- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Example 1 Proposed Method of Recove
Example 1 Proposed Method of Recovery and Purification of BFE Produced by Porphypridium cruentum
With reference to FIG. 1, Porphyridium cruentum is cultured in a bioreactor (1) under conditions previously reported hereinabove. By centrifugation (1000 G, 5 min) the biomass (101) is separated from the spent culture medium (102). Distilled water in the amount of 4 cc per gram of wet biomass (201) used is added to the biomass, and the microalga is subjected to mechanical cellular disruption (2) by ultrasound exposure (10 min/g of wet biomass used). The pH of the homogenizate resulting from the cellular disruption (comprised of the protein of interest (BFE) and contaminants (including cellular residues)) is adjusted to 4 by addition of 1.0 N HCl to bring about isoelectric precipitation (3), at 10° C. To protect the sample from excessively long exposure to light at excessively high levels (>20 microeinstein per sq m per second) the container is covered with aluminum foil during the isoelectric precipitation. The resulting precipitate (301), comprised of BFE, cellular residues, and other proteins with pI similar to BFE, is recovered, and the supernatant (302), which has a low content of BFE, is discarded. The isoelectric precipitate is re-suspended in phosphate buffer (20 mM, pH 7) and is added to the two-aqueous-phase systems comprising PEG and potassium phosphate (4). After the addition of the precipitate, the system is mixed using a rotary inversion mixer (60 rpm, 10 min), and the phases are separated by means of centrifugation (1000 G, 10 min). The upper phase (401) (containing BFE) is recovered by suction, using a pipette, and after the upper phase has been recovered the lower phase (402) is discarded. The recovered upper phase (401) is subjected to ultrafiltration using a laboratory-scale ultrafiltration cell (5). The recovered upper phase is introduced into the ultrafiltration chamber in which the ultrafiltration membrane has already been installed. The membrane used has pore size suitable for 50 kDa; the propellant is nitrogen gas at pressure 30 psi, which causes separation of the polymer (501) (which passes through the ultrafiltration membrane) from the BFE (502) (which is retained on the membrane). The BFE obtained by this process is of analytical purity (Abs 545 nm/280 nm>4)
With reference to FIG. 1, Porphyridium cruentum is cultured in a bioreactor (1) under conditions previously reported hereinabove. By centrifugation (1000 G, 5 min) the biomass (101) is separated from the spent culture medium (102). Distilled water in the amount of 4 cc per gram of wet biomass (201) used is added to the biomass, and the microalga is subjected to mechanical cellular disruption (2) by ultrasound exposure (10 min/g of wet biomass used). The pH of the homogenizate resulting from the cellular disruption (comprised of the protein of interest (BFE) and contaminants (including cellular residues)) is adjusted to 4 by addition of 1.0 N HCl to bring about isoelectric precipitation (3), at 10° C. To protect the sample from excessively long exposure to light at excessively high levels (>20 microeinstein per sq m per second) the container is covered with aluminum foil during the isoelectric precipitation. The resulting precipitate (301), comprised of BFE, cellular residues, and other proteins with pI similar to BFE, is recovered, and the supernatant (302), which has a low content of BFE, is discarded. The isoelectric precipitate is re-suspended in phosphate buffer (20 mM, pH 7) and is added to the two-aqueous-phase systems comprising PEG and potassium phosphate (4). After the addition of the precipitate, the system is mixed using a rotary inversion mixer (60 rpm, 10 min), and the phases are separated by means of centrifugation (1000 G, 10 min). The upper phase (401) (containing BFE) is recovered by suction, using a pipette, and after the upper phase has been recovered the lower phase (402) is discarded. The recovered upper phase (401) is subjected to ultrafiltration using a laboratory-scale ultrafiltration cell (5). The recovered upper phase is introduced into the ultrafiltration chamber in which the ultrafiltration membrane has already been installed. The membrane used has pore size suitable for 50 kDa; the propellant is nitrogen gas at pressure 30 psi, which causes separation of the polymer (501) (which passes through the ultrafiltration membrane) from the BFE (502) (which is retained on the membrane). The BFE obtained by this process is of analytical purity (Abs 545 nm/280 nm>4)
0/5000
ตัวอย่างที่ 1 การนำเสนอวิธีการของการกู้คืนและทำให้บริสุทธิ์ของ BFE ผลิต โดย Porphypridium cruentumWith reference to FIG. 1, Porphyridium cruentum is cultured in a bioreactor (1) under conditions previously reported hereinabove. By centrifugation (1000 G, 5 min) the biomass (101) is separated from the spent culture medium (102). Distilled water in the amount of 4 cc per gram of wet biomass (201) used is added to the biomass, and the microalga is subjected to mechanical cellular disruption (2) by ultrasound exposure (10 min/g of wet biomass used). The pH of the homogenizate resulting from the cellular disruption (comprised of the protein of interest (BFE) and contaminants (including cellular residues)) is adjusted to 4 by addition of 1.0 N HCl to bring about isoelectric precipitation (3), at 10° C. To protect the sample from excessively long exposure to light at excessively high levels (>20 microeinstein per sq m per second) the container is covered with aluminum foil during the isoelectric precipitation. The resulting precipitate (301), comprised of BFE, cellular residues, and other proteins with pI similar to BFE, is recovered, and the supernatant (302), which has a low content of BFE, is discarded. The isoelectric precipitate is re-suspended in phosphate buffer (20 mM, pH 7) and is added to the two-aqueous-phase systems comprising PEG and potassium phosphate (4). After the addition of the precipitate, the system is mixed using a rotary inversion mixer (60 rpm, 10 min), and the phases are separated by means of centrifugation (1000 G, 10 min). The upper phase (401) (containing BFE) is recovered by suction, using a pipette, and after the upper phase has been recovered the lower phase (402) is discarded. The recovered upper phase (401) is subjected to ultrafiltration using a laboratory-scale ultrafiltration cell (5). The recovered upper phase is introduced into the ultrafiltration chamber in which the ultrafiltration membrane has already been installed. The membrane used has pore size suitable for 50 kDa; the propellant is nitrogen gas at pressure 30 psi, which causes separation of the polymer (501) (which passes through the ultrafiltration membrane) from the BFE (502) (which is retained on the membrane). The BFE obtained by this process is of analytical purity (Abs 545 nm/280 nm>4)
การแปล กรุณารอสักครู่..
Example 1 Proposed Method of Recovery and Purification of BFE Produced by Porphypridium cruentum
With reference to FIG. 1, Porphyridium cruentum is cultured in a bioreactor (1) under conditions previously reported hereinabove. By centrifugation (1000 G, 5 min) the biomass (101) is separated from the spent culture medium (102). Distilled water in the amount of 4 cc per gram of wet biomass (201) used is added to the biomass, and the microalga is subjected to mechanical cellular disruption (2) by ultrasound exposure (10 min/g of wet biomass used). The pH of the homogenizate resulting from the cellular disruption (comprised of the protein of interest (BFE) and contaminants (including cellular residues)) is adjusted to 4 by addition of 1.0 N HCl to bring about isoelectric precipitation (3), at 10° C. To protect the sample from excessively long exposure to light at excessively high levels (>20 microeinstein per sq m per second) the container is covered with aluminum foil during the isoelectric precipitation. The resulting precipitate (301), comprised of BFE, cellular residues, and other proteins with pI similar to BFE, is recovered, and the supernatant (302), which has a low content of BFE, is discarded. The isoelectric precipitate is re-suspended in phosphate buffer (20 mM, pH 7) and is added to the two-aqueous-phase systems comprising PEG and potassium phosphate (4). After the addition of the precipitate, the system is mixed using a rotary inversion mixer (60 rpm, 10 min), and the phases are separated by means of centrifugation (1000 G, 10 min). The upper phase (401) (containing BFE) is recovered by suction, using a pipette, and after the upper phase has been recovered the lower phase (402) is discarded. The recovered upper phase (401) is subjected to ultrafiltration using a laboratory-scale ultrafiltration cell (5). The recovered upper phase is introduced into the ultrafiltration chamber in which the ultrafiltration membrane has already been installed. The membrane used has pore size suitable for 50 kDa; the propellant is nitrogen gas at pressure 30 psi, which causes separation of the polymer (501) (which passes through the ultrafiltration membrane) from the BFE (502) (which is retained on the membrane). The BFE obtained by this process is of analytical purity (Abs 545 nm/280 nm>4)
With reference to FIG. 1, Porphyridium cruentum is cultured in a bioreactor (1) under conditions previously reported hereinabove. By centrifugation (1000 G, 5 min) the biomass (101) is separated from the spent culture medium (102). Distilled water in the amount of 4 cc per gram of wet biomass (201) used is added to the biomass, and the microalga is subjected to mechanical cellular disruption (2) by ultrasound exposure (10 min/g of wet biomass used). The pH of the homogenizate resulting from the cellular disruption (comprised of the protein of interest (BFE) and contaminants (including cellular residues)) is adjusted to 4 by addition of 1.0 N HCl to bring about isoelectric precipitation (3), at 10° C. To protect the sample from excessively long exposure to light at excessively high levels (>20 microeinstein per sq m per second) the container is covered with aluminum foil during the isoelectric precipitation. The resulting precipitate (301), comprised of BFE, cellular residues, and other proteins with pI similar to BFE, is recovered, and the supernatant (302), which has a low content of BFE, is discarded. The isoelectric precipitate is re-suspended in phosphate buffer (20 mM, pH 7) and is added to the two-aqueous-phase systems comprising PEG and potassium phosphate (4). After the addition of the precipitate, the system is mixed using a rotary inversion mixer (60 rpm, 10 min), and the phases are separated by means of centrifugation (1000 G, 10 min). The upper phase (401) (containing BFE) is recovered by suction, using a pipette, and after the upper phase has been recovered the lower phase (402) is discarded. The recovered upper phase (401) is subjected to ultrafiltration using a laboratory-scale ultrafiltration cell (5). The recovered upper phase is introduced into the ultrafiltration chamber in which the ultrafiltration membrane has already been installed. The membrane used has pore size suitable for 50 kDa; the propellant is nitrogen gas at pressure 30 psi, which causes separation of the polymer (501) (which passes through the ultrafiltration membrane) from the BFE (502) (which is retained on the membrane). The BFE obtained by this process is of analytical purity (Abs 545 nm/280 nm>4)
การแปล กรุณารอสักครู่..
ตัวอย่างที่ 1 เสนอวิธีการกู้คืนและการทำให้บริสุทธิ์ของ bfe ผลิตโดย porphypridium ครูเอนทั่ม
อ้างอิงรูปที่ 1 , porphyridium ครูเอนทั่มเป็นที่เพาะเลี้ยงในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ ( 1 ) ภายใต้เงื่อนไขที่รายงานว่า ก่อนหน้านี้ hereinabove . โดยการเหวี่ยงแยก ( 1000 กรัม 5 นาที ) มวลชีวภาพ ( 101 ) แยกจากใช้สื่อวัฒนธรรม ( 102 )น้ำกลั่นในจํานวน 4 ซีซี ต่อกรัมมวลชีวภาพของเปียก ( 201 ) ใช้เพิ่มมวลชีวภาพ และสาหร่ายต้องหยุดชะงักของเซลล์กล ( 2 ) โดยการอัลตราซาวน์ ( 10 นาที / กรัมของมวลเปียกใช้ )pH ของ homogenizate ที่เกิดจากการหยุดชะงักของเซลล์ ( ประกอบด้วยโปรตีนที่สนใจ ( bfe ) และสิ่งปนเปื้อน ( รวมถึงการตกค้างของเซลล์ ) ปรับ 4 โดยนอกเหนือจาก 1.0 N HCl จะนำเกี่ยวกับการตกตะกอนไอโซอิเล็กทริก ( 3 ) , ที่ 10 องศาการปกป้องจากตัวอย่างมากเกินไปเปิดรับแสงนานเพื่อแสงสว่างในระดับที่สูงมาก ( > 20 microeinstein ต่อตารางเมตรต่อวินาที ) ภาชนะที่ปกคลุมด้วยอลูมิเนียมฟอยล์ ในการตกตะกอนไอโซอิเล็กทริก . ทำให้ตกตะกอน ( 301 ) ประกอบด้วย bfe , การตกค้างของเซลล์และโปรตีนอื่น ๆ ด้วย พี คล้ายกับ bfe , กู้คืนและนำ ( 302 ) ซึ่งมีเนื้อหา bfe ต่ำ ,ถูกทิ้ง . ที่พักในฟอสเฟตบัฟเฟอร์เป็นไอโซอิเล็กทริก ( 20 มม. , pH 7 ) และเพิ่มสองระบบซึ่งประกอบด้วย ระยะหมุดและโพแทสเซียมฟอสเฟต ( 4 ) หลังจากเพิ่มของตะกอน , ระบบผสมที่ใช้ผสมผกผันโรตารี่ ( 60 รอบต่อนาที 10 นาที ) , และขั้นตอนจะถูกแยกออกโดยการเหวี่ยงแยก ( 1000 กรัม , 10 นาที )ขั้นตอนด้านบน ( 401 ) ( ที่มี bfe ) ได้ โดยการดูด การใช้ปิเปตต์ และหลังจากขั้นตอนด้านบนได้ถูกกู้ระยะล่าง ( 402 ) ทิ้ง การกู้คืนบนเฟส ( 401 ) อยู่ภายใต้กรองใช้กรองระดับห้องปฏิบัติการเซลล์ ( 5 )การกู้คืนบนเฟสเข้าไปผสมในกระบวนการเมมเบรนห้องซึ่งได้รับการติดตั้ง เมมเบรนที่ใช้มีขนาดรูพรุนที่เหมาะสมสำหรับ 50 กิโล ; น้ำมันเป็นแก๊สไนโตรเจนที่ความดัน 30 psi ซึ่งทำให้เกิดการแยกของพอลิเมอร์ ( 501 ) ( ซึ่งผ่านกระบวนการเมมเบรน ) จาก bfe ( 502 ) ( ซึ่งถูกเก็บไว้ในแผ่น )ที่ได้จากกระบวนการนี้คือ bfe วิเคราะห์ความบริสุทธิ์ ( ABS 545 nm / 280 nm ) > 4
อ้างอิงรูปที่ 1 , porphyridium ครูเอนทั่มเป็นที่เพาะเลี้ยงในถังปฏิกรณ์ชีวภาพ ( 1 ) ภายใต้เงื่อนไขที่รายงานว่า ก่อนหน้านี้ hereinabove . โดยการเหวี่ยงแยก ( 1000 กรัม 5 นาที ) มวลชีวภาพ ( 101 ) แยกจากใช้สื่อวัฒนธรรม ( 102 )น้ำกลั่นในจํานวน 4 ซีซี ต่อกรัมมวลชีวภาพของเปียก ( 201 ) ใช้เพิ่มมวลชีวภาพ และสาหร่ายต้องหยุดชะงักของเซลล์กล ( 2 ) โดยการอัลตราซาวน์ ( 10 นาที / กรัมของมวลเปียกใช้ )pH ของ homogenizate ที่เกิดจากการหยุดชะงักของเซลล์ ( ประกอบด้วยโปรตีนที่สนใจ ( bfe ) และสิ่งปนเปื้อน ( รวมถึงการตกค้างของเซลล์ ) ปรับ 4 โดยนอกเหนือจาก 1.0 N HCl จะนำเกี่ยวกับการตกตะกอนไอโซอิเล็กทริก ( 3 ) , ที่ 10 องศาการปกป้องจากตัวอย่างมากเกินไปเปิดรับแสงนานเพื่อแสงสว่างในระดับที่สูงมาก ( > 20 microeinstein ต่อตารางเมตรต่อวินาที ) ภาชนะที่ปกคลุมด้วยอลูมิเนียมฟอยล์ ในการตกตะกอนไอโซอิเล็กทริก . ทำให้ตกตะกอน ( 301 ) ประกอบด้วย bfe , การตกค้างของเซลล์และโปรตีนอื่น ๆ ด้วย พี คล้ายกับ bfe , กู้คืนและนำ ( 302 ) ซึ่งมีเนื้อหา bfe ต่ำ ,ถูกทิ้ง . ที่พักในฟอสเฟตบัฟเฟอร์เป็นไอโซอิเล็กทริก ( 20 มม. , pH 7 ) และเพิ่มสองระบบซึ่งประกอบด้วย ระยะหมุดและโพแทสเซียมฟอสเฟต ( 4 ) หลังจากเพิ่มของตะกอน , ระบบผสมที่ใช้ผสมผกผันโรตารี่ ( 60 รอบต่อนาที 10 นาที ) , และขั้นตอนจะถูกแยกออกโดยการเหวี่ยงแยก ( 1000 กรัม , 10 นาที )ขั้นตอนด้านบน ( 401 ) ( ที่มี bfe ) ได้ โดยการดูด การใช้ปิเปตต์ และหลังจากขั้นตอนด้านบนได้ถูกกู้ระยะล่าง ( 402 ) ทิ้ง การกู้คืนบนเฟส ( 401 ) อยู่ภายใต้กรองใช้กรองระดับห้องปฏิบัติการเซลล์ ( 5 )การกู้คืนบนเฟสเข้าไปผสมในกระบวนการเมมเบรนห้องซึ่งได้รับการติดตั้ง เมมเบรนที่ใช้มีขนาดรูพรุนที่เหมาะสมสำหรับ 50 กิโล ; น้ำมันเป็นแก๊สไนโตรเจนที่ความดัน 30 psi ซึ่งทำให้เกิดการแยกของพอลิเมอร์ ( 501 ) ( ซึ่งผ่านกระบวนการเมมเบรน ) จาก bfe ( 502 ) ( ซึ่งถูกเก็บไว้ในแผ่น )ที่ได้จากกระบวนการนี้คือ bfe วิเคราะห์ความบริสุทธิ์ ( ABS 545 nm / 280 nm ) > 4
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- Try a different connection
- ไม่เป็นไรนะคะ Niwit ขอบคุณมากค่ะ
- คุณจะกลับมาที่นี้เมื่อไร
- If u don't mind I will sleep with 100 gi
- ฉันเคยดูแลหลานวัยทารก.การเลี้ยงเด็กมีกลา
- Don't ask me if I love you, when, where
- เรื่องของการเลือกรับประทานอาหารเป็นสิ่งท
- ohh im horny now
- อยู่กับใคร
- Thanksgiving
- Once you're in just let me know when u s
- Don't ask me if I love you, when, where
- การแสดงประจำปีโรงเรียน
- ฉันคอยให้กำลังใจอยู่เคียงข้างคุณ
- ฉันคอยให้กำลังใจคุณ
- Thankful
- In Henan Province, certain winter wheat
- เคยดูแลหลานวัยทารก.การเลี้ยงเด็กมีกลายกิ
- she licks us when we fuck
- ขับเคลื่อนธุรกิจ
- ผีสำหรับผู้คนมีทั้งจริงและไม่จริง
- Thankfully
- คุณดูแปลกๆไป
- I will busy than ladies all your other o
