Determination of total flavonoids c

Determination of total flavonoids content
Each sample of the leaves crude extract (4 mg) was suspended
in methanol (4 ml). 0.25 ml of each suspension was transferred
to a tube followed by addition of 1.25 ml distilled water and 5%
NaNO3. After 6min, 150 ml 10% aluminumchloride were added
and the mixture left for 5 min in the dark. This was followed
by adding 0.5 ml 5% sodium hydroxide and 0.275 ml water and
measurement of absorbance by UVevisible spectroscopy at
450 nm wavelength (Hossain et al., 2013).
2.8. Antimicrobial activity
For testing antimicrobial activity, each crude extract (10 mg)
was mixed with 5 ml DMSO (Hossain et al., 2014a,b) and serially decreasing concentrations were made (2 mg/ml, 1mg/
ml, 0.5 mg/ml and 0.25 mg/ml). Amoxicillin (1mg/ml in DMSO)
was used as a standard control. Each concentrations was
tested by the agar diffusion method against 1 g (þ) bacteria S.
aureus and 3 g () bacteria E. coli and P. aeruginosa and P. vulgaris.
Filter paper discs (Whatman No. 41, 6 mm diameter)
were impregnated with each crude extract and place on the
inoculated agar. All the plates were incubated at 37
C for 24 h.
The evaluation for antibacterial activity was measured the
diameter of zones of inhibition against the tested food borne
pathogenic bacteria strains. Each method in this experiment
was replicated three times.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การหาปริมาณ flavonoids รวม
ตัวอย่างของสารสกัดใบ (4 มก.) แต่ละถูกระงับ
ในเมทานอล (4 มล.) 0.25 มล. ของแต่ละระงับถูกย้าย
ไปยังหลอดตามด้วยนอกเหนือจาก 1.25 มล. น้ำกลั่นและ 5%
NaNO3 หลังจาก 6 นาที, 150 มล. 10% aluminumchloride ถูกเพิ่ม
และส่วนผสมที่ได้ใส่เป็นเวลา 5 นาทีในที่มืด นี้ตามมา
ด้วยการเพิ่มโซเดียมไฮดรอกไซ 0.5 มล. 5% และ 0.275 มล. น้ำและ
การวัดการดูดกลืนแสงโดย UVevisible สเปกโทรสโกที่
450 นาโนเมตรความยาวคลื่น (Hossain et al., 2013).
2.8 ฤทธิ์ต้านจุลชีพ
สำหรับการทดสอบฤทธิ์ต้านจุลชีพแต่ละสารสกัดหยาบ (10 mg)
ผสมกับ 5 มล. DMSO (Hossain et al., 2014a, ข) และลำดับความเข้มข้นลดลงได้ทำ (2 mg / ml, 1 มก /
มล., 0.5 mg / ml และ 0.25 mg / ml) Amoxicillin (1mg / ml ใน DMSO)
ถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุมมาตรฐาน ความเข้มข้นของแต่ละคนได้
รับการทดสอบโดยวิธีการแพร่กระจายวุ้นกับ 1 กรัม (TH) แบคทีเรีย S.
aureus และ 3 G (?) แบคทีเรีย E. coli และ P. aeruginosa พี vulgaris.
Filter แผ่นกระดาษ (Whatman ฉบับที่ 41 ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 6 มม )
ถูกชุบด้วยสารสกัดแต่ละสถานที่และใน
อาหารเลี้ยงเชื้อเชื้อ แผ่นทั้งหมดถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 24 ชั่วโมง.
การประเมินผลสำหรับฤทธิ์ต้านแบคทีเรียได้รับการวัด
ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนการยับยั้งกับอาหารที่ผ่านการทดสอบเป็นพาหะ
เชื้อแบคทีเรียก่อโรคสายพันธุ์ วิธีการในการทดลองนี้แต่ละคน
ได้รับการจำลองแบบสามครั้ง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิเคราะห์ปริมาณสารฟลาโวนอยด์ เนื้อหาแต่ละตัวอย่างของใบสารสกัด ( 4 มิลลิกรัม ) ถูกระงับเมทานอล ( 5 ml ) 0.25 ml ของแต่ละระงับได้โอนเป็นหลอดตามด้วยนอกเหนือจาก 1.25 มล. น้ำกลั่นและ 5 เปอร์เซ็นต์NaNO3 . หลังจาก 6min 150 ml 10 % aluminumchloride เพิ่มและส่วนผสมที่เหลือ 5 นาที ในที่มืด นี้ ได้แก่โดยการเพิ่ม 0.5 ml 5 % และน้ำ และ 0.275 โซดาไฟการวัดค่าการดูดกลืนแสงโดย uvevisible สเปกโทรสโกปีที่450 nm ความยาวคลื่น ( Hossain et al . , 2013 )2.8 . ฤทธิ์ต้านจุลชีพการทดสอบฤทธิ์ต้านจุลชีพแต่ละสกัด ( 10 mg )ผสมกับ DMSO 5 ml ( Hossain et al . , 2014a , B ) และลดปริมาณอนุกรม ( 2 mg / ml 1mg /มิลลิลิตร , 0.5 mg / ml และ 0.25 มก. / มล. ) ซิลลิน ( 1mg / ml ใน DMSO )ถูกใช้เป็นตัวควบคุมมาตรฐาน แต่ละความเข้มข้น คือการทดสอบโดยวิธี agar diffusion ต่อ 1 กรัม ( þ ) เชื้อแบคทีเรีย S .) และ 3 G ( ) แบคทีเรีย E . coli และ P . aeruginosa และ P . vulgaris .แผ่นกรองกระดาษ ( whatman หมายเลข 41 6 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง )ถูกชุบด้วยสารสกัดในแต่ละสถานที่หัวเชื้อวุ้น จานทั้งหมดถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 24 ชั่วโมงการประเมินโครงการกิจกรรม antibacterial คือการวัดเส้นผ่าศูนย์กลางของโซนอาหาร borne ยับยั้งกับทดสอบเชื้อแบคทีเรียสายพันธุ์ แต่ละวิธีในการทดสอบเป็นจำนวน 3 ครั้ง