2. Materials and methods2.1. Chemic

2. Materials and methods
2.1. Chemicals
Ergocalciferol and cholecalciferol were from Supelco Analytical,
Bellefonte, USA and of analytical grade quality. All other chemicals
and reagents were analytical grade or HPLC or HPLC–MS certified
by the suppliers.
2.2. Exposure to UV-B
Oyster mushrooms of commercial grade were obtained from
Druid Austernpilze (Ottrau, Germany). For each experiment,
>2 kg of mushrooms were spread single-layered on a cleaned area
of 60 160 cm. Two 1.7 m Arimed B 12 100W lamps (JW Sales
GmbH, Brand Division Cosmedico Medical Systems, Stuttgart,
Germany) with an defined spectral output (ca. 285–350 nm, max.
ca. 290–310 nm) attached in bulb holders were used as the source
of UV. The distance was 30 cm to each other and 15 cm to the edge
of the plane. UV light was measured using a USB4000 Fibre Optic
Spectrometer (Ocean Optics, Dunedin, USA) before starting the
exposure and afterwards. The UV-B source showed a stable intensity
and spectral distribution over the entire period. The lamps
were mounted 10 cm above the samples and delivered an average
UV-B output of 11.5 W/m2. The mushrooms were illuminated at
20 C, then frozen at 70 C, freeze-dried (ALPHA 1–2, Christ,
Osterode, Germany), and ground to powder using liquid nitrogen.
The powder was thoroughly mixed and stored in amber glass jars
with a Teflon seal at 70 C prior to analysis.
2.3. Extraction and clean-up procedure
The isolation of vitamin D compounds was optimised as described
previously (Wittig, Krings, & Berger, 2013). Briefly, a
freeze-dried 5 g sample was weighed into a 250 ml amber round
bottom flask, mixed with 4 ml of sodium ascorbate solution
(17.5 g of sodium ascorbate in 100 ml of 1 M NaOH), 50 ml of
ethanol (95%), 10 ml of 50% potassium hydroxide solution, and
100 lg of vitamin D3 (Internal Standard (IS), dissolved in 1 ml of
methanol). The mixture was refluxed at 80 C for 1 h. The cooled
mixture was transferred to a separatory funnel, diluted with
50 ml deionized water and then extracted consecutively with
diethyl ether, ethanol/n-pentane, and finally with pure n-pentane.
Solvent fractions were pooled, washed with dilute potassium
hydroxide, and neutralized. The extract was dried over anhydrous
sodium sulphate, the solvent removed, and the residue re-dissolved
in methanol. The suspension was centrifuged (10 min,
20,600g, 4C) and used for subsequent HPLC–DAD–ELSD or
LC–UV–MS analysis.
Extractions were performed in triplicate and expressed as mean
values ± standard deviation (SD). Samples without addition of
standard solution were analysed to check for co-elution of other
substances or the internal standard. The recovery of D2 was analysed
by spiking the freeze dried powder from fruiting bodies not
exposed to UV-B light with vitamin D2 solutions of known concentration
and with the internal standard. To obtain calibration curves
of vitamin D2 and D3, the pure standards were dissolved in methanol
to give stock solutions of 0.1 mg ml1 and 1 mg ml1, respectively,
and analysed by HPLC–DAD. A Genesys 10S UV–Vis
spectrophotometer (Thermo Scientific, Waltham, USA) was used
to confirm the concentration of the vitamin D2 solution by measuring
the absorption (e = 18,850 L mol1 cm1 at 265 nm in ethanol).
2.4. LC analysis of vitamin D forms and photoisomers
A HPLC system (Jasco, Groß-Umstadt, Germany) serially coupled
to an Agilent 1200 G1315 diode array detector (Böblingen,
Germany) and a SEDEX 55 evaporative light scattering detector
(Sedere, Alfortville Cedex, France) was used. The two column system
consisting of a Chromolith Performance RP-18e, 100–
4.6 mm (Merck, Darmstadt, Germany), and a Nucleodur C18 Pyramid
column (250 mm, 5 lm, Macherey–Nagel, Düren, Germany),
operated at a flow rate of 1 ml min1 and 40 C, was developed
to conduct this study. The separation of all compound reported
was achieved using a ternary solvent system of acetonitrile (A),
0.05% aqueous formic acid (B) and methanol (C). The gradient
was 70% A and 30% B at the start to 100% A for 2 min and held
for 8 min, then 95% A and 5% C for 10 min and held for another
10 min, to 100% A for 5 min, and finally to 70% A and 30% B for
5 min. UV spectra were recorded from 250 to 310 nm to confirm
the identity of the analytes (Wittig et al., 2013).
Vitamin D isomers were quantified according to the vitamin D2
standard calibration curve. The concentrations of previtamin D2,
tachysterol2 and lumisterol2 were corrected according to their molar
absorptivity in ethanol. Vitamin D4, previtamin D4, tachysterol4
and lumisterol4 were calculated like their D2 counterparts based on
almost identical UV spectra and absorptivities.

2. Materials and methods
2.1. Chemicals
Ergocalciferol and cholecalciferol were from Supelco Analytical,
Bellefonte, USA and of analytical grade quality. All other chemicals
and reagents were analytical grade or HPLC or HPLC–MS certified
by the suppliers.
2.2. Exposure to UV-B
Oyster mushrooms of commercial grade were obtained from
Druid Austernpilze (Ottrau, Germany). For each experiment,
>2 kg of mushrooms were spread single-layered on a cleaned area
of 60  160 cm. Two 1.7 m Arimed B 12 100W lamps (JW Sales
GmbH, Brand Division Cosmedico Medical Systems, Stuttgart,
Germany) with an defined spectral output (ca. 285–350 nm, max.
ca. 290–310 nm) attached in bulb holders were used as the source
of UV. The distance was 30 cm to each other and 15 cm to the edge
of the plane. UV light was measured using a USB4000 Fibre Optic
Spectrometer (Ocean Optics, Dunedin, USA) before starting the
exposure and afterwards. The UV-B source showed a stable intensity
and spectral distribution over the entire period. The lamps
were mounted 10 cm above the samples and delivered an average
UV-B output of 11.5 W/m2. The mushrooms were illuminated at
20 C, then frozen at 70 C, freeze-dried (ALPHA 1–2, Christ,
Osterode, Germany), and ground to powder using liquid nitrogen.
The powder was thoroughly mixed and stored in amber glass jars
with a Teflon seal at 70 C prior to analysis.
2.3. Extraction and clean-up procedure
The isolation of vitamin D compounds was optimised as described
previously (Wittig, Krings, & Berger, 2013). Briefly, a
freeze-dried 5 g sample was weighed into a 250 ml amber round
bottom flask, mixed with 4 ml of sodium ascorbate solution
(17.5 g of sodium ascorbate in 100 ml of 1 M NaOH), 50 ml of
ethanol (95%), 10 ml of 50% potassium hydroxide solution, and
100 lg of vitamin D3 (Internal Standard (IS), dissolved in 1 ml of
methanol). The mixture was refluxed at 80 C for 1 h. The cooled
mixture was transferred to a separatory funnel, diluted with
50 ml deionized water and then extracted consecutively with
diethyl ether, ethanol/n-pentane, and finally with pure n-pentane.
Solvent fractions were pooled, washed with dilute potassium
hydroxide, and neutralized. The extract was dried over anhydrous
sodium sulphate, the solvent removed, and the residue re-dissolved
in methanol. The suspension was centrifuged (10 min,
20,600g, 4C) and used for subsequent HPLC–DAD–ELSD or
LC–UV–MS analysis.
Extractions were performed in triplicate and expressed as mean
values ± standard deviation (SD). Samples without addition of
standard solution were analysed to check for co-elution of other
substances or the internal standard. The recovery of D2 was analysed
by spiking the freeze dried powder from fruiting bodies not
exposed to UV-B light with vitamin D2 solutions of known concentration
and with the internal standard. To obtain calibration curves
of vitamin D2 and D3, the pure standards were dissolved in methanol
to give stock solutions of 0.1 mg ml1 and 1 mg ml1, respectively,
and analysed by HPLC–DAD. A Genesys 10S UV–Vis
spectrophotometer (Thermo Scientific, Waltham, USA) was used
to confirm the concentration of the vitamin D2 solution by measuring
the absorption (e = 18,850 L mol1 cm1 at 265 nm in ethanol).
2.4. LC analysis of vitamin D forms and photoisomers
A HPLC system (Jasco, Groß-Umstadt, Germany) serially coupled
to an Agilent 1200 G1315 diode array detector (Böblingen,
Germany) and a SEDEX 55 evaporative light scattering detector
(Sedere, Alfortville Cedex, France) was used. The two column system
consisting of a Chromolith Performance RP-18e, 100–
4.6 mm (Merck, Darmstadt, Germany), and a Nucleodur C18 Pyramid
column (250 mm, 5 lm, Macherey–Nagel, Düren, Germany),
operated at a flow rate of 1 ml min1 and 40 C, was developed
to conduct this study. The separation of all compound reported
was achieved using a ternary solvent system of acetonitrile (A),
0.05% aqueous formic acid (B) and methanol (C). The gradient
was 70% A and 30% B at the start to 100% A for 2 min and held
for 8 min, then 95% A and 5% C for 10 min and held for another
10 min, to 100% A for 5 min, and finally to 70% A and 30% B for
5 min. UV spectra were recorded from 250 to 310 nm to confirm
the identity of the analytes (Wittig et al., 2013).
Vitamin D isomers were quantified according to the vitamin D2
standard calibration curve. The concentrations of previtamin D2,
tachysterol2 and lumisterol2 were corrected according to their molar
absorptivity in ethanol. Vitamin D4, previtamin D4, tachysterol4
and lumisterol4 were calculated like their D2 counterparts based on
almost identical UV spectra and absorptivities.

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

2. Materials and methods2.1. ChemicalsErgocalciferol and cholecalciferol were from Supelco Analytical,Bellefonte, USA and of analytical grade quality. All other chemicalsand reagents were analytical grade or HPLC or HPLC–MS certifiedby the suppliers.2.2. Exposure to UV-BOyster mushrooms of commercial grade were obtained fromDruid Austernpilze (Ottrau, Germany). For each experiment,>2 kg of mushrooms were spread single-layered on a cleaned areaof 60 160 cm. Two 1.7 m Arimed B 12 100W lamps (JW SalesGmbH, Brand Division Cosmedico Medical Systems, Stuttgart,Germany) with an defined spectral output (ca. 285–350 nm, max.ca. 290–310 nm) attached in bulb holders were used as the sourceof UV. The distance was 30 cm to each other and 15 cm to the edgeof the plane. UV light was measured using a USB4000 Fibre OpticSpectrometer (Ocean Optics, Dunedin, USA) before starting theexposure and afterwards. The UV-B source showed a stable intensityand spectral distribution over the entire period. The lampswere mounted 10 cm above the samples and delivered an averageUV-B output of 11.5 W/m2. The mushrooms were illuminated at20 C, then frozen at 70 C, freeze-dried (ALPHA 1–2, Christ,Osterode, Germany), and ground to powder using liquid nitrogen.The powder was thoroughly mixed and stored in amber glass jarswith a Teflon seal at 70 C prior to analysis.2.3. Extraction and clean-up procedureThe isolation of vitamin D compounds was optimised as describedpreviously (Wittig, Krings, & Berger, 2013). Briefly, afreeze-dried 5 g sample was weighed into a 250 ml amber roundbottom flask, mixed with 4 ml of sodium ascorbate solution(17.5 g of sodium ascorbate in 100 ml of 1 M NaOH), 50 ml ofethanol (95%), 10 ml of 50% potassium hydroxide solution, and100 lg of vitamin D3 (Internal Standard (IS), dissolved in 1 ml ofmethanol). The mixture was refluxed at 80 C for 1 h. The cooledmixture was transferred to a separatory funnel, diluted with50 ml deionized water and then extracted consecutively withdiethyl ether, ethanol/n-pentane, and finally with pure n-pentane.Solvent fractions were pooled, washed with dilute potassiumhydroxide, and neutralized. The extract was dried over anhydroussodium sulphate, the solvent removed, and the residue re-dissolvedin methanol. The suspension was centrifuged (10 min,20,600g, 4C) and used for subsequent HPLC–DAD–ELSD orLC–UV–MS analysis.Extractions were performed in triplicate and expressed as meanvalues ± standard deviation (SD). Samples without addition ofstandard solution were analysed to check for co-elution of othersubstances or the internal standard. The recovery of D2 was analysedby spiking the freeze dried powder from fruiting bodies notexposed to UV-B light with vitamin D2 solutions of known concentrationand with the internal standard. To obtain calibration curvesof vitamin D2 and D3, the pure standards were dissolved in methanolto give stock solutions of 0.1 mg ml1 and 1 mg ml1, respectively,and analysed by HPLC–DAD. A Genesys 10S UV–Visspectrophotometer (Thermo Scientific, Waltham, USA) was usedto confirm the concentration of the vitamin D2 solution by measuringthe absorption (e = 18,850 L mol1 cm1 at 265 nm in ethanol).2.4. LC analysis of vitamin D forms and photoisomersA HPLC system (Jasco, Groß-Umstadt, Germany) serially coupledto an Agilent 1200 G1315 diode array detector (Böblingen,Germany) and a SEDEX 55 evaporative light scattering detector(Sedere, Alfortville Cedex, France) was used. The two column systemconsisting of a Chromolith Performance RP-18e, 100–4.6 mm (Merck, Darmstadt, Germany), and a Nucleodur C18 Pyramidcolumn (250 mm, 5 lm, Macherey–Nagel, Düren, Germany),operated at a flow rate of 1 ml min1 and 40 C, was developedto conduct this study. The separation of all compound reportedwas achieved using a ternary solvent system of acetonitrile (A),0.05% aqueous formic acid (B) and methanol (C). The gradientwas 70% A and 30% B at the start to 100% A for 2 min and heldfor 8 min, then 95% A and 5% C for 10 min and held for another10 min, to 100% A for 5 min, and finally to 70% A and 30% B for5 min. UV spectra were recorded from 250 to 310 nm to confirmthe identity of the analytes (Wittig et al., 2013).Vitamin D isomers were quantified according to the vitamin D2standard calibration curve. The concentrations of previtamin D2,tachysterol2 and lumisterol2 were corrected according to their molarabsorptivity in ethanol. Vitamin D4, previtamin D4, tachysterol4and lumisterol4 were calculated like their D2 counterparts based onalmost identical UV spectra and absorptivities.

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

2. วัสดุและวิธีการ
2.1 สารเคมี
ergocalciferol และ cholecalciferol จาก Supelco
วิเคราะห์เบลลาฟอน, สหรัฐอเมริกาและมีคุณภาพเกรดวิเคราะห์ สารเคมีอื่น ๆ
ทั้งหมดและสารเคมีเป็นเกรดการวิเคราะห์หรือHPLC หรือ HPLC-MS
ได้รับการรับรองโดยซัพพลายเออร์.
2.2 การสัมผัสกับรังสี UV-B
เห็ดหอยนางรมของเกรดเชิงพาณิชย์ที่ได้รับจากดรูอิด Austernpilze (Ottrau, เยอรมนี)
สำหรับการทดสอบแต่ละ> 2 กิโลกรัมของเห็ดกระจายเดี่ยวชั้นบนพื้นที่ทำความสะอาด 60? 160 เซนติเมตร สอง 1.7 เมตร Arimed บี 12 100W โคมไฟ (เจดับบลิวขายGmbH, ยี่ห้อกอง Cosmedico ระบบการแพทย์, สตุตกา, เยอรมนี) มีผลผลิตสเปกตรัมกำหนด (แคลิฟอร์เนียได้ 285-350 นาโนเมตร, สูงสุด. โดยประมาณ 290-310 นาโนเมตร) ที่แนบมาในหลอดเป็นผู้ถือ ใช้เป็นแหล่งของรังสียูวี ระยะทางเป็น 30 ซมกันและ 15 ซม. ไปที่ขอบของเครื่องบิน แสงยูวีได้รับการวัดโดยใช้ USB4000 ไฟเบอร์ออปติกSpectrometer (มหาสมุทรทัศนศาสตร์เดอนี, USA) ก่อนที่จะเริ่มเปิดรับและหลังจากนั้น แหล่งที่มาของรังสี UV-B ได้แสดงให้เห็นความรุนแรงที่มีเสถียรภาพและการกระจายสเปกตรัมในช่วงระยะเวลาทั้งหมด โคมไฟถูกติดตั้ง 10 ซมดังกล่าวข้างต้นส่งตัวอย่างและค่าเฉลี่ยการส่งออกUV-B 11.5 W / m2 เห็ดถูกส่องสว่างที่20 องศาเซลเซียสแช่แข็งแล้วที่? 70? C แห้ง (ALPHA 1-2 คริสต์Osterode, เยอรมนี) และพื้นดินเป็นผงโดยใช้ไนโตรเจนเหลว. ผงที่ได้ผสมและเก็บไว้ในสีเหลืองอำพัน ขวดแก้วที่มีตราประทับที่เทฟลอน? 70? C ก่อนที่จะมีการวิเคราะห์. 2.3 การสกัดและขั้นตอนการทำความสะอาดแยกของสารวิตามินดีถูกปรับให้เหมาะสมตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้(Wittig, Krings และเบอร์เกอร์ 2013) สั้น ๆ ที่แห้ง5 กรัมตัวอย่างชั่งน้ำหนักเป็นสีเหลืองอำพันมล. 250 รอบขวดด้านล่างผสมกับ4 มิลลิลิตรสารละลายโซเดียม ascorbate (17.5 กรัม ascorbate โซเดียมใน 100 มล. 1 M NaOH) 50 มล. ของเอทานอล(95% ), 10 มล. 50% วิธีการแก้ปัญหาไฮดรอกไซโพแทสเซียมและ100 แอลจีของวิตามิน D3 (ภายในมาตรฐาน (IS), ละลายใน 1 มิลลิลิตรของเมทานอล) ส่วนผสมที่ถูก refluxed ที่ 80 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 1 ชั่วโมง ระบายความร้อนด้วยส่วนผสมที่ถูกย้ายไปช่องทาง separatory เจือจางด้วยน้ำdeionized 50 มล. และสกัดแล้วอย่างต่อเนื่องกับอีเทอร์เอทานอล/ n-เพ็นเทนและในที่สุดก็มี n-เพ็นเทนบริสุทธิ์. เศษส่วนตัวทำละลายที่ได้รวบรวมล้างด้วยโพแทสเซียมเจือจางไฮดรอกไซและเป็นกลาง สารสกัดแห้งมากกว่าปราศจากซัลเฟตโซเดียมตัวทำละลายออกและre-ละลายสารตกค้างในเมทานอล ที่ถูกระงับการหมุนเหวี่ยง (10 นาที20,600g 4 องศาเซลเซียส) และใช้สำหรับการต่อมา HPLC-DAD-ELSD หรือการวิเคราะห์LC-UV-MS. สกัดได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่าและแสดงเป็นค่าเฉลี่ยค่าส่วนเบี่ยงเบน±มาตรฐาน (SD) ตัวอย่างโดยไม่มีการเติมสารละลายมาตรฐานที่ได้มาวิเคราะห์เพื่อตรวจสอบร่วมชะอื่น ๆ สารหรือมาตรฐานภายใน การฟื้นตัวของ D2 ได้รับการวิเคราะห์โดยการแช่แข็งองศาผงแห้งจากดอกเห็ดไม่ได้สัมผัสกับแสงยูวีบีด้วยโซลูชั่นวิตามินD2 ของความเข้มข้นที่รู้จักกันและมีมาตรฐานภายใน ที่จะได้รับการสอบเทียบเส้นโค้งของวิตามิน D2 และ D3 มาตรฐานบริสุทธิ์ถูกละลายในเมทานอลเพื่อให้การแก้ปัญหาสต็อกของ0.1 มก. มล. 1 และ 1 มิลลิกรัมมล. 1 ตามลำดับและวิเคราะห์โดยวิธีHPLC-DAD Genesys 10S UV-Vis spectrophotometer (เทอร์โมวิทยาศาสตร์ Waltham สหรัฐอเมริกา) ถูกนำมาใช้เพื่อยืนยันความเข้มข้นของการแก้ปัญหาD2 วิตามินโดยการวัดการดูดซึม(จ = 18,850 L mol 1 ซม. 1 ที่ 265 นาโนเมตรในเอทานอล). 2.4 การวิเคราะห์ LC รูปแบบวิตามิน D และ photoisomers ระบบ HPLC A (Jasco, Gross-Umstadt, เยอรมนี) ควบคู่ไปเป็นลำดับไปยังAgilent 1200 G1315 ตรวจจับอาร์เรย์ไดโอด (Böblingen, เยอรมนี) และ SEDEX 55 เครื่องตรวจจับกระเจิงแสงระเหย(Sedere, Alfortville Cedex, ฝรั่งเศส ) ถูกนำมาใช้ ระบบสองคอลัมน์ประกอบด้วย Chromolith หรือไม่? ผลการดำเนินงาน RP-18e, 100 4.6 มิลลิเมตร (เมอร์ค, Darmstadt, Germany) และ Nucleodur C18 พีระมิดคอลัมน์(250 มม 5 LM, Macherey-แจคกี้Düren, เยอรมนี) ดำเนินการที่อัตราการไหล 1 มิลลิลิตรนาที 1 และ 40 องศาเซลเซียสได้รับการพัฒนาที่จะดำเนินการศึกษาครั้งนี้ การแยกสารทั้งหมดรายงานก็ประสบความสำเร็จโดยใช้ระบบตัวทำละลาย ternary ของ acetonitrile (A) 0.05% กรดน้ำ (B) และเมทานอล (C) การไล่ระดับสีเป็น 70% และ 30% B ที่จุดเริ่มต้นที่จะ 100% เป็นเวลา 2 นาทีและถือเป็นเวลา8 นาทีแล้ว 95% และ C 5% เป็นเวลา 10 นาทีและจัดขึ้นอีก10 นาทีจะ 100% เป็นเวลา 5 นาทีและในที่สุดถึง 70% และ 30% สำหรับ B 5 นาที สเปกตรัมรังสียูวีที่ถูกบันทึกไว้ 250-310 นาโนเมตรเพื่อยืนยันตัวตนของผู้ที่วิเคราะห์(Wittig et al., 2013). ไอโซเมอวิตามิน D ได้รับการวัดตาม D2 วิตามินเส้นโค้งการสอบเทียบมาตรฐาน ความเข้มข้นของ previtamin D2, tachysterol2 lumisterol2 และได้รับการแก้ไขตามกรามของพวกเขาดูดกลืนแสงในเอทานอล วิตามิน D4, previtamin D4, tachysterol4 และ lumisterol4 ถูกคำนวณเช่น D2 คู่ของพวกเขาขึ้นอยู่กับสเปกตรัมรังสียูวีเหมือนกันเกือบและabsorptivities

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . สารเคมี
โกแคลซิเฟอรอล 4 จาก supelco และวิเคราะห์
bellefonte สหรัฐอเมริกา คุณภาพเกรด วิเคราะห์ อื่น ๆทั้งหมดและเป็นเกรดวิเคราะห์สารเคมีสารเคมี
หรือ HPLC หรือ HPLC MS ได้รับการรับรองโดยซัพพลายเออร์และ
.
2.2 . การสัมผัสกับรังสียูวี บี
เห็ดนางรมเกรดเชิงพาณิชย์ที่ได้รับจาก
Druid austernpilze ( ottrau , เยอรมัน ) สำหรับแต่ละการทดลอง
> 2 กก. เห็ดถูกแพร่กระจายในพื้นที่เดียวชั้นล้าง
60 160 cm สอง 1.7 เมตร arimed B 12 หลอด 100W ( JW ขาย
GmbH , แผนกแบรนด์ cosmedico ระบบการแพทย์ สตุทการ์ท ประเทศเยอรมนี ด้วยการกำหนดความยาวคลื่น
) ผลผลิต ( ประมาณ 285 – 350 nm , แม็กซ์
ประมาณ 290 - 310 nm ) ที่ผู้ถือหลอดไฟที่ใช้เป็นแหล่ง
ของยูวี ระยะทาง 30 ซม. กับแต่ละอื่น ๆและ 15 ซม. ขอบ
ของเครื่องบินแสงยูวีถูกวัดโดยใช้ใยแก้วนำแสง usb4000
Spectrometer ( มหาสมุทรทัศนศาสตร์ เดอนีดิน , USA ) ก่อนที่จะเริ่ม
แสงและหลังจากนั้น โดยรังสียูวี บีที่มาแสดงความเข้มและมั่นคง
การกระจายสเปกตรัมมากกว่าระยะเวลาทั้งหมด โคมไฟ
ติด 10 ซม. เหนือตัวอย่างและส่งออกเฉลี่ย 11.5 รังสียูวี บี
W / m2 เห็ดได้รับความสว่างที่
20 C แล้ว แช่แข็งที่อุณหภูมิ 70 องศาเซลเซียส

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.