Subjects and methodsSubjects and to

Subjects and methods
Subjects and toluene exposure
End-of-shift urine samples were collected from 13 male workers
occupationally exposed to toluene in a printing workshop. The
shift lasted from 9:00 a.m. until 5:00 p.m., including a 1-h lunch
break at noon. Time-weighted average (TWA) toluene exposure
concentrations in breathing-zone air were monitored by di€usive
sampling using carbon cloth K-1500 (Toyobo, Osaka, Japan) as the
adsorbent (Hirayama and Ikeda 1979; Ikeda et al. 1984; Kasahara
and Ikeda 1987). The TWA exposure concentrations were distributed
in a wide range from 18 to 140 ppm. In addition, urine samples
were collected from 10 men in a clerical section who were not
occupationally exposed to any organic solvent and from 8 subjects
(6 men and 2 women) with glycosuria or proteinuria.
Urine collection and HPLC determination of urine for toluene
Acetonitrile (1 ml/bottle) was taken into 2.2-ml glass bottles for
HPLC determination (nominal capacity 1.5 ml; JASCO, Kyoto,
Japan). Immediately after urine had been sampled in a toluene-free
room, 1 ml of the urine sample was added to each bottle, and the
bottle was sealed tightly with a Te¯on septum and a plastic screw
cap. The bottle was stored at 4 °C until toluene determination.
Immediately before the determination, 100 ll methanol was added
to the bottle. The bottle was tightly closed and spun at 1600 g for
10 min to settle any suspended matter to the bottom. An aliquot
(35±70 ll) of the supernatant phase was introduced into the HPLC
system by means of automated sampling as described below.
When necessary it is also possible to add methanol to the acetonitrile
prior to urine addition in such a way that 1 ml urine is added
to 1.1 ml acetonitrile ± methanol (10:1, v/v) mixture. An additional
experiment showed that such a modi®ed procedure did not induce
any change in the effects of methanol and, therefore, in the analytical
results obtained with glycosuric samples as described in Results.
The HPLC system used consisted of a Shimadzu Model LC-10A
chromatograph connected to an automated liquid sampler (Shimadzu
81L-10AXL, Kyoto, Japan), a degasser (Shimadzu DGU2-
14A), a spectrophotometer (Shimadzu UV-VIS Detector Model
SPD-10A), a temperature controller for the detector (Shimadzu),
and a data processor (Shimadzu Chromato-processor Model
C-R7A Plus). The column (250 mm in length and 4.6 mm in diameter)
was packed with PRODIGY 5l ODS(3) 100A (Phenomenex,
Vas Torrance, Calif., USA) and was kept at 60 °C. A mixture
of acetonitrile (350 ml):60% perchloric acid (1 ml):phosphoric acid
(50 ll):deionized water (to a total volume of 1 l) was introduced
after thorough degassing (by ultrasonication) to the system as the
mobile phase. The mobile phase was allowed to ¯ow at 2.0 ml/min,
and the effluent was monitored at 191 nm. Care was taken to
achieve complete removal of foams from the ¯ow system. Each
determination was terminated within 30 min. A typical chromatogram
of urinalysis is shown in Fig. 1 in comparison with that of
standard toluene.
In some instances the toluene concentration in urine was adjusted
for creatinine concentration (Jackson 1966) or for a specific
gravity of urine of 1.016 (Rainsford and Lloyd Davies 1965).
Creatinine concentration and specific gravity were measured by
colorimetry and refractometry, respectively.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

Subjects and methodsSubjects and toluene exposureEnd-of-shift urine samples were collected from 13 male workersoccupationally exposed to toluene in a printing workshop. Theshift lasted from 9:00 a.m. until 5:00 p.m., including a 1-h lunchbreak at noon. Time-weighted average (TWA) toluene exposureconcentrations in breathing-zone air were monitored by di€usivesampling using carbon cloth K-1500 (Toyobo, Osaka, Japan) as theadsorbent (Hirayama and Ikeda 1979; Ikeda et al. 1984; Kasaharaand Ikeda 1987). The TWA exposure concentrations were distributedin a wide range from 18 to 140 ppm. In addition, urine sampleswere collected from 10 men in a clerical section who were notoccupationally exposed to any organic solvent and from 8 subjects(6 men and 2 women) with glycosuria or proteinuria.Urine collection and HPLC determination of urine for tolueneAcetonitrile (1 ml/bottle) was taken into 2.2-ml glass bottles forHPLC determination (nominal capacity 1.5 ml; JASCO, Kyoto,Japan). Immediately after urine had been sampled in a toluene-freeroom, 1 ml of the urine sample was added to each bottle, and thebottle was sealed tightly with a Te¯on septum and a plastic screwcap. The bottle was stored at 4 °C until toluene determination.Immediately before the determination, 100 ll methanol was addedto the bottle. The bottle was tightly closed and spun at 1600 g for10 min to settle any suspended matter to the bottom. An aliquot(35±70 ll) ของเฟส supernatant ถูกนำเข้าสู่การ HPLCระบบโดยใช้วิธีการสุ่มตัวอย่างแบบอัตโนมัติอธิบายไว้ด้านล่างเมื่อจำเป็น ก็ยังสามารถเพิ่มเมทานอล acetonitrileก่อนนี้ปัสสาวะในลักษณะ เพิ่มที่ปัสสาวะ 1 มิลลิลิตรการ 1.1 มิลลิลิตร acetonitrile ±เมทานอล (10:1, v/v) ส่วนผสม เพิ่มเติมทดลองพบว่า modi ® ed ตอนไม่ได้ก่อให้เกิดการเปลี่ยนแปลงใด ๆ ในผลกระทบของเมทานอล และ จึง ในการวิเคราะห์ทางผลลัพธ์ที่ได้กับตัวอย่าง glycosuric ตามที่อธิบายไว้ในผลลัพธ์ระบบ HPLC ที่ใช้ประกอบด้วยแบบ Shimadzu รุ่น LC-10Aเชื่อมต่อกับการ sampler ของเหลวแบบอัตโนมัติ (Shimadzu chromatograph81 L-10AXL เกียวโต ญี่ปุ่น), degasser (Shimadzu DGU2 -14A), เครื่องทดสอบกรดด่าง (Shimadzu ยูวีวิจับแบบจำลองSPD-10A), ตัวควบคุมอุณหภูมิสำหรับเครื่องตรวจจับ (Shimadzu),และประมวลผลข้อมูล (Shimadzu Chromato-ตัวประมวลผลแบบจำลองC-R7A Plus) คอลัมน์ (250 มม. และ ความ ยาวเส้นผ่าศูนย์กลาง 4.6 mm)ถูกบรรจุ ด้วยโพรดิจี 5l ODS(3) 100A (PhenomenexVas รันซ์ รัฐแคลิฟอร์เนีย สหรัฐอเมริกา) และถูกเก็บไว้ที่ 60 องศาเซลเซียส การผสมผสานระหว่างของ acetonitrile (350 มล.): 60% perchloric กรด (1 ml): กรดฟอสฟอริก(50 จะ): น้ำ deionized (กับปริมาณรวมของ 1 l) ถูกนำมาใช้หลังอย่าง degassing (โดย ultrasonication) ในระบบเป็นการระยะเคลื่อน เฟสเคลื่อนที่ได้รับอนุญาตให้ ¯ow ที่ 2.0 ml/minและมีการตรวจสอบน้ำที่ 191 nm ดูแลถูกนำไปให้เอาโฟมจากระบบ ¯ow สมบูรณ์ แต่ละกำหนดถูกยกเลิกภายใน 30 นาที Chromatogram ทั่วไปของ urinalysis จะแสดงใน Fig. 1 เมื่อเปรียบเทียบกับของโทลูอีนมาตรฐานในบางกรณี ความเข้มข้นของโทลูอีนในปัสสาวะถูกปรับปรุงสำหรับความเข้มข้นของ creatinine (Jackson 1966) หรือเฉพาะแรงโน้มถ่วงของปัสสาวะของ 1.016 (Rainsford และลอยด์เดวีส์ 1965)ความเข้มข้นของ creatinine และถ่วงถูกวัดโดยcolorimetry และ refractometry ตามลำดับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วิชาและวิธีการวิชาและโทลูอีนการสัมผัสจุดสิ้นสุดของการเปลี่ยนแปลงตัวอย่างปัสสาวะที่ถูกเก็บรวบรวมจาก13 คนงานชายสัมผัสอาชีพที่จะโทลูอีนในการประชุมเชิงปฏิบัติการการพิมพ์ เปลี่ยนแปลงตั้งแต่ 09:00 จนถึง 05:00 รวมถึง 1 ชั่วโมงกลางวันพักเที่ยง เวลาถัวเฉลี่ยถ่วงน้ำหนัก (TWA) การสัมผัสโทลูอีนมีความเข้มข้นในอากาศหายใจโซนได้รับการตรวจสอบโดยดิ?? usive การสุ่มตัวอย่างโดยใช้ผ้าคาร์บอน K-1500 (Toyobo โอซาก้าประเทศญี่ปุ่น) เป็นตัวดูดซับ(ฮิรายามะและอิเคดะ 1979. อิเคดะ et al, 1984 ; Kasahara และอิเคดะ 1987) ความเข้มข้นของการเปิดรับดับเบิ้ลกระจายในช่วงกว้าง 18-140 ppm นอกจากนี้ตัวอย่างปัสสาวะที่ถูกเก็บรวบรวมจาก 10 คนในส่วนที่เกี่ยวกับพระที่ไม่ได้สัมผัสอาชีพให้กับตัวทำละลายอินทรีย์และจาก8 วิชา(6 ชายและ 2 หญิง) กับ glycosuria หรือโปรตีน. คอลเลกชันปัสสาวะและความมุ่งมั่น HPLC ของปัสสาวะสำหรับโทลูอีนAcetonitrile ( 1 มล. / ขวด) ถูกนำตัวเข้าขวดแก้ว 2.2 มล. สำหรับความมุ่งมั่นHPLC (ความจุที่ระบุ 1.5 มล.; JASCO เกียวโตญี่ปุ่น) ทันทีหลังจากที่ได้รับการปัสสาวะตัวอย่างในโทลูอีนฟรีห้องพัก 1 มิลลิลิตรของตัวอย่างปัสสาวะถูกบันทึกอยู่ในแต่ละขวดและขวดถูกปิดผนึกแน่นกับเยื่อบุโพรงTe¯onและสกรูพลาสติกฝา ขวดเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสจนความมุ่งมั่นโทลูอีน. ทันทีก่อนที่จะมุ่งมั่น 100 เมทานอล ll จะถูกบันทึกไปขวด ขวดเป็นแน่นสนิทและหมุนตัวที่ 1600 กรัม10 นาทีที่จะชำระเรื่องใด ๆ ที่ถูกระงับไปที่ด้านล่าง หาร(35 ± 70 LL) เฟสใสถูกนำเข้าสู่ HPLC ได้ระบบโดยใช้วิธีการสุ่มตัวอย่างแบบอัตโนมัติตามที่อธิบายไว้ด้านล่าง. เมื่อมีความจำเป็นก็ยังเป็นไปได้ที่จะเพิ่มเมทานอลไปยัง acetonitrile ก่อนนอกจากปัสสาวะในลักษณะที่ 1 มล ปัสสาวะจะถูกเพิ่ม1.1 มล. acetonitrile ±เมทานอล (10: 1, v / v) ส่วนผสม เพิ่มเติมการทดลองแสดงให้เห็นว่าขั้นตอนดังกล่าวmodi®edไม่ได้ก่อให้เกิดการเปลี่ยนแปลงใดๆ ในผลกระทบของเมทานอลและดังนั้นในการวิเคราะห์ผลที่ได้กับตัวอย่างglycosuric ตามที่อธิบายไว้ในผลลัพธ์. ระบบ HPLC เพื่อใช้ประกอบไปด้วย Shimadzu รุ่น LC-10A chromatograph เชื่อมต่อกับตัวอย่างของเหลวอัตโนมัติ (Shimadzu 81L-10AXL เกียวโตประเทศญี่ปุ่น) ซึ่งเป็น degasser (Shimadzu DGU2- 14A) ซึ่งเป็น spectrophotometer (Shimadzu UV-VIS ตรวจจับรุ่นSPD-10A) เป็นตัวควบคุมอุณหภูมิเครื่องตรวจจับ (Shimadzu) , และประมวลผลข้อมูล (Shimadzu Chromato โปรเซสเซอร์รุ่นC-R7A พลัส) คอลัมน์ (250 มิลลิเมตรและมีความยาว 4.6 มม) อัดแน่นไปด้วย PRODIGY ODS 5l (3) 100A (Phenomenex, Vas Torrance, Calif. USA) และได้รับการเก็บรักษาไว้ที่ 60 องศาเซลเซียส ส่วนผสมของ acetonitrile (350 มล.): 60% กรดเปอร์คลอริก (1 ml): กรดฟอสฟอรัส (50 LL): น้ำปราศจากไอออน (ปริมาณทั้งหมด 1 ลิตร) เป็นที่รู้จักหลังจากdegassing อย่างละเอียด (โดย ultrasonication) เพื่อระบบที่เฟสเคลื่อนที่ เฟสเคลื่อนที่ได้รับอนุญาตให้ OW ที่ 2.0 มล. / นาทีและน้ำทิ้งคือการตรวจสอบที่191 นาโนเมตร การดูแลถูกนำตัวไปให้บรรลุการกำจัดที่สมบูรณ์ของโฟมจากระบบโอ๊ย แต่ละคนมุ่งมั่นที่ถูกยกเลิกภายใน 30 นาที chromatogram ปกติของปัสสาวะแสดงในรูป 1 ในการเปรียบเทียบกับที่ของโทลูอีนมาตรฐาน. ในบางกรณีความเข้มข้นของโทลูอีนในปัสสาวะมีการปรับความเข้มข้น creatinine (แจ็คสัน 1966) หรือเฉพาะแรงโน้มถ่วงของปัสสาวะของ1.016 (Rainsford และลอยด์เดวีส์ 1965). ความเข้มข้น Creatinine และแรงโน้มถ่วงที่เฉพาะเจาะจงวัด โดยcolorimetry และ refractometry ตามลำดับ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิชา และวิชาการและวิธี

จบโทจากการเก็บตัวอย่างปัสสาวะกะ 13 คนงานชาย
ไม่ได้สัมผัสต่อโทลูอีนในการพิมพ์เวิร์กช็อป
กะ lasted จากเก้าโมงเช้า จนถึง 5 โมงเย็น รวมทั้ง 1-h เที่ยง
พักตอนเที่ยง เวลาเฉลี่ยถ่วงน้ำหนัก ( TWA ) โทแสงความเข้มข้นในโซนอากาศหายใจ

€ usive มอเตอร์ ดิตัวอย่างการใช้ k-1500 ผ้าคาร์บอน ( toyobo , โอซาก้า , ญี่ปุ่น )
) และ ( ฮิรายามะเคดะ 1979 ; Ikeda et al . 1984 ;
แต่คาซาฮาระ และ 1987 ) โดยการกระจาย
TWA ความเข้มข้นในช่วงกว้างตั้งแต่ 18 ถึง 140 ส่วนในล้านส่วน นอกจากนี้ จากการเก็บตัวอย่างปัสสาวะ
10 คน ในส่วนที่เป็นสมณะไม่ได้สัมผัสกับตัวทำละลายอินทรีย์ใด ๆ

และ จาก 8 คน( ชาย 6 คนและหญิง 2 ) ด้วยการส่งเสียงอึกทึก หรือมีปัสสาวะ .
คอลเลกชันและ HPLC การวิเคราะห์ปัสสาวะ โทลูอีน
ไน ( 1 มิลลิลิตร / ขวด ) ถูก 2.2-ml ขวดแก้วสำหรับ
HPLC ( ชื่อความจุ 1.5 มิลลิลิตร ปริมาณ ;
jasco , เกียวโต , ญี่ปุ่น ) ทันทีหลังจากได้รับตัวอย่างปัสสาวะในโทลูอีนฟรี
ห้อง 1 มิลลิลิตร ตัวอย่างปัสสาวะที่ถูกเพิ่มเข้าไปในแต่ละขวดและ
ขวดถูกผนึกแน่นด้วยเท ¯บนผนังและฝาเกลียว
พลาสติก ขวดที่ถูกเก็บไว้ที่ 4 ° C ถึงเวลากำหนด .
ทันทีก่อนกําหนด , 100 จะเมทานอลเพิ่ม
ที่ขวด ขวดที่ปิดสนิทและปั่นที่ 1600 กรัม
10 นาทีที่จะจ่ายใด ๆ สารแขวนลอยไปด้านล่าง เป็นส่วนลงตัว
( 35 ± 70 จะ ) ระยะสูงที่ใช้เป็น HPLC
ระบบโดยอัตโนมัติตัวอย่างตามที่อธิบายไว้ด้านล่าง .
เมื่อจำเป็น มันยังเป็นไปได้ที่จะเพิ่มไปทดสอบไน
ก่อนนอกจากนี้ปัสสาวะในวิธีที่ 1 ml ปัสสาวะเพิ่ม
1.1 มิลลิลิตรไน±เมทานอล ( 10 : 1 v / v ) ส่วนผสม การทดลองเพิ่มเติมพบว่า ® Modi
เช่นเอ็ดขั้นตอนไม่ได้จูง
การเปลี่ยนแปลงใด ๆในผลของเมทานอลและดังนั้นในการวิเคราะห์