IntroductionGray mold disease cause

Introduction
Gray mold disease caused by Botrytis cinerea is considered an important pathogen around the world. It induces decay on a large number of economically important fruit and vegetables during the growing season and during postharvest storage. It is also a major obstacle to long distance transport and storage ( Sommer et al., 1992). This fungal pathogen infects leaves, stems, flowers and fruit, either by direct penetration or through wounds caused by cultivation practices ( McKeen, 1974 and O’Neill et al., 1997).
Control of this disease is especially important during storage because it develops at low temperatures (e.g. −0.5 °C) and spreads quickly among fruit and vegetables (Karabulut et al., 2004). On the other hand, losses can be ameliorated by fungicide treatments which can ensure product protection, but these are permitted for only a few food crop species (Rosslenbroich and Stuebler, 2000). Moreover, public awareness of the negative impact of synthetic fungicide residues on human health and environment has prompted deregulation of key chemical fungicides (Carson, 1962 and Houeto et al., 1995). In addition to this latter issue is the appearance of pathogens resistant to the synthetic fungicides (Spotts and Cervantes, 1986). Hence there is growing emphasis on environmentally friendly technologies in the fresh fruit and vegetables industry, and the search for safer alternatives to chemical fungicides has received much attention (Arul, 1994, El Ghaouth and Wilson, 1995, Ben-Yeohshua and Mercier, 2005 and Meng et al., 2008).
At present, increasing interest is being devoted to the use of natural substances such as bioactive chitosan polymers. Chitosan is a linear amino polysaccharide of glucosamine and N-acetylglucosamine units and is obtained by alkaline deacetylation of chitin extracted from the exoskeleton of crustaceans such as shrimps and crabs, as well from the cell walls of some fungi ( No and Meyers, 1997). Chitosan has become a promising alternative treatment for fruit and vegetables due to its natural character, antimicrobial activity, and elicitation of defense responses in plant tissue ( Terry and Joyce, 2004 and Fisk et al., 2008). Indeed, chitosan is an ideal preservative coating for fresh fruit and vegetables because of its film-forming and biochemical properties ( Muzzarelli, 1986) and has led to prolonged storage life and controlled decay of several fruit crops (Romanazzi et al., 2002).
Recent studies have indicated that preharvest sprays of chitosan on strawberry plants reduced gray mold during fruit storage (Reddy et al., 2000). Coating of citrus fruit with chitosan was effective in controlling fruit decay caused by Penicillium digitatum Sacc. and Penicillium expansum Link ( Chien et al., 2007). Gray mold and blue mold rots caused by B. cinerea and P. expansum, respectively, in sweet cherry fruit were reduced by preharvest spraying or postharvest dipping of chitosan ( Romanazzi et al., 2003).
After treatment with chitosan, various defense responses have been induced, including the elicitation of phenylalanine ammonia lyase (PAL) activity in grape berries (Romanazzi et al., 2002 and Meng et al., 2008), and chitinase and β-1,3-glucanase in oranges, strawberries and raspberries (Fajardo et al., 1998 and Zhang and Quantick, 1998). However, there are few reports on induction of resistance by chitosan, or on its inhibitory effects against fungal pathogens in tomato fruit during storage (Liu et al., 2007).
Therefore, the objectives of this study were to investigate the effects of different molecular weight chitosans (0.5 × 104, 3.7 × 104, 5.7 × 104 and 2.9 × 105 g/mol) to control gray mold caused by B. cinerea in tomato fruit stored at different temperatures. In addition, the elicitation of defense markers including total soluble phenolic compounds, PPO activity and total protein by chitosan treatments in fruit was investigated.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แนะนำแม่สีเทาโรค Botrytis cinerea ถือว่าการศึกษาสำคัญทั่วโลก มันแท้จริงผุในผักและผลไม้ที่สำคัญทางเศรษฐกิจเป็นจำนวนมาก ในช่วงฤดูการเจริญเติบโต และ ระหว่างการเก็บรักษาหลังการเก็บเกี่ยว นอกจากนี้ยังเป็นอุปสรรคสำคัญในการขนส่งไกลและเก็บ (ฤดู et al., 1992) การศึกษาเชื้อรานี้ติดใบ ลำต้น ดอกไม้ และ ผลไม้ โดยเจาะโดยตรง หรือผ่าน ทางบาดแผลที่เกิดจากวิธีการเพาะปลูก (McKeen, 1974 และโอนีลและ al., 1997)ควบคุมโรคนี้มีความสำคัญอย่างยิ่งระหว่างการเก็บรักษาเนื่องจากพัฒนาที่อุณหภูมิต่ำ (เช่น −0.5 ° C) และแพร่กระจายอย่างรวดเร็วระหว่างผลไม้และผัก (Karabulut et al., 2004) ในทางกลับกัน ขาดทุนที่สามารถ ameliorated โดยรักษาเชื้อราซึ่งสามารถทำให้ผลิตภัณฑ์ป้องกัน แต่เหล่านี้จะได้รับอนุญาตสำหรับเฉพาะกี่อาหารพืชชนิด (Rosslenbroich และ Stuebler, 2000) ยิ่งไปกว่านั้น ความตระหนักของผลกระทบเชิงลบของการตกค้างของสารเคมีสังเคราะห์ในสุขภาพมนุษย์และสิ่งแวดล้อมสาธารณะได้ให้เสรีของคีย์เคมีซึ่งเกิดจากเชื้อ (คาร์สัน 1962 และ Houeto และ al., 1995) นอกจากปัญหาหลังนี้เป็นลักษณะของโรคทนต่อการสังเคราะห์ซึ่งเกิดจากเชื้อ (Spotts และแซร์วองต์ 1986) ดังนั้น มีเทคโนโลยีที่เป็นมิตรต่อสิ่งแวดล้อมในอุตสาหกรรมผักและผลไม้สดเน้นการเติบโต และการค้นหาปลอดภัยแทนสารเคมีซึ่งเกิดจากเชื้อได้รับความสนใจมาก (Arul, 1994, Ghaouth เอล และ Wilson, 1995, Yeohshua เบน และ Mercier, 2005 และ Meng et al., 2008)เป็นการทุ่มเทที่ดอกเบี้ยเพิ่มขึ้น มีการใช้สารจากธรรมชาติเช่นโพลิเมอร์ของไคโตซานกรรมการก ไคโตซานเป็น polysaccharide อะมิโนเส้นของ glucosamine และ N acetylglucosamine หน่วย และโดย deacetylation ด่างของ chitin สกัดจากโครงกระดูกภายนอกของครัสเตเชียเช่นกุ้งและปู เช่นจากผนังเซลล์ของเชื้อราบางอย่าง (No และ Meyers, 1997) ไคโตซานได้กลายเป็น สัญญาอื่นรักษาผลไม้และผักจากธรรมชาติอักขระ กิจกรรมจุลินทรีย์ ความ elicitation ป้องกันการตอบสนองในเนื้อเยื่อพืช (เทอร์รี่ และ จอยซ์ 2004 และ Fisk et al., 2008) แน่นอน ไคโตซานจะเคลือบเป็น preservative เหมาะสำหรับผักและผลไม้สด มีคุณสมบัติการขึ้น รูปฟิล์ม และชีวเคมี (Muzzarelli, 1986) และได้นำชีวิตเก็บนานและผุควบคุมของพืชผลไม้หลาย (Romanazzi et al., 2002)การศึกษาล่าสุดได้ระบุว่า สเปรย์ preharvest ของไคโตซานในพืชสตรอเบอร์รี่แม่สีเทาที่ลดลงระหว่างการเก็บรักษาผลไม้ (Reddy et al., 2000) เคลือบผลไม้ส้มกับไคโตซานมีประสิทธิภาพในการควบคุมเกิดจาก Penicillium digitatum Sacc ผุผลไม้ และ Penicillium expansum ลิงค์ (เจียน et al., 2007) สีเทาแม่พิมพ์และแม่พิมพ์บลู rots สาเหตุเกิด cinerea และ P. expansum ตามลำดับ ในผลไม้เชอร์รี่ถูกลดลง โดย preharvest พ่นหรือจุ่มหลังการเก็บเกี่ยวของไคโตซาน (Romanazzi et al., 2003)หลังจากรักษาด้วยไคโตซาน ตอบสนองการป้องกันต่าง ๆ มีการเกิด รวม elicitation phenylalanine แอมโมเนีย lyase (PAL) กิจกรรมในองุ่นครบ (Romanazzi et al., 2002 และ Meng et al., 2008), และ chitinase และβ-1,3-คัดส้ม สตรอเบอร์รี่ และราสเบอร์รี่ (ฟาจาร์โด้และ al., 1998 และจาง และ Quantick, 1998) อย่างไรก็ตาม ได้รายงานที่ไม่เหนี่ยวนำต้านโดยไคโตซาน หรือลิปกลอสไขผลกระทบกับโรคเชื้อราในมะเขือเทศผลไม้ระหว่างการเก็บรักษา (หลิว et al., 2007)ดังนั้น วัตถุประสงค์ของการศึกษานี้มีการ ตรวจสอบผลกระทบของ chitosans น้ำหนักโมเลกุลแตกต่างกัน (0.5 × 104, 3.7 × 104, 5.7 × 104 และ 2.9 × 105 กรัม/โมล) สู่แม่พิมพ์ควบคุมสีเทาเกิดจากเกิด cinerea ในมะเขือเทศผลไม้ที่เก็บไว้ในอุณหภูมิที่แตกต่างกัน นอกจากนี้ ถูกสอบสวน elicitation เครื่องหมายป้องกันที่รวมรวมละลายย้อมสิ่งทอม่อฮ่อม กิจกรรม PPO และโปรตีนรวม โดยไคโตซานบำบัดในผลไม้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

บทนำโรคราสีเทาที่เกิดจากการ Botrytis ซีเนเรียถือว่าเป็นเชื้อโรคที่สำคัญทั่วโลก
มันก่อให้เกิดการสลายตัวในจำนวนมากของผลไม้เศรษฐกิจที่สำคัญและผักในช่วงฤดูปลูกและหลังการเก็บเกี่ยวระหว่างการเก็บรักษา นอกจากนี้ยังเป็นอุปสรรคสำคัญต่อการขนส่งทางไกลและการเก็บรักษา (ซอมเมอร์ et al., 1992) นี้เชื้อโรคเชื้อราติดเชื้อใบลำต้นดอกและผลไม้ไม่ว่าจะโดยการเจาะโดยตรงหรือผ่านทางบาดแผลที่เกิดจากการปฏิบัติที่เพาะปลูก (McKeen, ปี 1974 และโอนีล et al., 1997).
การควบคุมของโรคนี้เป็นสิ่งสำคัญโดยเฉพาะอย่างยิ่งระหว่างการเก็บรักษาเพราะมันพัฒนา ที่อุณหภูมิต่ำ (เช่น -0.5 ° C) และแพร่กระจายอย่างรวดเร็วในหมู่ผักและผลไม้ (karabulut et al., 2004) ในทางกลับกันการสูญเสียสามารถปรับตัวดีขึ้นจากการรักษาเชื้อราที่สามารถให้การป้องกันสินค้า แต่เหล่านี้จะได้รับอนุญาตเพียงสายพันธุ์พืชอาหารไม่กี่ (Rosslenbroich และ Stuebler, 2000) นอกจากนี้ประชาชนได้ตระหนักถึงผลกระทบของสารตกค้างสารเคมีสังเคราะห์ที่มีต่อสุขภาพของมนุษย์และสิ่งแวดล้อมได้รับแจ้งกฎระเบียบของสารฆ่าเชื้อราสารเคมีที่สำคัญ (คาร์สัน, ปี ค.ศ. 1962 และ Houeto et al., 1995) นอกจากนี้ปัญหาหลังเป็นลักษณะของโรคที่ดื้อต่อสารฆ่าเชื้อราไปสังเคราะห์ (Spotts และ Cervantes, 1986) จึงมีการเจริญเติบโตความสำคัญกับเทคโนโลยีที่เป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อมในผลไม้สดและอุตสาหกรรมผักและค้นหาทางเลือกที่ปลอดภัยในการฆ่าเชื้อราสารเคมีที่ได้รับความสนใจมาก (Arul 1994 เอ Ghaouth และวิลสัน, ปี 1995 เบน Yeohshua และ Mercier, ปี 2005 และ เม้ง et al., 2008).
ในปัจจุบันดอกเบี้ยที่เพิ่มขึ้นจะถูกอุทิศให้กับการใช้สารธรรมชาติเช่นโพลีเมอไคโตซานมีฤทธิ์ทางชีวภาพ ไคโตซานเป็น polysaccharide เชิงเส้นของอะมิโน glucosamine และ N-acetylglucosamine หน่วยและจะได้รับโดยอัลคาไลน์สิกของไคตินที่สกัดจากรพกุ้งเช่นกุ้งและปูได้เป็นอย่างดีจากผนังเซลล์ของเชื้อราบาง (ไม่และเมเยอร์ส, 1997) ไคโตซานได้กลายเป็นทางเลือกการรักษาที่มีแนวโน้มสำหรับผักและผลไม้อันเนื่องมาจากตัวอักษรตามธรรมชาติของมันฤทธิ์ต้านจุลชีพและการสอบถามของการตอบสนองการป้องกันในเนื้อเยื่อพืช (เทอร์รี่และจอยซ์ปี 2004 และฟิสก์ et al., 2008) อันที่จริงไคโตซานเป็นสารกันบูดสารเคลือบผิวที่เหมาะสำหรับผลไม้และผักสดเพราะการขึ้นรูปฟิล์มและคุณสมบัติทางชีวเคมีของ (Muzzarelli, 1986) และได้นำไปสู่การจัดเก็บข้อมูลเป็นเวลานานชีวิตและการเสื่อมสลายควบคุมพืชผลไม้หลายคน (Romanazzi et al., 2002)
การศึกษาล่าสุดได้แสดงให้เห็นว่าสเปรย์ preharvest ของไคโตซานในพืชสตรอเบอร์รี่ราสีเทาลดลงระหว่างการเก็บรักษาผลไม้ (เรดดี้ et al., 2000) การเคลือบผิวของผลไม้ส้มกับไคโตซานที่มีประสิทธิภาพในการควบคุมการสลายตัวของผลไม้ที่เกิดจาก Penicillium digitatum Sacc และ Penicillium expansum การเชื่อมโยง (Chien et al., 2007) ราสีเทาและสีฟ้าเน่าเชื้อราที่เกิดจากซีเนเรียบีพี expansum ตามลำดับในผลไม้เชอร์รี่หวานลดลงโดยการฉีดพ่นหรือจุ่ม preharvest หลังการเก็บเกี่ยวของไคโตซาน (Romanazzi et al., 2003).
หลังจากการรักษาด้วยไคโตซานการตอบสนองการป้องกันต่างๆมี รับการเหนี่ยวนำรวมทั้งการสอบถามของแอมโมเนีย phenylalanine ไอเลสนี้ (PAL) กิจกรรมในผลเบอร์รี่องุ่น (Romanazzi et al., 2002 และเม้ง et al., 2008) และไคติเนสและβ-1,3-glucanase ในส้ม, สตรอเบอร์รี่และราสเบอร์รี่ ( Fajardo et al., 1998 และจางและ Quantick, 1998) อย่างไรก็ตามมีรายงานน้อยในการเหนี่ยวนำของความต้านทานจากไคโตซานหรือเกี่ยวกับผลกระทบยับยั้งต่อต้านเชื้อโรคเชื้อราในผลมะเขือเทศระหว่างการเก็บรักษา (Liu et al., 2007).
ดังนั้นวัตถุประสงค์ของการศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาผลของโมเลกุลที่แตกต่างกัน น้ำหนักไคโตซาน (0.5 × 104, 104 × 3.7, 5.7 × 104 และ 105 × 2.9 g / mol) เพื่อควบคุมราสีเทาที่เกิดจากบีซีเนเรียในผลมะเขือเทศที่เก็บไว้ในอุณหภูมิที่แตกต่างกัน นอกจากนี้ยังมีการสอบถามของเครื่องหมายการป้องกันรวมทั้งสารประกอบฟีนอที่ละลายน้ำได้รวมกิจกรรม PPO และโปรตีนโดยรวมการรักษาไคโตซานในผลไม้ที่ถูกตรวจสอบ