After dissection with stereomicrosc

After dissection with stereomicroscope SZH10 (Olympus®) and
M80 (Leica®), the samples were fixed in 3% glutaraldehyde in 0.1 M
sodium phosphate buffer, pH 7.2 (Gabriel, 1982) and submitted to
vacuum for 6 h for improved infiltration. Subsequently,the samples
were washed in 0.1 M sodium phosphate buffer, pH 7.2 (Gabriel,
1982), and then in distilled water. Tween 20 was utilized during
24 h for extraction of epicuticular waxes. Subsequently, the samples
underwent dehydration in an ethyl alcohol series, followed by
solutions of chloroform and pure ethanol (1:3, 1:1, 3:1, 1:1, 1:3),
and finally of pure ethanol. The samples were pre-infiltrated in a 2-
hydroxyethylmethacrylate (HEMA) and pure ethanol solution (1:1)
during 12 h, followed in pure HEMA and embedding in the same
resin, in a Teflon holder until reaching polymerization (Gerrits and
Smid, 1983). Sections of 5 m thickness were made using a RM2245
rotary microtome (Leica®). Toluidine blue O in 0.05% sodium benzoate
buffer, pH 4.4 was used for staining (Feder and O’Brien, 1968).
Permanent slides were deposited in the collection at the Structural
Botany Laboratory of the Biology Department, UFSM. Observations
and photomicrographs in bright field and polarized light were performed
using a DM 2000 microscope (Leica®) with a DFC 295 image
capture system (Leica®).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

หลังจากผ่าด้วยวิธี SZH10 (Olympus®) และM80 (Leica®), กลุ่มตัวอย่างได้รับการแก้ไขใน 3% glutaraldehyde ใน 0.1 Mโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 (เกเบรียล 1982) และส่งไปที่เครื่องดูดฝุ่นสำหรับ 6 h สำหรับการแทรกซึมที่ดีขึ้น ต่อมา ตัวอย่างถูกล้างใน 0.1 M โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 (เกเบรียล1982), และจากนั้น ในน้ำกลั่น 20 แต่ถูกนำมาใช้ในระหว่าง24 ชั่วโมงสำหรับการดูดไข epicuticular ต่อมา ตัวอย่างได้รับการคายน้ำในชุดเอทิลแอลกอฮอล์ ตามด้วยโซลูชั่นของคลอโรฟอร์มและเอทานอ (1:3, 1:1, 3:1, 1:1, 1:3),และสุดท้ายของเอทานอ ตัวอย่างที่ถูกแทรกซึมล่วงหน้า 2-hydroxyethylmethacrylate (HEMA) และเอทานอโซลูชัน (1:1)ในช่วง 12 ชม. ใน HEMA บริสุทธิ์ และฝังในเดียวกันเรซิน ที่ใส่เทฟลอนจนกว่าจะถึง polymerization (Gerrits และSmid, 1983) ส่วนความหนา 5 เมตรทำใช้เป็น RM2245microtome โรตารี่ (Leica®) O toluidine สีน้ำเงินใน 0.05% สารกันบูดมีใช้บัฟเฟอร์ pH 4.4 ย้อม (Feder และโอไบรอัน 1968)สไลด์ถาวรถูกฝากไว้ในคอลเลกชันที่โครงสร้างการห้องปฏิบัติการพฤกษศาสตร์ของชีววิทยา UFSM ข้อสังเกตและดำเนินการ photomicrographs ในฟิลด์ที่สดใสและแสงโพลาไรซ์ใช้กล้องจุลทรรศน์ DM 2000 (Leica®) ด้วยภาพ DFC 295จับระบบ (Leica®)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

หลังจากตรวจสอบกับ stereomicroscope szh10 ( Olympus ® ) และm80 ( Leica ® ) , จำนวนคงที่ 3 % glutaraldehyde ใน 0.1Mโซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 ( Gabriel , 1982 ) และส่งเครื่องดูดฝุ่น 6 H สำหรับการปรับปรุงการแทรกซึม ต่อมา , ตัวอย่างเคยล้างใน 0.1 โมลาร์โซเดียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.2 ( เกเบรียล1982 ) และจากนั้นในน้ำกลั่น Tween 20 ใช้ในระหว่าง24 ชั่วโมง เพื่อสกัด epicuticular ไข ต่อมา , ตัวอย่างรับน้ำในเอทิลแอลกอฮอล์ชุด ตามมาด้วยโซลูชั่นของคลอโรฟอร์มและเอทานอลบริสุทธิ์ ( 1 : 3 , 1 : 1 , 3 : 1 : 1 1 : 1 1 : 1 : 3 )และสุดท้ายของเอทานอลบริสุทธิ์ ตัวอย่างก่อนเข้ามาใน 2hydroxyethylmethacrylate ( อาชีวศึกษา ) และสารละลายเอทานอลบริสุทธิ์ ( 1 : 1 )ใน 12 ชั่วโมง ตามในที่บริสุทธิ์และอาชีวศึกษาฝัง ในที่เดียวกันเรซินใน Teflon ถือจนกว่าจะถึงและพอลิเมอไรเซชัน ( เจร์ริตส์smid , 1983 ) ในส่วนของ 5 เมตรความหนาให้ใช้ rm2245โรตารี่เครื่องตัดชิ้นเนื้อ ( Leica ® ) โทลูอิดีนสีฟ้าหรือ 0.05 % โซเดียมเบนโซเอตบัฟเฟอร์ pH 4.4 ใช้สำหรับย้อมสี ( เฟดเดอร์ และ โอไบรอัน , 1968 )สไลด์ถาวรฝากเงินในคอลเลกชันที่โครงสร้างพฤกษศาสตร์ห้องปฏิบัติการของภาควิชาชีววิทยา ufsm , . สังเกตphotomicrographs สดใสและในฟิลด์ และขั้วไฟแสดงใช้ DM 2000 กล้องจุลทรรศน์ ( Leica ® ) กับ DFC 295 ภาพระบบจับภาพ ( Leica ® )