There are two types of diagnostic m

There are two types of diagnostic methods: 1, identification of DNA in biological fluids by means of PCR, nested-PCR, and real-time PCR; and 2, molecular methods, such as microsatellite analysis to identify parasite strains (11). The nested-PCR assay has been reported as the most significant and sensitive assay for diagnosing toxoplasmosis (12). In a study by Fallahi et al. conducted on children with cancer to identify T. gondii infections, the nested-PCR method showed the proper sensitivity and specificity for detecting toxoplasmosis (13). Molecular diagnostics can be a very useful tool in diagnosing T. gondii in diabetic patients. In addition to finding the appropriate target gene sequences, the exact design of primers for the correct implementation of the PCR is important. Reports indicate that procedures with multiple gene copies, such as nested-PCR, are better than a single-gene copy (14). Molecular methods used in laboratories worldwide to identify the forms of T. gondii are a 529 bp repeat element (RE) (gene bank accession number AF146527), with 200 - 300 copies (15), and B1 gene (gene bank accession number AF179871) with 35 copies (14).These are used to determine sequences in the genome of T. gondii because high specificity and sensitivity are important. Accuracy and sensitivity of the two genes (RE and B1) have been compared (16-19). Finding a positive PCR in the patient’s sero-negative toxoplasmosis is an important factor, which suggests that the results may not be reliable. This is true when the nested-PCR assay with specific primers does not show false results.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

มีสองประเภทของวิธีการวินิจฉัย: 1 รหัสของดีเอ็นเอในของเหลวชีวภาพโดยวิธี PCR, PCR ซ้อน และแบบเรียลไทม์ PCR และ 2 วิธีโมเลกุล เช่นชนิด microsatellite วิเคราะห์เพื่อหาพยาธิสายพันธุ์ (11) มีการรายงานการทดสอบ PCR ซ้อนเป็นทดสอบสำคัญ และสำคัญสำหรับการวินิจฉัย toxoplasmosis (12) ในการศึกษาโดย Fallahi et al.ดำเนินการในเด็กโรคมะเร็งการติดเชื้อ T. gondii ระบุ วิธี PCR ซ้อนพบความไวที่เหมาะสมและความจำเพาะสำหรับตรวจจับ toxoplasmosis (13) การวินิจฉัยระดับโมเลกุลสามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์มากในการวินิจฉัย T. gondii ในผู้ป่วยเบาหวาน นอกจากหาลำดับยีนที่เป้าหมายที่เหมาะสม การออกแบบไพรเมอร์สำหรับการดำเนินการถูกต้องการ PCR ที่แน่นอนเป็นสิ่งสำคัญ รายงานระบุว่า ขั้นตอน มีหลายยีนสำเนา เช่นซ้อน PCR จะดีกว่าสำเนายีนเดี่ยว (14) วิธีโมเลกุลที่ใช้ในห้องปฏิบัติการทั่วโลกเพื่อระบุรูปแบบของ T. gondii เป็น 529 bp ทำซ้ำองค์ประกอบ (RE) (ยีนธนาคารเลขทะเบียน AF146527), 200-300 ชุด (15), และบี 1 ยีน (ยีนธนาคารเลขทะเบียน AF179871) กับสำเนา 35 (14) เหล่านี้จะใช้เพื่อกำหนดลำดับในกลุ่มของ T. gondii เนื่องจากความไวและความจำเพาะสูงเป็นสำคัญ ความแม่นยำและความไวของสองยีน (RE และ B1) มีการเปรียบเทียบ (16-19) ค้นหาบวก PCR ใน toxoplasmosis sero เชิงลบของผู้ป่วยเป็นปัจจัยสำคัญ ซึ่งแสดงให้เห็นว่า ผลอาจไม่เชื่อถือ นี้เป็นจริงเมื่อทดสอบ PCR ซ้อนกับไพรเมอร์เฉพาะแสดงผลลัพธ์เท็จ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

มีสองประเภทของวิธีการวินิจฉัยคือ 1 บัตรประจำตัวของดีเอ็นเอในของเหลวทางชีวภาพโดยวิธี PCR, ซ้อนกัน-PCR และ Real-time PCR; และ 2 วิธีโมเลกุลเช่นการวิเคราะห์ microsatellite การระบุสายพันธุ์ปรสิต (11) ซ้อน-PCR การทดสอบได้รับการรายงานว่าการทดสอบที่สำคัญที่สุดและมีความสำคัญสำหรับการวินิจฉัย toxoplasmosis (12) ในการศึกษาโดย Fallahi et al, ดำเนินการเกี่ยวกับเด็กที่มีโรคมะเร็งในการระบุการติดเชื้อ T. gondii ที่ซ้อนกัน-PCR วิธีการแสดงให้เห็นว่ามีความไวและความจำเพาะที่เหมาะสมสำหรับการตรวจสอบ toxoplasmosis (13) การวินิจฉัยระดับโมเลกุลสามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์มากในการวินิจฉัย T. gondii ในผู้ป่วยเบาหวาน นอกเหนือจากการหาลำดับของยีนเป้าหมายที่เหมาะสมการออกแบบที่แน่นอนของไพรเมอร์สำหรับการดำเนินงานที่ถูกต้องของวิธี PCR เป็นสิ่งสำคัญ รายงานระบุว่าขั้นตอนที่มียีนหลายอย่างเช่นซ้อน-PCR, จะดีกว่าสำเนาเดียวยีน (14) วิธีโมเลกุลใช้ในห้องปฏิบัติการทั่วโลกเพื่อระบุรูปแบบของ T. gondii เป็นของ 529 bp องค์ประกอบซ้ำ (อีกครั้ง) (ยีนธนาคารจำนวนภาคยานุวัติ AF146527) กับ 200-300 เล่ม (15) และ B1 ยีน (ยีนธนาคารจำนวนภาคยานุวัติ AF179871) 35 เล่ม (14) เหล่านี้จะถูกใช้ในการกำหนดลำดับจีโนมของ T. gondii เพราะความจำเพาะสูงและความไวที่มีความสำคัญ ความถูกต้องและความไวของทั้งสองยีน (อีกครั้งและ B1) ได้รับการเปรียบเทียบ (16-19) หาวิธี PCR ในเชิงบวกในผู้ป่วย toxoplasmosis SERO ลบเป็นปัจจัยสำคัญซึ่งแสดงให้เห็นว่าผลที่ได้อาจจะไม่น่าเชื่อถือ นี่คือความจริงเมื่อการทดสอบที่ซ้อนกัน-PCR กับไพรเมอร์ที่เฉพาะเจาะจงไม่ได้แสดงผลการเท็จ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

มีสองประเภทของวิธีการวินิจฉัย : 1 รหัสดีเอ็นเอในทางชีววิทยาของเหลวโดยวิธี PCR PCR ที่ซ้อนกันและเรียลไทม์พีซีอาร์ ; และ 2 วิธีไมโครโมเลกุล เช่น การวิเคราะห์เพื่อระบุสายพันธุ์ปรสิต ( 11 ) ที่ซ้อนกันซึ่งได้รับรายงานเป็นวิธีที่สำคัญที่สุดและมีความละเอียดอ่อนต่อการวินิจฉัยโรคโรคทอกโซพลาสโมซิส ( 12 ) ในการศึกษาโดย fallahi et al . ดำเนินการในเด็กโรคมะเร็งระบุเชื้อ T . gondii , ด้วยวิธีพีซีอาร์ พบค่าความไวและความจำเพาะที่เหมาะสมสำหรับการตรวจหาโรคทอกโซพลาสโมซิส ( 13 ) การวินิจฉัยระดับโมเลกุลสามารถเป็นเครื่องมือที่มีประโยชน์มากในการวินิจฉัย T . gondii ในผู้ป่วยเบาหวาน นอกจากการหาลำดับยีนที่เหมาะสมเป้าหมาย , การออกแบบไพรเมอร์สำหรับการดำเนินการที่ถูกต้องของ PCR เป็นสำคัญ รายงานระบุว่า กระบวนการกับสำเนาของยีนหลาย เช่นด้วย PCR ดีกว่าสำเนาของยีนเดี่ยว ( 14 ) วิธีโมเลกุลที่ใช้ในห้องปฏิบัติการทั่วโลกเพื่อระบุรูปแบบของ T . gondii เป็น 529 BP ซ้ำองค์ประกอบ ( อีกครั้ง ) ( ธนาคารยีนเข้าเบอร์ af146527 ) , 200 - 300 เล่ม ( 15 ) และยีน ( Gene Bank เข้า af179871 1 หมายเลข ) กับ 35 เล่ม ( 14 ) . เหล่านี้จะใช้เพื่อกำหนดลำดับใน จีโนมของ T . gondii เพราะความจำเพาะและความไวสูงเป็นสำคัญ ความแม่นยำและความไวของทั้งสองยีน ( อีกครั้งและ B1 ) ได้รับการเปรียบเทียบ ( 4 ) ค้นหา PCR บวกใน SERO คนไข้ลบ toxoplasmosis เป็นปัจจัยสำคัญ ซึ่งชี้ให้เห็นว่า ผลลัพธ์ที่ได้อาจไม่เป็นที่เชื่อถือ นี้เป็นจริงเมื่อซ้อนกันตรวจสอบด้วยไพรเมอร์โดยเฉพาะไม่ได้แสดงผลลัพธ์ที่เป็นเท็จ