Yellow head virus (YHV) is one of t

Yellow head virus (YHV) is one of the most devastating shrimp
pathogens as it causes mortality within 3 days. This virus was first
identified in 1992 from moribund shrimp from southern Thailand
(Boonyaratpalin et al., 1993). The virus was named from symptoms of
the disease in which the moribund shrimp would present a yellowish
cephalothorax and very sallow overall coloration. YHV can infect various
penaeid shrimp such as Penaeus aztecus, Penaeus duorarum, Penaeus
merguiensis, Penaeus monodon, Penaeus setiferus, Penaeus stylirostris and
Litopenaeus vannamei (Flegel, 1997). The infected moribund shrimp
shows nuclear condensation as well as pyknosis and karyorrhexis
which are signs of cell apoptosis (Khanobdee et al., 2002). YHV has a
positive-sense single-stranded RNA genome of approximately 27 kb
with a poly (A) tail. It belongs to the genus Okavirus, family Roniviridae
in the order Nidovirales. The morphology of YHV reveals an enveloped
bacilliform which has a particle size about 50–60 × 190–200 nm, containing
the internal helical nucleocapsid which is closely surrounded
by an envelope studded with prominent peplomers or spikes (Nadala
et al., 1997; Sittidilokratna et al., 2008). YHV contains two major structural
transmembrane glycoproteins (gp116 and gp64) and a
nucleoprotein (p20) (Jitrapakdee et al., 2003). Antiserum against the
gp116 but not gp64 can neutralize YHV infectivity in the primary lymphoid
cells of Penaeus monodon (Assavalapsakul et al., 2005). In addition,
injection of double-stranded RNA (dsRNA) targeting to the YHVbinding
protein, YRP65, inhibited YHV replication (Assavalapsakul
et al., 2006). Also, suppression of PmRab7 (a late endosomalmarker involved
in trafficking) resulted in inhibition of YHV replication
(Ongvarrasopone et al., 2008). These results imply that for successful infection,
YHV requires receptormediated endocytosis as a route of entry
and takes advantage of the host cell machineries for endosomal trafficking
and replication. Therefore, better understanding of the endocytosis
and trafficking pathway of YHV will shed light on the mechanism of
YHV infection and replication and thus will lead to the development
of an antiviral agent or strategy to combat YHV infection.
Many viruses utilize well-characterized cellular endocytic mechanisms
including clathrin-mediated endocytosis, lipid raft caveoladependent
endocytosis and macropinocytosis to internalize into host
cells. For instance, several positive-sense ssRNA viruses such as severe
acute respiratory syndrome virus (Inoue et al., 2007), hepatitis C, dengue
and semliki forest virus use clathrin-mediated endocytosis (Marsh
and Helenius, 2006; Meertens et al., 2006; Mercer et al., 2010) as a
route of entry. In clathrin-mediated endocytosis, the cargo is trafficked
through the cell via the coated vesicle which is surrounded by the
polymerized clathrin in a basket-like structure.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ไวรัสหัวเหลือง (ในกุ้ง) เป็นกุ้งทำลายล้างมากที่สุดอย่างใดอย่างหนึ่งเชื้อโรคเป็นสาเหตุการตายภายใน 3 วัน ไวรัสนี้เป็นครั้งแรกในปี 1992 จาก moribund กุ้งจากประเทศไทย(Boonyaratpalin et al. 1993) ชื่อไวรัสจากอาการของโรคกุ้ง moribund จะแสดงเป็นสีเหลืองcephalothorax และสีโดยรวมหน้าเหลืองมาก ในกุ้งสามารถติดเชื้อต่าง ๆpenaeid กุ้งเช่นกุ้งกุลา aztecus กุ้งกุลา duorarum กุ้งกุลาmerguiensis กุ้งกุลาดำ กุ้งกุลา setiferus กุ้งกุลา stylirostris และแวนไม (Flegel, 1997) Moribund กุ้งติดเชื้อแสดงควบนิวเคลียร์เป็น pyknosis และ karyorrhexisซึ่งเป็นสัญญาณของเซลล์ตาย (Khanobdee et al. 2002) ในกุ้งมีการบวกความรู้สึกเดียวที่ควั่น RNA พันธุของประมาณ 27 กิโลด้วยหางโพลี (A) เป็นสมาชิกอยู่ในสกุล Okavirus ครอบครัว Roniviridaeในใบสั่ง Nidovirales สัณฐานวิทยาของในกุ้งเผยการห่อbacilliform ซึ่งมีอนุภาคขนาดเกี่ยวกับ 50 – 60 × 190-200 nm ประกอบด้วยดโปรตีนลานภายในอันใกล้ชิดโดยซองด้วย peplomers โดดเด่นหรือแหลม (Nadalaet al. 1997 Sittidilokratna et al. 2008) ในกุ้งประกอบด้วยโครงสร้างหลักที่สองไกลโคโปรตีน transmembrane (gp116 และ gp64) และnucleoprotein (p20) (Jitrapakdee et al. 2003) Antiserum กับการgp116 แต่ gp64 ไม่สามารถแก้ในกุ้ง infectivity หลัก lymphoidเซลล์ของกุ้งกุลาดำ (Assavalapsakul et al. 2005) นอกจากนี้ฉีดสองครั้งที่ควั่น RNA (dsRNA) กำหนดเป้าหมายไป YHVbindingโปรตีน YRP65 ยับยั้งการจำลองแบบในกุ้ง (Assavalapsakulet al. 2006) ยัง ปราบปรามของ PmRab7 (endosomalmarker ปลายที่เกี่ยวข้องในการค้า) ส่งผลให้เกิดการยับยั้งการจำลองแบบในกุ้ง(Ongvarrasopone et al. 2008) ผลลัพธ์เหล่านี้นัยว่าการติดเชื้อสำเร็จในกุ้งต้องการ receptormediated endocytosis เป็นเส้นทางของรายการใช้ประโยชน์จากจักรเซลล์โฮสต์สำหรับ endosomal ค้าและการจำลองแบบ ดังนั้น เข้าใจการ endocytosisและทางค้าของในกุ้งเชื่อกลไกของในกุ้งติดเชื้อและการจำลองแบบ และจึง จะนำไปสู่การพัฒนาปรึกษาตัวแทนหรือกลยุทธ์เพื่อต้านการติดเชื้อในกุ้งไวรัสจำนวนมากใช้กลไก endocytic ลักษณะดีเซลลูลาร์รวม clathrin เซลล์ ไขมันแพ caveoladependentendocytosis และ macropinocytosis เพื่อ internalize เป็นโฮสต์มีเซลล์ เช่น หลายความรู้สึกบวก ssRNA ไวรัสเช่นรุนแรงไวรัสโรคทางเดินหายใจเฉียบพลัน (อิโนะอุเอะและ al. 2007), โรค ไข้เลือดออกและ semliki ป่าไวรัสใช้ clathrin เซลล์ (มาร์ชและ Helenius, 2006 Meertens et al. 2006 เมอร์เซอร์และ al. 2010) เป็นการกระบวนการผลิตรายการ ใน clathrin เซลล์ ค้าสินค้าผ่านเซลล์ผ่านเวสิเคิลเคลือบเป็นการclathrin polymerized ในโครงสร้างเช่นตะกร้า

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ไวรัสหัวเหลือง (YHV)
เป็นหนึ่งในผู้ที่ร้ายแรงที่สุดกุ้งเชื้อโรคที่เป็นสาเหตุที่ทำให้อัตราการตายของมันภายใน3 วัน ไวรัสนี้เป็นครั้งแรกที่ระบุว่าในปี 1992 จากกุ้งตายจากภาคใต้ของประเทศไทย (Boonyaratpalin et al., 1993) ไวรัสเป็นชื่อจากอาการของโรคที่กุ้งตายจะนำเสนอสีเหลืองcephalothorax และสีโดยรวมซีดมาก YHV สามารถติดเชื้อต่างๆกุ้งเช่นกุ้งaztecus, กุ้ง duorarum, กุ้งแชบ๊วย, กุ้งกุลาดำ, Penaeus setiferus, stylirostris และกุ้งแวนนาไม(Flegel, 1997) กุ้งที่ติดเชื้อตายแสดงให้เห็นถึงการรวมตัวนิวเคลียร์เช่นเดียวกับ pyknosis และ karyorrhexis ซึ่งเป็นสัญญาณของการตายของเซลล์ (Khanobdee et al., 2002) YHV มีบวกความรู้สึกเดียวที่ควั่นจีโนมอาร์เอ็นเอประมาณ27 กิโลด้วยโพลี(A) หาง มันเป็นสกุล Okavirus ครอบครัว Roniviridae เพื่อ Nidovirales สัณฐานวิทยาของ YHV เผย enveloped bacilliform ซึ่งมีขนาดอนุภาคประมาณ 50-60 × 190-200 นาโนเมตรที่มีนิวคลีโอลานภายในที่ล้อมรอบอย่างใกล้ชิดโดยซองเรียงรายด้วยpeplomers ที่โดดเด่นหรือแหลม (Nadala et al, 1997;. Sittidilokratna et al., 2008) YHV มีสองโครงสร้างหลักไกลโคโปรตีนรน(gp116 และ gp64) และนิวคลีโอ(P20) (Jitrapakdee et al., 2003) antiserum กับgp116 gp64 แต่ไม่สามารถต่อต้านการติดเชื้อ YHV ในต่อมน้ำเหลืองหลักเซลล์ของกุ้งกุลาดำ(Assavalapsakul et al., 2005) นอกจากนี้การฉีด RNA เกลียวคู่ (dsRNA) กำหนดเป้าหมายไปยัง YHVbinding โปรตีน YRP65, ยับยั้งการจำลองแบบ YHV (Assavalapsakul et al., 2006) นอกจากนี้การปราบปรามของ PmRab7 (ก endosomalmarker ปลายมีส่วนร่วมในการค้า) มีผลในการยับยั้งการจำลองแบบ YHV (Ongvarrasopone et al., 2008) ผลลัพธ์เหล่านี้บ่งบอกว่าเชื้อที่ประสบความสำเร็จYHV ต้อง endocytosis receptormediated เป็นเส้นทางของการเข้าและใช้ประโยชน์จากเครื่องจักรเซลล์โฮสต์สำหรับการค้าendosomal และการจำลองแบบ ดังนั้นความเข้าใจที่ดีขึ้นของ endocytosis ทางเดินและการค้า YHV จะหลั่งน้ำตาแสงในกลไกของการติดเชื้อYHV และการจำลองแบบจึงจะนำไปสู่การพัฒนาของตัวแทนไวรัสหรือกลยุทธ์ในการต่อสู้กับการติดเชื้อYHV. ไวรัสหลายคนใช้ดีลักษณะกลไก endocytic โทรศัพท์มือถือรวมทั้ง endocytosis clathrin พึ่งแพไขมัน caveoladependent endocytosis และ macropinocytosis เพื่อ internalize เข้าสู่โฮสต์เซลล์ ยกตัวอย่างเช่นไวรัสหลายบวกความรู้สึก ssRNA เช่นรุนแรงไวรัสโรคทางเดินหายใจเฉียบพลัน(อิโนอุเอะ et al, 2007.), ไวรัสตับอักเสบซี, ไข้เลือดออกและป่าไม้semliki ใช้ไวรัส clathrin พึ่ง endocytosis (มาร์ชและHelenius 2006. Meertens, et al, 2006 เมอร์เซอร์, et al, 2010) เป็น. เส้นทางของรายการ ใน endocytosis clathrin พึ่งสินค้าที่มีการค้ามนุษย์ผ่านมือถือผ่านทางตุ่มเคลือบซึ่งล้อมรอบด้วยclathrin polymerized ในโครงสร้างตะกร้าเหมือน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ไวรัสหัวเหลือง ( เหลือง ) เป็นหนึ่งในกุ้งที่แรงที่สุดเชื้อโรคที่เป็นสาเหตุการตายภายใน 3 วัน ไวรัสนี้เป็นครั้งแรกระบุใน 1992 จากร่อแร่กุ้งจากภาคใต้( boonyaratpalin et al . , 1993 ) ไวรัสเป็นชื่อจากอาการของโรคในกุ้งที่ร่อแร่จะนำเสนอเหลืองซีฟาโลโทแรกซ์และซีดเซียวโดยรวมสี หัวสามารถติดเชื้อต่าง ๆชนิด เช่น กุ้ง Penaeus aztecus ต่อ duorarum , ต่อ ,ค่าเฉลี่ยรวมกุ้งกุลาดำ Penaeus setiferus , , , stylirostris ต่อและง vannamei ( ชัยณรงค์ วงศ์ธีรทรัพย์ , 1997 ) เฮือกสุดท้ายกุ้งติดเชื้อแสดงนิวเคลียร์ ตลอดจนลักษณะ karyorrhexis และควบแน่นซึ่งเป็นสัญญาณของเซลล์อะพอพโทซิส ( khanobdee et al . , 2002 ) เหลืองมีความรู้สึกเดียวที่ควั่น RNA genome บวกประมาณ 27 กิโลกับ poly ( A ) หาง มันเป็นของสกุล okavirus ครอบครัว roniviridaeในการสั่งซื้อ nidovirales . สัณฐานวิทยาของเปลือกกุ้ง เผยเป็นใบสีส้มซึ่งมีขนาดอนุภาคประมาณ 50 – 60 × 190 - 200 nm ซึ่งประกอบด้วยภายในลานนิวคลีโอแคพซิดซึ่งเป็นอย่างใกล้ชิดล้อมรอบโดยซองจดหมาย studded กับ peplomers เด่นหรือแหลม ( nadalaet al . , 1997 ; า ลีละสุวัฒนากุล et al . , 2008 ) เหลืองประกอบด้วย 2 โครงสร้างหลักยาวไกลโคโปรตีน ( gp116 และ gp64 ) และนิ วคลีโอโปรตีน ( p20 ) ( jitrapakdee et al . , 2003 ) พบกับgp116 แต่ไม่ gp64 สามารถต่อต้านการติดเชื้อไวรัสหัวเหลืองในหลักน้ำเหลืองเซลล์ของกุ้งกุลาดำ ( assavalapsakul et al . , 2005 ) นอกจากนี้ควั่น RNA ( dsRNA ฉีดคู่กับ yhvbinding ) เป้าหมายโปรตีนยับยั้งการ yrp65 ( assavalapsakul เหลือง ,et al . , 2006 ) นอกจากนี้ การปราบปราม pmrab7 ( สาย endosomalmarker เกี่ยวข้องในการค้า ) มีผลในการยับยั้งไวรัสหัวเหลืองซ้ำ( ongvarrasopone et al . , 2008 ) ผลลัพธ์เหล่านี้แสดงให้เห็นว่าการติดเชื้อที่ประสบความสำเร็จกุ้งต้อง receptormediated เอนโดไซโทซิสเป็นเส้นทางของรายการและการใช้ประโยชน์จากเซลล์เจ้าบ้าน endosomal เครื่องจักรเพื่อการค้าและ การทำซ้ำ ดังนั้น ความเข้าใจของ เอนโดไซโทซิสและการค้าของทางเดินของหัวจะหลั่งแสงในกลไกของต่อการติดเชื้อซ้ำ ซึ่งจะนำไปสู่การพัฒนาเป็นสารต้านไวรัส หรือกลยุทธ์ที่จะต่อสู้กับการติดเชื้อไวรัสหัวเหลือง .หลายไวรัสใช้ดีลักษณะของเซลล์ endocytic กลไกรวม clathrin เอนโดไซโทซิส ( caveoladependent ไขมันแพเอนโดไซโทซิส macropinocytosis เข้าถึงและเป็นเจ้าภาพเซลล์ สำหรับอินสแตนซ์ บวกหลายความรู้สึก ssrna ไวรัสเช่นรุนแรงไวรัสโรคทางเดินหายใจเฉียบพลัน ( อิโนะอุเอะ et al . , 2007 ) , ตับอักเสบ C , ไข้เลือดออกsemliki ไวรัสและป่าใช้ clathrin โดยเอนโดไซโทซิส ( มาร์ชและ helenius , 2006 ; meertens et al . , 2006 ; Mercer et al . , 2010 ) เป็นเส้นทางของรายการ ใน clathrin โดยเอนโดไซโทซิส , สินค้าค้าผ่านมือถือผ่านเวสิเคิลเคลือบซึ่งล้อมรอบด้วยclathrin โพลิเมอร์ในตะกร้า เช่น โครงสร้าง