2.1.2. Enumeration of freeze-dried L. acidophilus, L. casei, L. rhamnosus and Bifidobacterium spp.
Ten grams wet weight of washed and harvested cells were suspended in Schott bottles containing 90 mL of sterile
(14% w/v) reconstituted skim milk (RSM). The cell suspension was mixed thoroughly and a weighed quantity (30–50 g) was spread onto 90 mm petri dishes.The viability of the probiotic organisms was determined before freeze-drying by pour plating. Probiotic organisms were freeze-dried by freezing at 80 C for 2 h using a freeze-dryer (model FD-300, Airvac Engineering Pty. Ltd., Dandenong, Australia) followed by 40 h of primary drying at 30 C and 8 h of secondary drying at 10 C. Once the freeze-drying cycle had completed,the freeze-dried yoghurt (Fig. 1) and probiotic organisms were reconstituted with the same mass of water removed during freeze-drying. Enumeration of hydrated samples was carried out using the pour plate technique.Serial dilution was carried out in sterile peptone and water solution (0.15% w/v) and MRS agar was used for plating. Petri dishes containing Bifidobacterium spp. were supplemented with 0.05% w/v L-cysteineÆhydrochloride.The plates were then incubated anaerobically for 48–72 h at 37 C in anaerobic gas jars with gas generating kits (BRD 38). Probiotic organisms were enumerated on plates containing 25–250 colony forming units per gram. The following strains: L.rhamnosus GG, L. acidophilus 33200, L. casei 279 and B. longum 536 showed the best survival from each of individual strains investigated in this project. These probiotic organisms were used for further experiments involving cryoprotectants, prebiotics and microencapsulation.
2.1.2. Enumeration of freeze-dried L. acidophilus, L. casei, L. rhamnosus and Bifidobacterium spp.Ten grams wet weight of washed and harvested cells were suspended in Schott bottles containing 90 mL of sterile (14% w/v) reconstituted skim milk (RSM). The cell suspension was mixed thoroughly and a weighed quantity (30–50 g) was spread onto 90 mm petri dishes.The viability of the probiotic organisms was determined before freeze-drying by pour plating. Probiotic organisms were freeze-dried by freezing at 80 C for 2 h using a freeze-dryer (model FD-300, Airvac Engineering Pty. Ltd., Dandenong, Australia) followed by 40 h of primary drying at 30 C and 8 h of secondary drying at 10 C. Once the freeze-drying cycle had completed,the freeze-dried yoghurt (Fig. 1) and probiotic organisms were reconstituted with the same mass of water removed during freeze-drying. Enumeration of hydrated samples was carried out using the pour plate technique.Serial dilution was carried out in sterile peptone and water solution (0.15% w/v) and MRS agar was used for plating. Petri dishes containing Bifidobacterium spp. were supplemented with 0.05% w/v L-cysteineÆhydrochloride.The plates were then incubated anaerobically for 48–72 h at 37 C in anaerobic gas jars with gas generating kits (BRD 38). Probiotic organisms were enumerated on plates containing 25–250 colony forming units per gram. The following strains: L.rhamnosus GG, L. acidophilus 33200, L. casei 279 and B. longum 536 showed the best survival from each of individual strains investigated in this project. These probiotic organisms were used for further experiments involving cryoprotectants, prebiotics and microencapsulation.
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.1.2 การแจงนับของแห้ง L. acidophilus, L. Casei, L. rhamnosus และ Bifidobacterium spp.
สิบกรัมน้ำหนักเปียกของเซลล์ล้างและเก็บเกี่ยวถูกระงับในขวดที่มีชอตต์ 90 มลหมัน
(14% w / v) นมพร่องมันเนยละลาย ( RSM) เซลล์แขวนลอยผสมอย่างทั่วถึงและมีปริมาณการชั่งน้ำหนัก (30-50 กรัม) ได้รับการแพร่กระจายไปยัง 90 มิลลิเมตรมีชีวิต Petri dishes.The ของสิ่งมีชีวิตโปรไบโอติกถูกกำหนดก่อนที่จะแช่แข็งแห้งโดยเทชุบ สิ่งมีชีวิตที่ได้รับการโปรไบโอติกแห้งโดยการแช่แข็งที่? 80 C เป็นเวลา 2 ชั่วโมงโดยใช้แช่แข็งเครื่องเป่า (รุ่น FD-300, Airvac Engineering Pty. Ltd. Dandenong, ออสเตรเลีย) ตามด้วย 40 ชั่วโมงของการอบแห้งหลักที่? 30 C และ 8 ชั่วโมงของการอบแห้งที่รอง? 10 องศาเซลเซียสเมื่อวงจรแช่แข็งแห้งเสร็จ, โยเกิร์ตแช่แข็งแห้ง (รูปที่ 1). โปรไบโอติกและสิ่งมีชีวิตที่ถูกสร้างขึ้นด้วยมวลเดียวกันของน้ำถอดออกในช่วงแช่แข็งแห้ง แจงนับตัวอย่างไฮเดรทได้ดำเนินการโดยใช้แผ่นเทเจือจาง technique.Serial ได้ดำเนินการในเปปโตนผ่านการฆ่าเชื้อและการแก้ปัญหาน้ำ (0.15% w / v) และ MRS agar ที่ใช้สำหรับชุบ จานเลี้ยงเชื้อที่มี Bifidobacterium spp ได้รับการเสริมด้วย 0.05% w / v แผ่น L-cysteineÆhydrochloride.Theถูกบ่มแล้วแบบไม่ใช้อากาศสำหรับ 48-72 ชั่วโมงที่อุณหภูมิ 37 C ในขวดก๊าซออกซิเจนก๊าซที่ก่อให้เกิดชุด (BRD 38) โปรไบโอติกมีชีวิตที่ถูกระบุบนจานที่มีการสร้างอาณานิคม 25-250 หน่วยต่อกรัม สายพันธุ์ต่อไปนี้: L.rhamnosus GG, L. acidophilus 33,200 ลิตร Casei 279 และ B. longum 536 แสดงให้เห็นว่าการอยู่รอดที่ดีที่สุดจากแต่ละสายพันธุ์ของแต่ละบุคคลการตรวจสอบในโครงการนี้ โปรไบโอติกมีชีวิตเหล่านี้ถูกนำมาใช้สำหรับการทดลองเพิ่มเติมที่เกี่ยวข้องกับ cryoprotectants, prebiotics และไมโครแคปซูล
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.1.2 . การแห้ง L . acidophilus L . casei , L . rhamnosus Bifidobacterium spp .
10 กรัมและน้ำหนักเปียกของล้างและเก็บเซลล์ที่ถูกระงับในขวดบรรจุ 90 มิลลิลิตร คือเป็นหมัน
( 14 % w / v ) สร้างหางนม ( RSM ) เซลล์แขวนลอยผสมอย่างทั่วถึงและชั่งน้ำหนักปริมาณ ( 30 – 50 กรัม ) ได้แพร่กระจายไปยัง 90 มม. จานเพาะเลี้ยงชีวิตของสิ่งมีชีวิต โปรไบโอติก ตัดสินใจก่อนการทำแห้งเยือกแข็งโดยเทชุบ โปรไบโอติกสิ่งมีชีวิตในที่แห้งโดยการแช่แข็ง 80 C 2 H ใช้ตรึงแห้ง ( แบบ fd-300 airvac , วิศวกรรม Pty . จำกัด , Dandenong , ออสเตรเลีย ) ตามด้วยการอบแห้งที่อุณหภูมิ 40 ( 30 C 8 H ของรองในการอบแห้งที่ 10 องศาเซลเซียสเมื่อทำแห้งวงจรได้สมบูรณ์แห้งแช่แข็งโยเกิร์ต ( รูปที่ 1 ) และ โปรไบโอติกสิ่งมีชีวิตในธรรมชาติที่มีมวลเท่ากันของน้ำเอาออกในระหว่างการทำแห้งเยือกแข็ง . การเพิ่มจำนวนการใช้เทคนิคใส่จาน อุทิศถวายได้ดําเนินการในเปปโตนที่เป็นหมันและน้ำสารละลาย ( 0.15 % w / v ) และนางวุ้นใช้ชุบ จานเลี้ยงเชื้อที่ประกอบด้วย Bifidobacterium spp .ที่ถูกเสริมด้วย 0.05 % W / V L-Cysteine กู้ hydrochloride.the แผ่นแล้วบ่มพ 48 - 72 ชั่วโมง ที่ 37 องศาเซลเซียส ในขวดก๊าซถังก๊าซผลิตอิสระ ( ทิศใต้ 38 ) โปรไบโอติกสิ่งมีชีวิตในที่ระบุบนแผ่นบรรจุ 25 – 250 โคโลนีสร้างหน่วย / กรัม สายพันธุ์ดังต่อไปนี้ l.rhamnosus GG , L . acidophilus 33200 L . casei , 279 และ Blongum แต่พบการอยู่รอดที่ดีที่สุดจากแต่ละบุคคล สายพันธุ์ที่ศึกษาในโครงการนี้ สิ่งมีชีวิตโปรไบโอติกโดยใช้สารป้องกันโปรตีนเสียสภาพเนื่องจากเพิ่มเติมการทดลองที่เกี่ยวข้องกับ , และพรีไบโอติก
ไมโคร .
การแปล กรุณารอสักครู่..