January, July, and October of 1983 and January of 1984, and total
aflatoxins were measured using HPLC. Twenty-two percent of the
268 samples had greater than 20 mg/kg aflatoxin.
A primary motivation for examining aflatoxin in the food supply
of a resource-limited country is to explore feasible processes that
will attenuate contamination to acceptable levels. Removal of
contaminated kernels by visual, tactile and density segregation are
examples of effective physical separation and are feasible among
Haitian food processors (Filbert & Brown, 2012). In places where
poverty is pervasive, however, the subsequent challenge after
separating contaminated kernels is that they will be discarded by
the processor but obtained in local, unregulated markets and
construed as edible among food insecure individuals (Matumba,
Van Poucke, Monjerezi, Njumbe Ediage, & De Saeger, 2015). Pursuant
to minimizing aflatoxin exposure among the poorest of
consumers, it is essential to prevent highly contaminated kernels
from reentering food chains, and decontamination of such kernels
should complement sorting practices. Many chemical decontamination
processes exist and are reviewed extensively by Leibetseder
(2006), including treatments to lessen the potency of the aflatoxin
molecule and solvent extraction techniques. Chemical treatment
with ammonia (Weng, Martinez, & Park,1994) and oxidizing agents
such as ozone (Luo, Wang, Wang, Li, Bian, et al., 2014; Luo, Wang,
Wang, Li, Wang, et al., 2014), for instance, have been shown to
reduce aflatoxin concentration to 1e36% and 11e13% original
levels, respectively, depending on treatment parameters. Also
effective is solvent extraction using aqueous ethanol, which reduces
aflatoxins to 2e7% original levels in cottonseed and peanut
meals (Rayner, Dollear, & Codifer, 1970). Ammoniation, ozone
treatment, and ethanol extraction are not equally feasible in lesserdeveloped
countries. Anhydrous ammonia and ozone, for instance,
are often not readily available in lesser-developed countries such as
Haiti. Furthermore, residual ammonium following ammonia
treatment is not permissible in human food, and ozone hastens
lipid peroxidation in oil seeds. Imported ethanol and locally produced
ethanol, however, are available in Haiti, the latter being less
costly and more economically accessible to small-scale peanut
processors.
Given that Filbert and Castor et al. reported their results in 2012
and 1987, respectively, the primary purpose of our study was to
monitor more recent aflatoxin contamination of Haitian peanuts
and locally produced maize during 2012 and 2013. As a corollary,
we sought to identify a safe, value-added product made from
formerly aflatoxin-contaminated peanuts, and we considered production
of edible oil as potentially suitable to Haitian food processors.
Therefore our secondary purpose was to determine
aflatoxin carryover from contaminated kernels to un-refined,
edible oil and the efficacy of extraction, comparing both
laboratory-grade ethanol and a locally procured Haitian spirit, on
the residual aflatoxin concentrations found in such oil. This comparison
was made because extraction using a local ethanol would
be more feasible among small-scale food processors, who produce
the majority of peanut butter sold in Haiti.
2. Materials & methods
2.1. Food samples
Samples were collected during three periods. During July of
2012, 14 peanut butters and 21 peanut samples were obtained from
open-air markets in Port-au-Prince and Cap Haitien. In December
10 maize samples of approximately 1.0 kg each were obtained from
the Telele, Croix du Bouquets, and Croix du Bosales markets in Portau-
Prince. The third period was September through December of
2013, during which 21 peanut butters were purchased around Cap
Haitien, and 20 maize samples were obtained at four farmer association
depots and three mills in the Nord Department.1 At depots,
where farmers sort and grade the maize as fit for human
consumption or animal feed, representative samples were taken
and kept separate based on classifications described by farmers
onsite. Whole, sound ears of corn were generally directed to the
mill, while those with visible rot and free kernels on the ground
were directed to animal feed. At mills, a sampling probewas used to
obtain kernels from the bottom, middle, and upper parts of storage
sacks weighing 50e100 kg. Milled maize was sampled where
available and included grain for maize porridge (“mayi moulen”),
fine maize flour (“mayi farin”), and bran destined for animal feed
(“mayi pay”). Of the 20 maize samples collected,11 were directed to
human consumption but not yet milled, 5 were directed to human
consumption and milled, and 4 were directed to livestock feed and
included milled and non-milled maize. Each sample weighed
1.5e2.0 kg and was taken from a 50e150 kg storage sack. Moisture
for whole grain samples was measured the day of collection.
Samples were stored at 30 C until milling with a hammer-mill.
2.2. Determination of aflatoxin with immuno-affinity column
chromatography and fluorometric detection
Aflatoxin was measured using the VICAM Aflatest system
(Journal AOAC, 17th edition, 2000, 972.26). Each peanut butter was
emptied from its original jar and mixed thoroughly with a spatula
before sub-samples (25 g) were taken for analysis. Peanut samples
were ground with a small food processor prior to sub-sampling.
Maize samples included whole cobs (10e15) and free kernels
(1.5e2.0 kg) obtained from farmers and mill depots. Kernels from
whole cobs were removed by hand, and each samplewas ground in
a hammer mill with a 4.0 mm screen. Sub-samples (50 g) were
taken for analysis. Aflatoxin was extracted from samples (60% or
80% methanol for peanut or maize samples, respectively) using a
blender at high speed for 1 min. Extract was filtered with fluted
filter paper (VICAM) into a glass beaker and diluted with de-ionized
water (1:2 and 1:5 dilutions for peanut-products and maize,
respectively), followed by filtration with a glass microfiber filter.
Dilute filtrates for peanut (10 ml or 1.0 g sample equivalent) and
maize (2 ml or 0.2 g equivalent) were passed through an immuneaffinity
column. For samples outside the range of detection
(0e100 mg/kg and 0e300 mg/kg for peanut and maize products,
respectively) filtrate was further diluted 1:5 (10 ml dilute filtrate
and 40 ml de-ionized water) or 1:10 (5 ml dilute filtrate and 45 ml
de-ionized water). The column was washed with de-ionized water
twice and eluted into a borosilicate culture tube with 1.0 ml of
HPLC-grade methanol. To the eluate was added 1.0 ml of brominated
water, and the sample was vortexed. After 1.0 min, fluorescence
of the sample was read (Excitation: 360 nm, Emission:
440 nm). Maize reference samples with no detectable aflatoxins,
50.8, 9.6, 5.9, and 1.7 mg/kg were obtained (Trilogy Labs, Washington,
Missouri), and peanuts butters with no detectable aflatoxins
were spiked with 1, 2, 3, 4, 10, 25, and 400 mg/kg. The spiking
standard (Trilogy Labs) contained 5 mg/ml total aflatoxins (2 mg
AFB1, 2 mg AFG1, 0.5 mg AFB2, and 0.5 mg AFG2 per ml acetonitrile).
All reference samples were assayed in triplicate, and the limit of
detection (LOD), limit of quantitation (LOQ), recovery range %, and
relative standard deviation (RSD %) were determined. We set our
LOD to the lowest reference sample whose mean result was
significantly different (Student's t-test, p < 0.05) from that of the
reference without additional aflatoxins and our LOQ to the level
1 Mill operators granted access for sampling on the condition that the locations
remain anonymou
มกราคม กรกฎาคม และตุลาคม ปี ค.ศ. 1983 และมกราคมของปี 1984 และอะฟลาทอกซินรวม
ถูกวัดโดยใช้ HPLC . ยี่สิบสองเปอร์เซ็นต์ของ
268 ตัวอย่างมีมากกว่า 20 มิลลิกรัม / กิโลกรัมอะฟลาทอกซิน .
แรงจูงใจหลักสำหรับการตรวจสอบอะฟลาทอกซินในอาหาร
ของทรัพยากร จำกัด ประเทศเพื่อศึกษากระบวนการเป็นไปได้ที่จะลดการปนเปื้อน
ระดับที่ยอมรับได้ การกำจัด
ปนเปื้อนในเมล็ด โดยภาพ สัมผัสและแยกความหนาแน่นเป็น
ตัวอย่างแยกทางกายภาพที่มีประสิทธิภาพและเป็นไปได้ของโปรเซสเซอร์อาหาร
เฮติ ( ฟิลเบิร์ท&สีน้ำตาล , 2012 ) ในสถานที่ที่
ความยากจนแพร่หลาย อย่างไรก็ตาม ต่อมาความท้าทายหลังจากที่
แยกเมล็ดที่ปนเปื้อนจะถูกยกเลิกโดย
ประมวลผลได้ในตลาดท้องถิ่นและระเบียบ
ตีความเป็นพืชอาหารที่ไม่ปลอดภัยของบุคคล ( matumba
poucke monjerezi , รถตู้ , , ediage & njumbe , เดอ เซเกอร์ 2015 ) โดยการลดความเสี่ยงของอะ
ที่ยากจนที่สุดของผู้บริโภค จึงเป็นสิ่งจำเป็นเพื่อป้องกันการปนเปื้อนสูงเมล็ด
จาก reentering โซ่อาหาร และสารพิษ เช่น เมล็ด
ควรกว่าการเรียงลำดับการปฏิบัติ
ชำระล้างสารเคมีมากมายกระบวนการที่มีอยู่และจะพิจารณาอย่างกว้างขวาง โดย leibetseder
( 2006 ) รวมทั้งการรักษา เพื่อลดความแรงของอะฟลาทอกซิน
โมเลกุลและเทคนิคการสกัดด้วยตัวทำละลาย . สารเคมี
กับแอมโมเนีย ( เวง , มาร์ติเนซ & Park , 1994 ) และออกซิไดซ์ตัวแทน
เช่นโอโซน ( หลัว วัง วัง ลี เบียน , et al . , 2014 ; Luo , วัง ,
วัง Li Wang et al . , 2010 ) , สำหรับอินสแตนซ์ ได้แสดง
ลดปริมาณความเข้มข้น 1e36 % และ 11e13 % เดิม
ระดับตามลำดับขึ้นอยู่กับพารามิเตอร์ของการรักษา
ที่มีประสิทธิภาพยังเป็นตัวทำละลายในการสกัดโดยใช้สารละลายเอทานอล ซึ่งลด
ซินจะ 2e7 % ระดับเดิมในฝ้ายและอาหารถั่วลิสง
( ถูก dollear , & codifer , 1970 ) ammoniation , โอโซน
รักษา และการสกัดด้วยเอทานอลจะไม่สามารถเป็นไปได้อย่างเท่าเทียมกันใน lesserdeveloped
ประเทศ แอมโมเนียปราศจากน้ำและอากาศ เช่น
มักจะไม่พร้อมใช้งานในประเทศที่พัฒนาน้อยกว่าเช่น
เฮติ นอกจากนี้ แอมโมเนียตกค้างตามแอมโมเนีย
รักษาไม่อนุญาตในอาหารของมนุษย์ และโอโซน hastens
lipid peroxidation ในเมล็ดพืชน้ำมัน นำเข้าเอทานอล และผลิตในประเทศ
เอทานอล อย่างไรก็ตาม มีอยู่ในเฮติ หลังถูกน้อย
ราคาแพง และยิ่งคอรัปชั่นเข้าถึงขนาดเล็กถั่วลิสง
ให้โปรเซสเซอร์ ที่ฟิลเบิร์ทและละหุ่ง et al . รายงานผลของพวกเขาใน 2012
และ 1987 ตามลำดับ วัตถุประสงค์หลักของการศึกษาคือการปนเปื้อนอะฟลาทอกซิน
ล่าสุดของเฮติ ถั่วลิสง และข้าวโพด
ผลิตในประเทศในช่วง 2012 และ 2013 . เป็น corollary
เราขอระบุปลอดภัย เพิ่มมูลค่าผลิตภัณฑ์จาก
เดิมที อะฟลาทอกซินปนเปื้อนถั่ว และเราถือว่าการผลิต
ของน้ํามันพืชอาจเหมาะกับเฮติโปรเซสเซอร์อาหาร .
ดังนั้นรองของเราเพื่อตรวจสอบการปนเปื้อนอะฟลาทอกซินคงไป
เมล็ดเพื่อยกเลิกการกลั่นน้ํามันพืชและประสิทธิภาพของการสกัด , การเปรียบเทียบทั้ง
ปฏิบัติการเกรดเอทานอลและพื้นที่จัดหาเฮติใน
วิญญาณปริมาณอะฟลาทอกซินตกค้างที่พบในน้ำมันเช่น การเปรียบเทียบนี้
ทำเพราะการสกัดการใช้เอทานอลในประเทศจะ
เป็นไปได้ระหว่างโปรเซสเซอร์อาหารขนาดเล็กที่ผลิต
ส่วนใหญ่ของเนยถั่วขายในเฮติ .
2 วัสดุ&วิธีการ
2.1 . ตัวอย่าง
อาหารทำการเก็บตัวอย่างระหว่างสามคาบ ในช่วงเดือนกรกฎาคมของ
2012 ,เนยถั่ว 14 และ 21 ตัวอย่างถั่วลิสงที่ได้จากตลาดเปิดโล่งใน Port Au Prince
และหมวก haitien . ในเดือนธันวาคม
10 ข้าวโพดตัวอย่างประมาณ 1.0 กิโลกรัมละได้จาก
telele Croix du , ช่อดอกไม้และ Croix du bosales ตลาดใน portau -
เจ้าชาย ช่วงที่ 3 คือเดือนกันยายนถึงธันวาคมของ
2013 ในระหว่างที่ 21 เนยถั่วๆ
haitien ซื้อหมวก ,20 ตัวอย่างข้าวโพดได้ที่สมาคมชาวนา
4 คลังและสามโรงงานในนอร์ดกรม 1 ที่คลัง
ที่เกษตรกรประเภทและเกรดข้าวโพดที่เหมาะสำหรับการบริโภคของมนุษย์
หรืออาหารสัตว์ตัวอย่างถ่าย
และเก็บไว้แยกตามหมวดหมู่ที่อธิบายโดยเกษตรกร
ในโรงแรม ทั้งเสียงที่หูของข้าวโพดโดยทั่วไปกับ
โรงสีส่วนผู้ที่มีเมล็ดเน่าได้ฟรีบนพื้นดิน
ถูกนําไปให้อาหารสัตว์ ที่โรงงานตัวอย่าง probewas ใช้
ได้รับเมล็ดจากด้านล่าง ตรงกลาง และส่วนบนของกระเป๋า
50e100 กระสอบชั่งกิโล ข้าวสารข้าวโพดตัวอย่างที่ใช้ได้และมีลายไม้
โจ๊กข้าวโพด ( " mayi moulen " )
ดีแป้งข้าวโพด ( " mayi เฟริน " ) และรำข้าวพรหมลิขิต
อาหารสัตว์( " mayi จ่าย " ) ของข้าวโพดเลี้ยงสัตว์ จำนวน 20 , 11 ถูกนํา
แต่ยังไม่ได้สำหรับการบริโภคของมนุษย์ 5 ถูกกำกับเพื่อการบริโภคของมนุษย์
และโม่ และ 4 ) กำกับ อาหารสัตว์และ
รวมบดและไม่บดข้าวโพด แต่ละตัวอย่างหนัก
1.5e2.0 กิโลกรัม และถ่ายจาก 50e150 กกกระเป๋ากระสอบ ความชื้น
อย่างทั้งข้าว วัดวัน
ของคอลเลกชันตัวอย่างที่ถูกเก็บไว้ใน 30 C จนกัดด้วยค้อน Mill .
2.2 . การหาปริมาณสารด้วยวิธีคอลัมน์โครมาโตกราฟฟี
fluorometric ตรวจหาอะฟลาทอกซินมมูโนกลุ่มถูกวัดโดยใช้ระบบ aflatest vicam
( วารสารไม่ 17 Edition , 2000 , 972.26 ) แต่ละเนยถั่วลิสงคือ
ว่างจากขวดเดิมและละเอียดผสมด้วยไม้พาย
ก่อนตัวอย่างย่อย ( 25 กรัม ) นำมาวิเคราะห์ ถั่วลิสง
มีตัวอย่างพื้นดินที่มีขนาดเล็กอาหารก่อนที่จะซบคน รวมทั้งฝักข้าวโพด
ตัวอย่าง ( 10e15 ) และฟรีเมล็ด
( 1.5e2.0 กิโลกรัม ) ที่ได้จากคลังและเกษตรกร โรงสี เมล็ดจากฝักออก
ทั้งด้วยมือ และแต่ละ samplewas พื้นดินใน
โรงสีค้อนกับหน้าจอ 4.0 มิลลิเมตร ตัวอย่างย่อย ( 50 กรัม )
ถ่ายเพื่อการวิเคราะห์สารสกัดจากตัวอย่าง ( 60% หรือ 80% เมทานอล
สำหรับถั่วลิสงหรือตัวอย่าง ข้าวโพด ตามลำดับ ) โดยใช้
เครื่องปั่นความเร็วสูง 1 นาที สกัดเป็นร่องกรองด้วยกระดาษกรอง (
vicam ) ลงในบีกเกอร์ แล้วเจือจางด้วยน้ำบริสุทธิ์ ( เดอ
1 : 2 และ 1 : 5 เจือจางผลิตภัณฑ์ถั่วลิสง และข้าวโพด
ตามลำดับ ) รองลงมา คือ การกรองด้วยแก้ว
ไมโครกรองเจือจางสารละลายสำหรับถั่วลิสง ( 10 ml หรือ 1.0 กรัมตัวอย่างเทียบเท่า ) และ
ข้าวโพด ( 2 มล. หรือ 0.2 กรัมเทียบเท่า ) ได้ผ่านการ immuneaffinity
คอลัมน์ สำหรับตัวอย่างที่อยู่นอกช่วงของการตรวจสอบ
( 0e100 มิลลิกรัม / กิโลกรัม และ 0e300 มิลลิกรัม / กิโลกรัม สำหรับผลิตภัณฑ์ ถั่วลิสง และข้าวโพด
ตามลำดับ ) โดยยังเจือจาง 1 : 5 ( 10 มล. เจือจางสาร
และ 40 ml de ionized น้ำ ) หรือ 1 : 10 ( 5 มล. เจือจางสารและ 45 มล.
De ionized น้ำ ) คอลัมน์ คือ การล้างด้วยน้ำบริสุทธิ์และเดอ
2 ตัวอย่างลงในหลอดที่มี 1.0 มิลลิลิตร borosilicate วัฒนธรรม
เมทานอลเกรด HPLC . ในสารละลาย ( eluate ) เพิ่ม 1.0 มิลลิลิตรสาร
น้ำและจำนวน vortexed . หลังจาก 1.0 มินเรืองแสง
ของตัวอย่างอ่าน ( i : 360 nm เล็ดรอด :
440 nm ) ข้าวโพดอ้างอิงตัวอย่างที่มีอะฟลาทอกซินได้
50.8 9.6 , 5.9 และ 17 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัมได้รับ ( ตอนจบ Labs , วอชิงตัน ,
มิสซูรี ) และถั่วลิสงเนยด้วยที่ไม่ได้ถูกซิน
C 1 , 2 , 3 , 4 , 10 , 25 , และ 400 มิลลิกรัม / กิโลกรัม การ spiking
มาตรฐาน ( ตอนจบ Labs ) ที่มีอยู่ 5 มก. / มล. ( 2 มิลลิกรัม สารอะฟลาทอกซินรวม
2 มิลลิกรัม afb2 afg1 0.5 mg และ 0.5 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร afg2 ไน ) .
ตัวอย่างการอ้างอิงทั้งหมดถูก assayed ทั้งสามใบ และขีด จำกัด ของ
ตรวจจับ ( LOD )ขีด จำกัด ของเซลล์ ( loq ) , การกู้คืนและช่วง %
ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสัมพัทธ์ ( % RSD ) ตัวอย่าง เราตั้งค่า LOD ของเรา
กับตัวอย่างที่มีผลน้อยที่สุดเฉลี่ยเท่ากับ
แตกต่างกัน ( นักเรียน ) , p < 0.05 ) จาก
อ้างอิงโดยไม่ซินเพิ่มเติมและ loq ของเราระดับ
1 โรงสี ผู้ประกอบการได้รับการเข้าถึงสำหรับการสุ่มตัวอย่างบนเงื่อนไขที่ว่าสถานที่
anonymou ยังคงอยู่
การแปล กรุณารอสักครู่..
