2.1. SamplesMeat and meat product s

2.1. Samples
Meat and meat product samples were obtained from
different market sources and were minced and wrapped
in sealed PE bags and stored in a freezer at 15 C until
analysis. They included 14 samples of ham, 10 samples
of frankfurters, four samples of chopped and one sample
of whole mortadella, five samples of pate, and six
samples of meat from four species.
2.2. Reagents and solutions
Sodium phosphate and glycylglycine were purchased
from Sigma-Adrich (Czech Republic), ascorbic acid,
sodium, molybdate, zinc oxide, sodium diphosphate,
citric acid and hydrochloric acid were purchased from
Lachema (Brno, Czech Republic). The remaining chemicals
were supplied byPENTA (Czech Republic). All
reagents were analytical grade.
2.3. Analytical methods
2.3.1. Protein
Protein (N  6.25) was determined as total nitrogen
bythe Kjeldahl method modified bythe addition of a
mixture of K2SO4 and CuSO4 as catalyst. Samples (1.5
g) were digested with a mixture of sulphuric acid and
hydrogen peroxide and the content of nitrogen was
determined using a KJELTEC AUTO 1030 Analyser
(Tecator, Sweden).
2.3.2. Net protein
A 2-g sample (all samples were weighed to an accuracyon
three decimal places) of minced meat was
homogenized in 75 ml water and the mixture boiled for
30 min on a hot plate. After cooling, 10 ml of 10% trichloracetic
acid was added. The precipitate was filtered
through filter paper (FILTRAK, 388, Germany) and
used for the determination of nitrogen (N6.25=net
protein) or mixed with ZnO for the determination of
phosphate.
2.3.3. Isotachophoresis
One gram of minced product or 2 g of meat was
placed in a 100-ml volumetric flask and homogenized
with 50 ml of distilled water in an ultrasonic bath for
approximately30 min. The mixture was cooled and
made up to volume with distilled water and then filtered
(FILTRAK, 388, Germany). The filtrate was refiltered
through a membrane filter (0.45 mm, MACHEREYNAGEL,
Du¨ ren, Germany) prior to CITP analysis.
A ZKI 02 isotachophoresis analyser (Labeco, Spisˇska´
Nova´ Ves, Slovak Republic) with column coupling was
used. The separation was performed in a FEP (fluorinated
ethylene–propylene copolymer) pre-separation
capillary(160  0.8 mm i.d.), which was coupled to a
FEP analytical capillary (160 0.8 mm i.d.). Zones were
detected byconduc tivity. The isotachophoretic data
were collected and evaluated bya software package
ITPWin 2.20 (KasComp, Slovak Republic) running on
a personal computer. Anionic analysis of phosphates
was performed with a leading electrolyte comprising of
10 mM HCl+20 mM glycylglycine+0.05% hydroxypropylmethylcelullose
(pH=3.0) and a terminating
electrolyte of 5 mM citric acid. The currents applied to
the pre-separation and the analytical capillary were 250
and 50 mA, respectively.
Calibration curves were constructed using solutions of
monophosphate and di-phosphate at concentrations of
10, 50, 100, 200 and 500 mmol l1.
2.3.4. Spectrophotometric determination of phosphorous
as molybdenum blue after dry-ashing
Phosphorous was determined, after dry-ashing, by
spectrophotometryat l=823 nm using the molybdate–
ascorbic acid reaction (Pulliainen & Wallin, 1996) and a
standard curve constructed using standard solutions (0,
0.01, 0.02, 0.03, 0.04, 0.05 and 0.06 mg P). Spectrophotometric
measurements were carried out with the
Spectronic1 model 20 GENESISTM VIS spectrophotometer
(Spectronic Instruments, Rochester NY,
USA). All determinations were repeated at least once.
Results were calculated as an average of replicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.1. ตัวอย่างตัวอย่างสินค้าเนื้อสัตว์และเนื้อสัตว์ที่ได้รับจากแหล่งตลาดที่แตกต่าง และเตรียม และห่อปิดผนึกถุง PE และเก็บในตู้แช่ที่ 15 C จนถึงการวิเคราะห์ พวกเขารวม 14 ตัวอย่างแฮม 10 ตัวอย่างเตรียมการของ frankfurters สี่ตัวอย่าง และสุ่มตัวอย่างของทั้งหมด mortadella ห้าตัวอย่างของกบาล และหกตัวอย่างของเนื้อจากสี่สายพันธุ์2.2. reagents และโซลูชั่นซื้อโซเดียมฟอสเฟตและ glycylglycineจากซิกม่า-Adrich (สาธารณรัฐเช็ก), วิตามินซีโซเดียม molybdate ซิงค์ออกไซด์ โซเดียมโคลี นเพทซื้อจากกรดซิตริกและกรดไฮโดรคลอริกLachema (เบอร์โน สาธารณรัฐเช็ก) สารเคมีที่เหลือมี byPENTA ให้มา (สาธารณรัฐเช็ก) ทั้งหมดสารรีเอเจนต์เกรดวิเคราะห์ได้2.3. วิเคราะห์วิธี2.3.1. โปรตีนกำหนดเป็นปริมาณไนโตรเจนโปรตีน (N 6.25)โดยวิธีเจลดาห์ลเมื่อต้องแก้ไขเพิ่มเติมโดยการผสม K2SO4 และ CuSO4 เป็นเศษ ตัวอย่าง (1.5g) ถูกย่อย มีส่วนผสมของกรดซัลฟุริก และเนื้อหาของไนโตรเจนและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ใช้การวิเคราะห์ 1030 อัตโนมัติ KJELTEC(Tecator สวีเดน)2.3.2. สุทธิโปรตีนตัวอย่าง 2-g (ตัวอย่างทั้งหมดมาชั่งน้ำหนักเพื่อการ accuracyonทศนิยมสาม) ของเนื้อสับhomogenized มล.น้ำและส่วนผสมที่ต้มสำหรับ30 นาทีบนจานร้อน หลังจากเย็น 10 ml ของ trichloracetic 10%กรดถูก ตะกอนที่ถูกกรองผ่านกระดาษกรอง (FILTRAK, 388 เยอรมนี) และใช้สำหรับวัดปริมาณของไนโตรเจน (N 6.25 =สุทธิโปรตีน) หรือผสมกับ ZnO สำหรับการวัดฟอสเฟต2.3.3. Isotachophoresisหนึ่งกรัม ของผลิตภัณฑ์สับ หรือ g 2 เนื้อคือวางไว้ในขวดแก้ววัดปริมาตรเป็น 100 มิลลิลิตร และ homogenizedกับ 50 ml ของน้ำกลั่นในอ่างอัลตราโซนิคสำหรับapproximately30 นาที ส่วนผสมมีความร้อน และการปริมาตรด้วยน้ำกลั่น และกรองแล้ว(FILTRAK, 388 เยอรมนี) การกรองถูก refilteredผ่านตัวกรองเมมเบรน (0.45 mm, MACHEREYNAGELDu¨ ren เยอรมนี) ก่อน CITP วิเคราะห์วิเคราะห์ isotachophoresis ZKI 02 (Labeco, Spisˇska´ของกิจการ Nova´ สาธารณรัฐสโลวัก) คอลัมน์ต่อได้ใช้ การแยกงานใน FEP (หน่วยแยกล่วงหน้าโคพอลิเมอร์เอทิลีนโพรพิลีน)เส้นเลือดฝอย (160 มม. 0.8 ประชาชน), ซึ่งถูกควบคู่ไปกับการFEP วิเคราะห์เส้นเลือดฝอย (160 มม. 0.8 ประชาชน) มีโซนตรวจพบ byconduc tivity ข้อมูล isotachophoreticมีแพคเกจซอฟต์แวร์ bya รวบรวม และประเมินITPWin 2.20 (KasComp สาธารณรัฐสโลวัก) ทำงานบนเครื่องคอมพิวเตอร์ส่วนบุคคล การวิเคราะห์ฟอสเฟต anionicดำเนินการ ด้วยการนำอิเล็กโทรไลต์ประกอบด้วย10 มม. HCl + 20 มม. glycylglycine+0.05% hydroxypropylmethylcelullose(pH = 3.0) และการยุติการอิเล็กโทรไลท์ของกรด 5 มม. กระแสที่นำไปใช้การแยกก่อนและเส้นเลือดฝอยวิเคราะห์ได้ 25050 mA ตามลำดับสอบเทียบเส้นโค้งถูกสร้างขึ้นโดยใช้โซลูชั่นของโมโนฟอสเฟตและฟอสเฟต di ที่ความเข้มข้นของ10, 50, 100, 200 และ 500 มิลลิโมลต่อลิตร 12.3.4. spectrophotometric ความมุ่งมั่นของฟอสฟอรัสเป็นสีฟ้าหลังจากแห้ง ashing โมลิบดีนัมฟอสฟอรัสกำหนด หลังแห้ง-ashing โดยspectrophotometryat l = 823 nm ใช้ molybdate-ปฏิกิริยาของกรดแอสคอร์บิค (Pulliainen & Wallin, 1996) และกราฟมาตรฐานที่สร้างขึ้นโดยใช้โซลูชั่นมาตรฐาน (00.01, 0.02, 0.03, 0.04, 0.05 และ P 0.06 มิลลิกรัม) SpectrophotometricการประเมินดำเนินการกับการSpectronic1 รุ่นสเปค GENESISTM VIS 20(เครื่องมือ Spectronic โรเชสเตอร์ NYสหรัฐอเมริกา) วิเคราะห์ปริมาณทั้งหมดถูกทำซ้ำอย่างน้อยหนึ่งครั้งมีคำนวณผลเฉลี่ย replicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.1 ตัวอย่าง
เนื้อสัตว์และผลิตภัณฑ์จากเนื้อสัตว์ตัวอย่างที่ได้รับจาก
แหล่งตลาดที่แตกต่างกันและได้รับการสับและห่อ
ในถุง PE ปิดผนึกและเก็บไว้ในช่องแช่แข็งที่? 15? C จน
การวิเคราะห์ พวกเขารวม 14 ตัวอย่างแฮม, 10 ตัวอย่าง
ของ frankfurters สี่ตัวอย่างสับและเป็นหนึ่งในตัวอย่าง
ของ Mortadella ทั้งห้าตัวอย่างหัวหกและ
ตัวอย่างเนื้อจากสี่ชนิด.
2.2 รีเอเจนต์และการแก้ปัญหา
ฟอสเฟตโซเดียมและ glycylglycine กำลังซื้อ
จาก บริษัท Sigma-Adrich (สาธารณรัฐเช็ก), วิตามินซี,
โซเดียมโมลิบสังกะสีออกไซด์โซเดียมเพท,
กรดซิตริกและกรดไฮโดรคลอริกที่ซื้อมาจาก
Lachema (Brno, สาธารณรัฐเช็ก) สารเคมีที่เหลืออยู่
ถูกที่จัด byPENTA (สาธารณรัฐเช็ก) ทั้งหมด
น้ำยาเป็นเกรดวิเคราะห์.
2.3 วิธีการวิเคราะห์
2.3.1 โปรตีน
โปรตีน (N? 6.25) ถูกกำหนดเป็นไนโตรเจนทั้งหมด
bythe วิธี Kjeldahl การแก้ไข bythe นอกเหนือจาก
ส่วนผสมของ K2SO4 และ CuSO 4 เป็นตัวเร่งปฏิกิริยา ตัวอย่าง (1.5
กรัม) ถูกย่อยที่มีส่วนผสมของกรดซัลฟูริกและ
ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์และเนื้อหาของไนโตรเจนที่ถูก
กำหนดโดยใช้ KJELTEC AUTO 1030 Analyser
(Tecator, สวีเดน).
2.3.2 โปรตีนสุทธิ
ตัวอย่าง 2-G (ตัวอย่างทั้งหมดได้รับการชั่งน้ำหนักไปยัง accuracyon
สามตำแหน่งทศนิยม) ของเนื้อสับถูก
ปั่นใน 75 มล. น้ำและส่วนผสมที่ต้ม
30 นาทีบนจานร้อน หลังจากที่เย็น 10 มล trichloracetic 10%
กรดถูกเพิ่มเข้ามา ตะกอนถูกกรอง
ผ่านกระดาษกรอง (FILTRAK 388, เยอรมนี) และ
ใช้สำหรับการวัดไนโตรเจน (N? 6.25 = สุทธิ
โปรตีน) หรือผสมกับซิงค์ออกไซด์ในการกำหนด
ฟอสเฟต.
2.3.3 Isotachophoresis
หนึ่งกรัมของผลิตภัณฑ์สับหรือ 2 กรัมของเนื้อสัตว์ที่ถูก
วางไว้ในขวดปริมาตร 100 มิลลิลิตรและหดหาย
50 มล. น้ำกลั่นในห้องอาบน้ำล้ำสำหรับ
approximately30 นาที ส่วนผสมที่ถูกระบายความร้อนและ
สร้างขึ้นมาจากปริมาณน้ำกลั่นและกรองแล้ว
(FILTRAK 388, เยอรมนี) กรองถูก refiltered
ผ่านตัวกรองเมมเบรน (0.45 มม MACHEREYNAGEL,
du Ren, เยอรมนี) ก่อนที่จะมีการวิเคราะห์ CITP.
ZKI 02 isotachophoresis วิเคราะห์ (Labeco, Spisska'
Nova' Ves, สาธารณรัฐสโลวัก) กับการมีเพศสัมพันธ์คอลัมน์นี้ถูก
นำมาใช้ การแยกถูกดำเนินการใน FEP (fluorinated
เอทิลีนโพรพิลีนลิเมอร์) ก่อนแยก
เส้นเลือดฝอย (160? 0.8 มม ID) ซึ่งเป็นคู่กับ
เส้นเลือดฝอยวิเคราะห์ FEP (160? 0.8 มม ID) โซนที่ถูก
ตรวจพบ byconduc ประสิทธิภาพในการ ข้อมูล isotachophoretic
ถูกเก็บรวบรวมและประเมิน bya แพคเกจซอฟต์แวร์
ITPWin 2.20 (KasComp, สาธารณรัฐสโลวัก) ที่ทำงานบน
เครื่องคอมพิวเตอร์ส่วนบุคคล วิเคราะห์ประจุลบของฟอสเฟต
ได้ดำเนินการกับอิเล็กโทรไลชั้นนำประกอบด้วย
10 มิลลิ HCl + 20 มิลลิเมตร glycylglycine + 0.05% hydroxypropylmethylcelullose
(pH = 3.0) และยุติ
อิเล็กของกรดซิตริก 5 มิลลิ กระแสนำไปใช้
ก่อนการแยกและเส้นเลือดฝอยวิเคราะห์ 250
และ 50 mA ตามลำดับ.
เส้นโค้งการสอบเทียบที่ถูกสร้างขึ้นโดยใช้โซลูชั่นของ
โมโนและ di-ฟอสเฟตที่ความเข้มข้น
10, 50, 100, 200 และ 500 มิลลิโมล L? 1.
2.3 0.4 การกำหนดสเปกของฟอสฟอรัส
เป็นโมลิบดีนัมสีฟ้าหลังจากแห้ง ashing
ฟอสฟอรัสถูกกำหนดหลังจากแห้ง ashing โดย
spectrophotometryat L = 823 นาโนเมตรโดยใช้ molybdate-
ปฏิกิริยากรดแอสคอบิ (Pulliainen & Wallin, 1996) และ
เส้นโค้งมาตรฐานสร้างขึ้นโดยใช้สารละลายมาตรฐาน (0 ,
0.01, 0.02, 0.03, 0.04, 0.05 และ 0.06 mg P) สเปก
วัดได้ดำเนินการกับ
รุ่น Spectronic1 20 GENESISTM VIS spectrophotometer
(SPECTRONIC เครื่องดนตรี, โรเชสเตอร์นิวยอร์ก,
สหรัฐอเมริกา) หาความทั้งหมดถูกทำซ้ำอย่างน้อยหนึ่งครั้ง.
ผลลัพธ์ที่ได้คำนวณเป็นค่าเฉลี่ยของซ้ำ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.1 . ตัวอย่างเนื้อและผลิตภัณฑ์ ได้จากตัวอย่างตลาดที่แตกต่างกันแหล่งที่มาและถูกสับและห่อในถุง PE ปิดผนึกและเก็บไว้ในช่องแช่แข็งที่ 15 องศาเซลเซียส จนกระทั่งการวิเคราะห์ พวกเขารวม 14 ตัวอย่าง 10 ตัวอย่างของแฮมของแฟรงค์เฟอร์เตอร์ 4 ตัวอย่าง และตัวอย่างหนึ่งชิ้นทั้ง mortadella ห้าตัวอย่างของหัว และหกตัวอย่างของสัตว์สี่ชนิด2.2 . เพื่อโซลูชั่นโซเดียมฟอสเฟตและ glycylglycine ถูกซื้อจาก Sigma adrich ( สาธารณรัฐเช็ก ) , กรดแอสคอร์บิคโซเดียมโมลิบเดต , สังกะสีออกไซด์ ไดฟอสเฟต โซเดียม ,กรดซิตริกและกรดที่ถูกซื้อจากlachema ( เบอร์โน , สาธารณรัฐเช็ก ) สารเคมีที่เหลืออยู่ได้จัด bypenta ( สาธารณรัฐเช็ก ) ทั้งหมดสารเคมีคือวิเคราะห์เกรด2.3 วิธีการเชิงวิเคราะห์2.3.1 . โปรตีนโปรตีน ( 6.25 ) ถูกกำหนดเป็นไนโตรเจนทั้งหมดโดยดัดแปลงจากวิธีเจลดาห์ล นอกจากของและส่วนผสมของ k2so4 CuSO4 เป็นตัวเร่งปฏิกิริยา ตัวอย่าง ( สำหรับกรัม ) ถูกย่อยด้วยส่วนผสมของกรด กำมะถันและไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์และเนื้อหาของไนโตรเจนคือกำหนดใช้ kjeltec 1030 เครื่องอัตโนมัติ( tecator สวีเดน )2.3.2 . โปรตีนสุทธิเป็น 2-g ตัวอย่าง ( ตัวอย่างหนักเพื่อ accuracyonสามตำแหน่งทศนิยม ) ลาบ คือบดในน้ำและต้ม 75 มิลลิลิตรผสมสำหรับ30 นาทีบนจานร้อน หลังจากเย็น 10 มิลลิลิตร trichloracetic 10%กรดถูกเพิ่มเข้ามา ที่ถูกกรองผ่านกระดาษกรอง ( filtrak 388 , เยอรมัน , และใช้สำหรับการหาปริมาณไนโตรเจน ( n6.25 = สุทธิโปรตีน ) หรือผสมกับซิงค์ออกไซด์เพื่อหาปริมาณฟอสเฟต2.3.3 . isotachophoresisหนึ่งกรัมของผลิตภัณฑ์ หรือสับเนื้อ คือ 2 กรัมอยู่ในขวดปริมาตร 100 มิลลิลิตร และ โฮโมกับ 50 มล. ของน้ำในอ่างอัลตราโซนิคสำหรับ30 นาที ส่วนผสมจะระบายความร้อนและสร้างขึ้นเพื่อเสียงกับน้ำแล้วกรอง( filtrak 388 , เยอรมนี ) refiltered หนักคือผ่านเยื่อกรอง machereynagel ( 0.45 มม. ,ดูตั้งเรน , เยอรมนี ) ก่อนที่จะ citp การวิเคราะห์เป็น zki 02 isotachophoresis Analyser ( labeco spis ˇใหม่ , สกาโนวาถุงมือใหม่ , coupling สโลวัก ) คอลัมน์ใช้ การกระทำใน fep ( ฟลูออรีนเอทิลีนโพรพิลีนพอลิ ) ก่อนแยกฯหลอดเลือดฝอย ( 160 0.8 mm ID ) ซึ่งเป็นคู่กับซึ่งวิเคราะห์ fep ( 160 0.8 มิลลิเมตรไอดี ) โซนคือตรวจพบ byconduc tivity . ข้อมูล isotachophoreticการเก็บรวบรวมและประเมินผลด้วยโปรแกรมสำเร็จรูปitpwin 2.20 ( kascomp , สโลวักสาธารณรัฐ ) วิ่งบนคอมพิวเตอร์ส่วนบุคคล การวิเคราะห์และประจุลบของฟอสเฟตแสดงด้วยการนำ electrolyte ประกอบด้วย10 มม. 20 มม. glycylglycine HCl + + 0.05 % hydroxypropylmethylcelullose( pH = 3.0 ) และสัญญาณผลของกรดซิตริก 5 mm . กระแสที่ใช้ไปก่อนการแยกวิเคราะห์เป็น 250 และหลอดเลือดฝอยและ 50 มาตามลำดับเส้นโค้งสอบเทียบถูกสร้างโดยใช้โซลูชั่นของโมโนฟอสเฟตและไดที่ความเข้มข้นของฟอสเฟต10 , 50 , 100 , 200 และ 500 มิลลิโมลเป็นภาษาไทย2.3.4 . ปริมาณของฟอสฟอรัส )เป็นธาตุชนิดหนึ่งสีฟ้าหลังจากวิมเบิลดันฟอสฟอรัสถูกกำหนดหลังจากวิมเบิลดัน , โดยspectrophotometryat L = 823 nm ใช้โมลิบเดต –ปฏิกิริยาเป็นกรดแอสคอร์บิค ( pulliainen & วอลลิน , 1996 ) และมาตรฐานเส้นโค้งสร้างโดยใช้โซลูชั่นมาตรฐาน ( 0 ,0.01 , 0.02 , 0.03 , 0.05 และ 0.10 มิลลิกรัม 0.04 , p ) ไบวัดได้ทดลองกับspectronic1 รุ่น 20 genesistm vis spectrophotometer( spectronic เครื่องมือ โรเชสเตอร์นิวยอร์กสหรัฐอเมริกา ) ทั้งหมดข้างต้นเป็นเวลาอย่างน้อยหนึ่งครั้งผลที่ได้เป็นค่าเฉลี่ยของนาที