At the beginning of the micropropag

At the beginning of the micropropagation process, explants were extracted from the
plants grown in a greenhouse. They were 1–1.5 cm long and consisted of a stem node
with an axillary bud, fragments of internodes, and a fragment of petiole (fig. 1A). The
explants were disinfected in 0.1% HgCl2 solution for 7 minutes, rinsed in sterile water
and inserted in fours into 0.4 dm3 jars with agar-solidified medium. Each experimental
set consisted of 20 jars. The jars were placed in a growth chamber with a temperature of
25°C, photoperiod of 16/8 h, and white light with an intensity of 25–30 μmol m-2 s-1.
After 4 weeks, for each experimental set alive explants were calculated, plants with one
shot and this ones produced two shots. Later on, 40 plants from each set were examined
to determine the following features: weight and length of the shoot, number of internodes,
and number and weight of the roots. The remaining plants served as a source of
explants for the subculture. Those explants were much smaller than the primary; the
stem fragments were 2–3 mm long, while the petioles – approx. 1 cm long (fig. 1). Because
the induction of organogenesis in the subculture was delayed, the period of plant
regeneration was extended to 5 weeks. Then, were counted every living explants, sweet
potato plants and alive explants without shoots. 40 plants from each set were examined
to measure the same parameters as in the first culture. Forty plants were planted into
0.33 dm3 cylindrical plastic pots filled with a not-sterile mixture of horticultural soil and
sand (3:1) and subjected to hardening. The pots were covered with plastic covers and
placed in a greenhouse, where they were exposed to natural light and temperature fluctuations.
The covers were removed after two weeks. The plants were kept in an unheated
glasshouse for 4 weeks and then planted in the open field. Some of the plants (12 from each set) were left in jars and kept in a growth chamber. After 7 weeks from
the establishment of the culture, the length of their shoots was measured and the internodes
were counted.
The results were subjected to statistical analysis according to the completely randomised
2 × 2 factorial experiment design. The significance of differences between the
mean values of individual parameters was determined using the Tukey’s test.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ที่จุดเริ่มต้นของกระบวนการการขยายการชิ้นส่วนที่ถูกสกัดจากพืชที่ปลูกในเรือนกระจก พวกเขาเป็น 1-1.5
เซนติเมตรยาวประกอบด้วยโหนดลำต้นที่มีตาออกที่ซอกใบเศษinternodes และชิ้นส่วนของก้านใบ (รูป. 1A)
ชิ้นได้รับการฆ่าเชื้อในการแก้ปัญหา 0.1% HgCl2 7
นาทีล้างในน้ำหมันและแทรกอยู่ในขาลงในขวด0.4 dm3 กับสื่อวุ้น-ผลึก การทดลองแต่ละชุดประกอบด้วย 20 ขวด
ขวดถูกวางไว้ในห้องที่มีอุณหภูมิการเจริญเติบโตของ
25 ° C, แสงของ 16/8 ซและแสงสีขาวที่มีความรุนแรงของไมโครโมล 25-30 เมตร-2 s-1.
หลังจาก 4 สัปดาห์สำหรับการทดลองแต่ละชุดยังมีชีวิตอยู่
ชิ้นนี้จะถูกคำนวณพืชกับคนยิงและคนนี้ผลิตสองนัด ต่อมาเมื่อ 40
พืชจากแต่ละชุดมีการตรวจสอบเพื่อตรวจสอบคุณสมบัติดังต่อไปน้ำหนักและความยาวของการถ่ายจำนวนinternodes,
และจำนวนและน้ำหนักของราก
พืชที่เหลือทำหน้าที่เป็นแหล่งที่มาของชิ้นส่วนสำหรับวัฒนธรรม ชิ้นส่วนเหล่านั้นมีขนาดเล็กกว่าถึงหลัก;
เศษลำต้นเป็น 2-3 มิลลิเมตรยาวในขณะที่ก้านใบ - ประมาณ 1 เซนติเมตรยาว (รูปที่ 1). เพราะการเหนี่ยวนำของอวัยวะในวัฒนธรรมที่ถูกเลื่อนออกไประยะเวลาของพืชที่งอกยื่นออกไป5 สัปดาห์ จากนั้นนับชิ้นมีชีวิตทุกอย่างหวานพืชมันฝรั่งและมีชีวิตอยู่ได้โดยไม่ต้องชิ้นหน่อ 40 พืชจากแต่ละชุดมีการตรวจสอบการวัดค่าพารามิเตอร์เช่นเดียวกับในวัฒนธรรมครั้งแรก สี่สิบพืชที่ปลูกลงไป0.33 dm3 กระถางพลาสติกทรงกระบอกที่เต็มไปด้วยส่วนผสมที่ไม่ผ่านการฆ่าเชื้อของดินพืชสวนและทราย(3: 1) และอยู่ภายใต้การชุบแข็ง หม้อถูกปกคลุมไปด้วยปกพลาสติกและวางไว้ในเรือนกระจกที่พวกเขาได้สัมผัสกับแสงธรรมชาติและความผันผวนของอุณหภูมิ. ครอบคลุมถูกถอดออกหลังจากสองสัปดาห์ พืชที่ถูกเก็บไว้ในวักเรือนกระจกเป็นเวลา 4 สัปดาห์และปลูกแล้วในทุ่งโล่ง บางส่วนของพืช (12 จากแต่ละชุด) ถูกทิ้งไว้ในขวดและเก็บไว้ในห้องการเจริญเติบโต หลังจาก 7 สัปดาห์จากสถานประกอบการของวัฒนธรรมความยาวของยอดของพวกเขาได้รับการวัดและinternodes นับ. ผลการวิจัยภายใต้การวิเคราะห์ทางสถิติตามที่สุ่มสมบูรณ์2 × 2 การออกแบบการทดลองปัจจัย ความสำคัญของความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของแต่ละพารามิเตอร์ถูกกำหนดโดยใช้การทดสอบของ Tukey

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ที่จุดเริ่มต้นของกระบวนการการขยายพันธุ์ ชิ้นส่วนพืชสกัดจาก
พืชที่ปลูกในเรือนกระจก พวกเขายาว 1 – 1.5 เซนติเมตร จำนวนต้นโหนด
กับเพื่อนซอก การกระจายตัวของปล้องและส่วนของก้านใบ ( รูปที่ 1A )
อาหารถูกฆ่าเชื้อใน 0.1% hgcl2 โซลูชั่น 7 นาที ล้างฆ่าเชื้อในน้ำ
และแทรกอยู่ใน Fours เป็น 04 ขวด dm3 กับวุ้นแข็งปานกลาง แต่ละชุดการทดลอง
จำนวน 20 กระปุก โอ่งถูกวางไว้ในห้องการเจริญเติบโตด้วยอุณหภูมิ 25 ° C ต่อ
, 16 / 8 H , และสีขาวสว่าง กับความเข้มของ 25 – 30 μโมลด้วยที่สุด .
หลังจาก 4 สัปดาห์ สำหรับแต่ละชุดทดลองชีวิต เลี้ยงได้ พืชกับหนึ่ง
ยิงและเพลงนี้ผลิตสองภาพ . ในภายหลัง40 ต้น จากแต่ละชุดตรวจสอบ
เพื่อตรวจสอบคุณสมบัติดังต่อไปนี้ : น้ำหนักและความยาวของยอด จำนวนปล้อง
, และจำนวนและน้ำหนักของราก พืชที่เหลือ ทำหน้าที่เป็นแหล่งที่มาของ
อาหารสำหรับเปอร์เซ็นต์ อาหารเหล่านั้นมีขนาดเล็กกว่าลำต้นหลัก ; เศษ
ได้นาน 2 - 3 มิลลิเมตร ในขณะที่ประมาณ 1 ซม. ก้านใบยาว ) ( รูปที่ 1 ) เพราะ
การแกโนเจเนซีสในวัฒนธรรมล่าช้า ระยะเวลาของการฟื้นฟูโรงงาน
ระยะเวลา 5 สัปดาห์ จากนั้นก็นับมีชีวิตทุกชิ้นส่วน หวาน
มันฝรั่งพืชและมีชีวิตอยู่เนื้อเยื่อโดยไม่ต้องยิง 40 ต้น จากแต่ละชุดตรวจสอบ
วัดพารามิเตอร์เช่นเดียวกับในวัฒนธรรมก่อน พืชที่ปลูกเป็นสี่สิบ
033 dm3 กระถางพลาสติกทรงกระบอกเต็มไปด้วยส่วนผสมของดินไม่ปลอดเชื้อ พืชสวนและ
ทราย ( 3 : 1 ) และภายใต้การแข็งตัว กระถางที่ถูกปกคลุมด้วยพลาสติกครอบคลุมและ
อยู่ในเรือนกระจกที่พวกเขามีการเปิดรับแสงธรรมชาติ และความผันผวนของอุณหภูมิ .
ผ้าห่มถูกลบออกหลังจาก 2 อาทิตย์ พืชที่ถูกเก็บใน unheated
เรือนกระจกสำหรับ 4 สัปดาห์ แล้วปลูกในแปลงเปิด บางส่วนของพืช ( 12 จากแต่ละชุด ) ที่เหลืออยู่ในขวดและเก็บไว้ในการเจริญเติบโต Chamber หลังจาก 7 สัปดาห์จาก
สถานประกอบการของวัฒนธรรม ความยาวของหน่อวัดและปล้อง

ถูกนับ ผลลัพธ์ที่ถูกต้องสมบูรณ์ สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลตาม (
2 × 2 ทดลองแบบการออกแบบความสำคัญของความแตกต่างระหว่างค่าเฉลี่ยของพารามิเตอร์แต่ละ
ใช้วิเคราะห์ทดสอบของคู่ .