tian, 2008) ได้.
2.4.3 ความแน่น
กระชับ texturewas การควบคุมและการเคลือบ EVAL sampleswere puncturedwith สอบสวน 7mmdiameter ลูกที่ความเร็ว 12 มม / วินาทีที่ศูนย์ทางเรขาคณิตของพวกเขาและผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็น N / mm (เชียน Sheu และหลิน, 2007).
2.4.4 ผิวผลไม้สี
สว่าง (L *), สีแดง (A *) และสีเหลือง (b *) ระบบสีที่ใช้ในการประเมินสีผิวโดย colorimeter A (Minolta CR 300 Series, MINOLTA กล้อง Co. , Ltd, โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น ) การวัดที่ถูกนำบนพื้นหลังสีขาวมาตรฐาน วัดทั้งหมดถูกดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า แตกต่างของสีรวม (ΔE) คำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้:
? ΔE¼ DL -L0Þ2Það-a0Þ2ÞขÐ-b0Þ2 H i1 = 2 ð1Þ?
ที่L⁎, a⁎และb⁎เป็นค่าพารามิเตอร์สีของ ตัวอย่างและ L0 * * * * * A0 และ B0 * เป็นค่าพารามิเตอร์สีของกลุ่มตัวอย่าง (Maftoonazad และ Ramaswamy, 2005).
2.4.5 เชื้อราผุ
เชื้อราผุได้ดำเนินการตามวิธีการของฮและเจิ้งเหอ (2007) แตงกวามีการตรวจสอบการปรากฏตัวของการติดเชื้อราที่มองเห็นได้และผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของผลไม้ที่ติดเชื้อในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน (ฮและเจิ้งเหอ, 2007).
2.5 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยา
ลักษณะจุลชีววิทยาของตัวอย่าง 10 กรัมที่ได้รับทำให้เป็นเนื้อเดียวกันต่อไปนี้ใน 90 มิลลิลิตรน้ำเปปโตน 0.1% เจือจางทศนิยมอื่น ๆ ที่เตรียมจาก 10-1 เจือจางและแต่ละกระจายชุบ (0.1 มิลลิลิตร) ดังนี้นับจานเลี้ยงเชื้อ (PCA) สำหรับแบคทีเรียแอโรบิกรวม (บ่มที่อุณหภูมิ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมง); และ SABOURAUD dextrose agar (SDA) กับ chloramphenicol สำหรับยีสต์และรา (บ่มที่อุณหภูมิ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 วัน) นับ quadruplicate ถูกเฉลี่ยสำหรับกราฟิก
นำเสนอ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2 . วัสดุและวิธีการ2.1 . วัสดุแตงกวาทั้งสด ได้รับโดยตรงจากฟาร์มเกษตรอินทรีย์ที่วุฒิภาวะเชิงพาณิชย์ ถูกส่งไปยังห้องปฏิบัติการภายใน 24 ชั่วโมง การเก็บเกี่ยวและเคลือบการทดลองในวันเดียวกัน แตงกวาเลือกขนาดสม่ำเสมอและสีและไม่มีความเสียหายทางกล แล้ว fruitwaswashed ใน sodiumhypochlorite สารละลาย 1 % v / v ) และทิ้งไว้ 2 ชั่วโมงในตู้เซฟ ให้แห้ง รวม 500 ผลไม้ถูกใช้สำหรับการดำเนินการทุกการทดลองปุ่ม มัลติฟลอราน้ำมันหอมระเหย ( แท้ 100% ) ที่มี ไทมอล ( 51.2 % ) pcymene ( ร้อยละ 13.8 ) คาร์วาโครล ( 11.26 % ) , ลินาลูล ( . ) และγ - terpinene มี ( 4.46 % ) ร่วมกับสารประกอบรองอื่น ๆที่ได้รับจากแมกโนเลีย Co , อิหร่าน และคุณภาพของ parameterswere อธิบายใน technicalreport ออกโดย ซัพพลายเออร์ทุกมาตรฐานและสารเคมีที่จัดโดยบริษัท ซิกม่า Aldrich ( St . Louis , MO , USA ) ได้แก่ ไคโตซาน ( CS ) ofmediummolecular น้ำหนัก ( เลชันระดับ 75 – 85 % , CAS 9012-76-4 ) Tween 80 ( CAS 9005-65-6 ) , TPP ( CAS 7758-29-4 ; ≥ 98% ความบริสุทธิ์ ) , กรดอะซิติกน้ำแข็ง ( CAS 64-19-7 ; ≥ 99% บริสุทธิ์ ) และโซเดียม ไฮดรอกไซด์ ( CAS 1310-73-2 ;≥ความบริสุทธิ์ 97 % )2.2 . การเตรียมสารเคลือบผิวที่ใช้ nanochitosanโหลด csnps csnps ซีโอ และถูกเตรียมโดยวิธีประกอบด้วยน้ำมันและเจลาตินในน้ำไอออน , ตามรายงานก่อนหน้า ( ผู้เขียน mohammadi et al . , 2015b ) อัตราส่วนโดยน้ำหนักของ CS กับซีโอของ 1 : 0.25 ถูกใช้ในการศึกษาปัจจุบัน2.3 ไม้แปรรูป แตงกวา2 เคลือบ โซลูชั่น ( T1 & T2 ) เตรียมได้โดยการกระจาย 0.15% ( w / v ) csnps หรือซีโอ @ csnps น้ำกลั่นถึงความเข้มข้นสุดท้าย 1500 ppm และเก็บที่อุณหภูมิ 4 องศาเลือกหนึ่งในสอง cucumberswere จุ่มเคลือบ โซลูชั่น ( T1 หรือ T2 ) 2 นาทีทั้งหมด 250 แตงกวาถูกเคลือบและอบแห้งบนผ้าไนล่อนกรองเพื่อระบายของเหลวส่วนเกิน แตงกวาที่แช่ในน้ำกลั่น 2 มิน ทำหน้าที่ควบคุม ถัดไป , ผลไม้ถูกวางลงในถาด โพรพิลีน ( ∼ 5 แตงกวาต่อถาด ) และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 10 ± 1 ° C 90 - 95% RH ( แหวะ วัง และ saltveit , 2004 ; มาร์ติน belloso & fortuny 2011 ) สำหรับ 21 วัน ตัวอย่างที่ถูกถอนทุก 3 วันสำหรับทางกายภาพและเคมีและจุลชีววิทยาการประเมิน2.4 . การวิเคราะห์ทางกายภาพและเคมีเครื่องมือกำจัดเพื่อย้าย . อัตราการหายใจเพื่อวัดอัตราการหายใจ , ระบบปิด คือ ใช้ ( eshghi et al . , 2010 ) ในแต่ละตัวอย่างเวลาระหว่างกระเป๋า 3 ซ้ำ 5 ผลต่อ การรักษา ถูกวางอยู่ในทรวงอก อัดลม และCO2 sensor ( Testo ag-435-2 , เยอรมนี ) ถูกใช้เพื่อตรวจสอบความเข้มข้นของ CO2 . เซ็นเซอร์ที่ถูกโปรแกรมให้เก็บ CO2 ความเข้มข้น 1-min ช่วงเวลา 60 นาทีอัตราการหายใจ ซึ่งวัดจากการถดถอยลาดชันของ CO2 เพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับข้อมูลเวลาและแสดงเป็นมิลลิลิตร / กิโลกรัม / ชั่วโมง คาร์บอนไดออกไซด์2.4.2 . การสูญเสียน้ำหนักtheweight การสูญเสียของแตงกวาสดระหว่างการเก็บรักษาในแต่ละวัดโดยการตรวจสอบน้ำหนักของ 40 ผลไม้ในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน มีการสูญเสียน้ำหนักที่คำนวณเป็นร้อยละของน้ำหนัก ( เมิ่ง หลี่ หลิว และเทียน , 2008 )2.4.3 . กระชับความแน่น texturewas ควบคุมทางจิตและเคลือบจำนวน puncturedwith เป็น 7mmdiameter บอล probe ที่ความเร็ว 12 mm / s ที่ศูนย์เรขาคณิต และผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็น N / mm ( เจียน sheu , และ , หลิน , 2007 )2.4.4 . สีผิวผลไม้ความสว่าง ( L * ) , สีแดง ( a * ) และค่าสีเหลือง ( b * ) ระบบสีถูกใช้เพื่อประเมินสีผิวโดย colorimeter ( Minolta CR 300 ชุด กล้อง Minolta Co . , Ltd . , โอซาก้า , ญี่ปุ่น ในการวัดมาตรฐานบนพื้นหลังสีขาว วัดทั้งหมดมีการปฏิบัติทั้งสามใบ ความแตกต่างสีทั้งหมด ( Δ E ) คำนวณได้โดยใช้สมการต่อไปนี้Δ E ¼ð l0 L −− 2 þÞเป็นð A0 Þ 2 þ B ð− B0 Þ 2 h i0 = 2 ð 1 Þที่ผม⁎ , ⁎และ B ⁎เป็นพารามิเตอร์ค่าสีของตัวอย่างและ l0 * A0 * B0 * พารามิเตอร์ค่าสีของตัวอย่าง ( maftoonazad และ ramaswamy , 2005 )2.4.5 . เชื้อราผุเชื้อราที่ย่อยสลายได้ตามวิธีการของฟง และ เจิ้ง ( 2007 ) แตงกวามีวัตถุประสงค์เพื่อการแสดงตนของเชื้อราที่มองเห็นและผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นร้อยละของผลไม้ที่ติดเชื้อในช่วงเวลาที่แตกต่างกัน ( ฟง & เจิ้ง , 2007 )2.5 การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาคุณลักษณะทางจุลชีววิทยาของ 10 กรัมจำนวนได้รับการดังต่อไปนี้ใน 90 ml 0.1% เปปโตนน้ำ วิธีการทศนิยมอื่นที่เตรียมจาก 10 − 1 ( และแต่ละคือ ชุบกระจาย ( 0.1 ml ) ดังนี้ : Planetmath reference ( PCA ) สำหรับแบคทีเรียแอโรบิกรวม ( บ่มที่อุณหภูมิ 35 องศา C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง และ sabouraud dextrose agar ( SDA ) คลอแรมเฟนิคอลสำหรับยีสต์และเชื้อรา ( อุณหภูมิ 25 ° C สำหรับ 5 วัน ) ซึ่งเป็นสี่เท่า นับได้เฉลี่ยสำหรับกราฟิกการนำเสนอ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.